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Introducción
Los elementos con potencial tóxico (EPT) pueden causar daños en la salud humana y al medio ambiente, ya que son absorbidos por las plantas, y a través de la cadena alimenticia son transferidos a las personas y animales, lo cual puede constituir un factor de riesgo para el desarrollo carcinogénesis (Calderon et al. 2023).
Algunos de los principales EPT son mercurio (Hg), cadmio (Cd), cromo (Cr), talio (Tl), plomo (Pb) y arsénico (As). En particular, el As es un metaloide presente en la corteza terrestre y de amplio uso en la industria (Rae, 2020). En el suelo puede incorporarse a partir de fuentes naturales, como erosión de rocas y actividad volcánica, así como por actividades antropogénicas, como el uso de plaguicidas, herbicidas, fertilizantes, minería y combustibles fósiles (Armienta, Villaseñor, Rodriguez, Ongley y Mango 2001; Srivastava, Ma, y Gonzaga, 2006). La contaminación del suelo con As puede causar la pérdida de cobertura vegetal y afecta a los cuerpos de agua, además contribuye en la entrada de As en la cadena alimenticia (Rae, 2020; Fatoki y Badmus, 2022).
En algunas regiones agrícolas de México que hacen uso de agua de riego a partir de mantos acuíferos sobreexplotados, el problema de la contaminación de los suelos con sales y EPT es un problema frecuente. La Comarca Lagunera de los Estados de Durango y Coahuila, México, es una región agrícola con problemas de contaminación de suelos por el uso intensivo del agua a partir de pozos profundos con altas concentraciones de As (Rosas, Belmont, Armienta y Baez, 1999; Cueto-Wong, Reta, Gonzalez, Orona y Estrada, 2005; Azpilcueta, Pedroza, Sánchez, Jacobo y Trejo 2017; Mahlknecht et al., 2023).
Existen métodos para la remediación de suelos contaminados por dichos elementos, algunos utilizan las propiedades físicas y químicas de los contaminantes o del medio contaminado para transformar, separar o inmovilizar el contaminante (Dermont et al., 2008). Otros, como los métodos biológicos o biorremediación, aprovechan el potencial metabólico de los organismos vivos como bacterias, hongos y plantas (Gadd, 2010).
Dentro de los métodos biológicos se encuentra la fitorremediación, que es el uso de plantas con capacidad de extraer contaminantes del agua y el suelo y bioacumularlos en diversas partes como raíz, tallo, hojas, flores, frutos (Gavrilescu, 2022). En particular, este método tiene la ventaja de ser económico y sin riesgo para el ambiente, además, mejora la arquitectura del paisaje (Bauddh y Singh 2012). Por otro lado, una limitante es que este tipo de plantas generan poca biomasa y son de bajo valor económico, especialmente, aquellas clasificadas como hiperacumuladoras (Linger, Müssing, Fischer y Kobert, 2002; Chen, Lai, y Juang, 2012). Derivado de lo anterior, se ha sugerido la investigación de especies con alto valor económico para ser utilizadas como fitorremediadores, por ejemplo, plantas oleaginosas, las cuales permiten atender dos problemas globales; el consumo de combustibles fósiles y la contaminación del suelo (Reyes et al., 2016).
La higuerilla (Ricinus communis L.) es una especie de la familia Euphorbiaceae, de alto valor económico y se clasifica como una planta oleaginosa. El contenido de aceite de la semilla de R. communis puede alcanzar 64.5% en peso seco (González-Chávez, Ruiz, Carrillo y Ríos, 2015). Tiene la capacidad de adaptarse a condiciones de salinidad, sequía, heladas y no requiere condiciones edáficas especiales (Bauddh y Singh, 2012). Además, es un cultivo de amplio uso industrial que no entra en el ciclo alimentario (Rajkumar y Freitas 2008). Estas razones la colocan como buena candidata para ser una planta fitorremediadora. Además, de forma potencial tolera y extrae EPT como cadmio (Cd) (Bauddh y Singh, 2012) y níquel (Ni) (Adhikari y Kumar, 2012).
Por otra parte, se estima un consumo mundial de fertilizantes (N + P2O5 + K2O) para el 2026 de 202.1 millones de toneladas. Esto aumenta su valor comercial lo cual se traduce en altos costos de producción (IFA 2022). Por ello, se busca que la fertilización de suelos sea mediante el reciclaje de nutrientes que provienen de materiales de desecho, como los biosólidos, debido a que son ricos en nutrimentos.
Existe evidencia que dicha planta acumula As en sus tejidos cuando es sometida a altas concentraciones del As. Sin embargo, son pocos los estudios sobre la capacidad de esta especie para extraer As cuando se emplean biosólidos como abonos. Por lo anterior, el objetivo de este estudio fue evaluar la tolerancia y la capacidad de bioabsorción de As por las plantas de higuerilla en presencia de biosólidos.
Materiales y Métodos
El experimento se llevó a cabo en las instalaciones del Centro Nacional de Investigación Disciplinaria en Relación Agua, Suelo, Planta, Atmósfera (CENID-RASPA), del Instituto Nacional de Investigaciones Forestales, Agrícolas y Pecuarias (INIFAP), ubicado en la Cd. de Gómez Palacio, Durango (25° 35’ 21.85” N, 103° 27’ 9.65” O y 1100 m de altitud). El clima de esta región es BWhw, que se caracteriza por ser muy seco o desértico, semicálido con invierno fresco, y precipitación media anual de 240 mm, la temperatura media anual a la sombra es de 25 °C, con rangos de -1 °C a 44 °C (Santamaría-César, Reta, Chávez, Cueto y Romero, 2006).
Condiciones del experimento
El experimento se estableció en macetas de plástico de 24 L de capacidad en invernadero. Se utilizó riego controlado a un nivel de humedad entre 50-60%, para ello se calculó la pérdida de agua mediante tanque evaporímetro. Dicha agua fue de pozo, la cual tenía una concentración promedio de As de 0.25 mg L-1. Las semillas de higuerilla utilizadas fueron la variedad K 8SS. El suelo empleado se caracterizó de acuerdo al NOM 021 SEMARNAT 2000 (SEMARNAT, 2002). Este, mostró una textura franco-arenosa, pH de 8.7, conductividad eléctrica de 0.66 dS m-1 y concentración de nitrógeno inorgánico de 49.2 mg kg-1.
Los tratamientos evaluados fueron el resultado de la combinación de dos tipos de biosólidos y cuatro dosis de As, dando un total de ocho tratamientos. Dichos tratamientos fueron asignados de forma aleatoria a las unidades experimentales (maceta con 30 kg de suelo con una planta de R. communis) bajo un diseño experimental en bloques al azar con cuatro repeticiones cada uno.
Los biosólidos utilizados se recolectaron de dos plantas de tratamiento de agua residual ubicadas en Gómez Palacio, Durango, México. Los tipos de biosólidos fueron: biosólidos de lagunas de oxidación (BLO) y biosólidos de lodos activados (BLA), (Cuadro 1). La fuente de As que se utilizó fue Arsenito de Sodio (NaAsO2) y las dosis empleadas fueron: 0, 25, 50 y 100 mg kg-1. Previo a la siembra, el As se adicionó al suelo y se mezcló con los biosólidos respectivos para su homogenización. Ambos biosólidos se aplicaron como fuente de suministro de nutrientes, en forma principal nitrógeno, en una relación de concentración de 200 kg ha-1 (considerando un 40% de eficiencia por tratarse de un suelo arenoso).
Table 1: Chemical and biological characteristics of the biosolids used in the experiment.
| Parámetro | BLO | BLA |
| pH | 7.56 | 7.53 |
| Conductividad Eléctrica (CE dS m-1) | 2.53 | 3.65 |
| Materia Orgánica (MO%) | 38.01 | 56.83 |
| Nitrógeno Total Kjeldahl (NTK, %) | 1.23 | 2.24 |
| Fosforo (P, %) | 0.58 | 1.60 |
| Potasio (K, %) | 0.46 | 1.45 |
| Sodio (Na, %) | 0.14 | 0.45 |
| Calcio (Ca, %) | 5.18 | 4.58 |
| Magnesio (Mg, %) | 0.51 | 0.17 |
| Cobre (Cu, mg kg-1) | 184.43 | 130.60 |
| Hierro (Fe, mg kg-1) | 4269.5 | 3579.16 |
| Zinc (Zn, mg kg-1) | 732.26 | 955.70 |
| Manganeso (Mn, mg kg-1) | 283.93 | 148.00 |
| Plomo (Pb, mg kg-1) | 134.6 | 78.93 |
| Cadmio (Cd, mg kg-1) | 6.40 | 9.23 |
| Arsénico (As, mg kg-1) | 17.3 | 12.6 |
| Coliformes (NMP/4gST) | 46000 | 24000 |
| Salmonella (NMP/4gST) | 2400 | 1100 |
| Huevos de helminto (h/4gST) | 5 | 4 |
BLO = biosólidos lagunas de oxidación; BLA = biosólidos lodos activados; NMP = numero más probable; ST = solidos totales; h = huevos.
BLO = biosolids oxidation ponds; BLA = biosolids activated sludge; MPN = most probable number; TS = total solids; h = eggs.
El suelo empleado en el establecimiento del experimento se solarizó durante 15 días previos a la siembra, posteriormente se pesó. La siembra se realizó en suelo húmedo a capacidad de campo (CC) y se colocaron 3 semillas en cada maceta. Al alcanzar una altura de 20 a 25 cm se conservó una planta por maceta. El riego se aplicó de acuerdo a las condiciones de evaporación evaluadas y la demanda hídrica de las plantas.
La cosecha se realizó a los 107 días después de la siembra. Las plantas se fraccionaron en los diferentes órganos: raíz, tallo, hoja y semilla. Las muestras se lavaron con agua destilada para eliminar posibles contaminantes, después se secaron en un espacio abierto luego en una estufa de aire forzado a 65 °C, hasta llegar a peso constante. Las plantas secas se molieron en un molino Thomas Wiley, modelo Mini-Mill, con tamiz integrado de 1 mm de abertura. La concentración de As en cada órgano de la planta se determinó utilizando 0.5 g de muestra, las cuales fueron digeridas con HNO³ de alta pureza, en microondas con un sistema cerrado de viales de teflón XP-1500 PLUS (MARS X 7, Marca CEM). El contenido de As se determinó por espectrometría masas por plasma acoplado inductivamente (ICP-MS, Nexion7, Perkin Elmer) siguiendo las especificaciones del fabricante. Como protocolo de calidad se montaron muestras por triplicado y blancos, así como muestras de concentración conocida para evaluar el porcentaje de recuperación, el cual fue de 96.8±1.89%. A partir de la cuantificación de As se estimó el factor de translocación (FT) y el factor de bioacumulación (FB), de acuerdo con las fórmulas empleadas por Melo, Costa, Guilherme, Faquin y Nascimento (2009):
El análisis nutrimental se realizó en hojas. El contenido de N total por el método de combustión, en un analizador elemental (TruSpec CHN, LECO). El P fue medido por colorimetría por el método de metavanadato, y el contenido de K, Ca, Mg, Cu, Mn, Fe y Zn se cuantificaron por absorción atómica (AAnalyst 700, marca Perkin Elmer) a partir de una digestión ácida y empleando una solución de óxido de lantano (La2O3) al 5% como estabilizador para Ca y Mg (Isaac y Kerber, 1971; Wang et al., 2008).
El porcentaje de aceite en la semilla se determinó con el método Soxhlet. La extracción se realizó en una muestra de 5.0 g de semilla, empleando 200 mL de etanol como solvente por un tiempo de cuatro horas (Danlami Arsad y Zaini, 2015).
Los datos fueron analizados con el paquete estadístico SPSS versión 18 (IBM SPSS Statistics, 2009), mediante análisis de varianza, comparación múltiple de medias por la prueba de Tukey, análisis de regresión y análisis de Correlación de Pearson.
Resultados y Discusión
Producción de biomasa
El peso seco de hoja, tallo, raíz, y la producción de biomasa en las plantas de higuerilla no mostraron diferencia (P > 0.05). Lo cual, indica que tanto la concentración de arsénico como el tipo de biosólidos no afectaron el desarrollo de la planta en comparación con el testigo (Cuadro 2). Hubo diferencias (P = 0.038) en el rendimiento de aceite entre el tratamiento testigo y el tratamiento con BLA y 25 mg kg-1 de AS; dicho tratamiento incremento el rendimiento de aceite en 33.2% con respecto al rendimiento del tratamiento testigo.
Cuadro 2: Medias de los pesos secos y rendimiento de aceite de las plantas de higuerilla expuestas a diferentes dosis de As y tipos de biosólidos.
Table 2: Mean dry weights and oil yields of fig plants exposed to different doses of As and types of biosolids.
| Descripción | Dosis As | PS Hoja ns | PS Tallo ns | PS Raíz ns | Biomasa ns | Rendimiento | |
| mg kg-1 | - - - - - - - - - - - - -g planta-1 - - - - - - - - - - - - - - - | % | |||||
| 0 | 0 | 8.39± 1.65 | 4.52±1.23 | 1.92±0.92 | 16.33±2.18 | 30.51±6.87 b | |
| BLO | 0 | 11.19±4.1 | 6.22±1.88 | 4.82±2.87 | 18.69±5.18 | 35.83±2.83 ab | |
| 25 | 11.1±1.92 | 5.33±0.98 | 3.76±1.65 | 18.69±2.18 | 32.9±1.59 ab | ||
| 50 | 15.16±1.29 | 6.86±1.57 | 3.72±1.3 | 22.41±1.66 | 31.58±8.13 ab | ||
| 100 | 11.89±7.37 | 4.38±3.11 | 2.78±1.77 | 17.9±10.33 | 32.09±1.86 ab | ||
| BLA | 0 | 12.03±1.86 | 5.84±1.97 | 3.3±1.24 | 19.35±3.34 | 37.9±3.05 ab | |
| 25 | 11.88±2.52 | 7.79±4.16 | 4.92±2.91 | 19.37±7.49 | 40.64±4.24 a | ||
| 50 | 10.57±2.7 | 4.81±2.14 | 3.17±1.14 | 16.1±4.85 | 35.89±0.91 ab | ||
| 100 | 13.13±2.81 | 5.93±1.92 | 3.14±1.14 | 19.57±4.58 | 33.51±0.91 ab | ||
PS = peso Seco; BLO = biosólidos lagunas de oxidación; BLA = biosólidos lodos activados; ns = las diferencias entre los valores no fueron estadísticamente significativa.
PS = dry weight; BLO = biosolids oxidation lagoons; BLA = biosolids activated sludge; ns = differences between values were not statistically significant.
La biomasa de un cultivo es un factor esencial para evaluar los niveles de tolerancia a elementos tóxicos (Yeboah et al., 2020). Al respecto, metales como el Cd, Cu y Zn en cantidades excesivas se ha encontrado que afectan la producción de biomasa de higuerilla (Wang, Zhao, Guo y Zhou, 2016). Diversas investigaciones han reportado plantas sensibles y tolerantes a dichos elementos. Aquellas resistentes, desarrollan mecanismos de defensa en la presencia de elementos tóxicos, por ejemplo, al Arsénico. (Singh, Jha, Misra y Sharma, 2019; Singh, Misra y Sharma, 2021a) atribuyen dicha tolerancia a la inducción de la defensa antioxidante, ya que incrementó la activad de las enzimas Super Oxido Dismutasa (SOD) y Glutatión Peroxidasa (GPX), las cuales están relacionadas con la mitigación del estrés oxidativo. Los estudios sugieren que la variedad K8SS pudiera tener un alta activad de las enzimas SOD y GPX debido a que su biomasa no fue afectada sugiriendo tolerancia.
Extracción de arsénico
La combinación de biosólidos con As a concentraciones de 25, 50 y 100 mg kg-1 incrementó la extracción de As en hoja, tallo y raíz en planta de higuerilla. Al respecto, en raíz se encontró la mayor concentración de As (Cuadro 3). Se ha demostrado que genotipos de higuerilla son tolerantes a As, ya que llevan a cabo estrategias para combatir la toxicidad por arsénico como la quelación y la compartimentación de As en vacuolas de células de las raíces. Con ello, se tiene como resultado una menor acumulación de As en las hojas (Singh, Misra y Sharma 2021b). En nuestro estudio, la mayor acumulación de arsénico fue en las raíces, lo cual sugiere que esta variedad desarrollo dichas estrategias.
Cuadro 3: Concentración media de As en los diferentes órganos de la planta de higuerilla adicionada con biosólidos y diferentes concentraciones de As.
Table 3: Average concentration of As in the different organs of the fig plant added with biosolids and different concentrations of As.
| Descripción | Dosis As | Hoja | Tallo | Raíz | Suelo |
| - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - mg kg-1 - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - | |||||
| Testigo | 0 | 3.07±0.85 d | 0.972±0.57 e | 11.48±2.36 e | 9.210±0.60 e |
| BLO | 0 | 3.28±1.04 d | 0.667±0.53 e | 19.92±2.36 de | 10.18±0.70 e |
| 25 | 6.96±1.02 c | 8.379±2.49 d | 47.76±9.95 c | 14.49±0.60 d | |
| 50 | 22.58±1.41 ab | 19.67±3.28 cd | 100.54±14.3b | 24.57±1.72 c | |
| 100 | 25.68±2.19 ab | 39.93±1.57 a | 103.76±16.2b | 44.17±3.06 a | |
| BLA | 0 | 6.63±1.56 c | 1.33±0.41 e | 21.54±2.55 de | 9.17±0.51 e |
| 25 | 18.77±3.09 b | 8.38± .59 bc | 70.15±8.87 c | 15.89±0.94 d | |
| 50 | 22.58±3.71 ab | 22.23±2.79 abc | 105.45±15.7b | 24.79±5.22 c | |
| 100 | 30.75±1.78 a | 27.73±5.41 ab | 210.32±23.5 a | 35.81±0.72 b | |
La respuesta de la concentración de As en la hoja, tallo y raíz fue cuadrática. En la hoja se alcanza el máximo a los 100 mg kg-1 de As en el suelo (Figura 1A), en tanto que en tallo y raíz no se alcanzó el máximo con el rango de concentraciones empleadas en este estudio (Figura 1B y 1C).
En forma general la combinación de BLA más As tuvo mayor extracción de este metaliode hacia los diferentes órganos de la higuerilla (hoja, tallo y raíz) en comparación con la combinación de BLO más As (Figura 1). Estudios indican que al incrementar las concentraciones de fosforo disminuyen la absorción de As (Smith, Naidu y Alston, 2002; Saldaña-Robles et al., 2018), lo cual difiere con nuestros resultados, ya que encontramos que los BLA aportaron un mayor porcentaje de P en comparación con los BLO (Cuadro 1), esto está relacionado con la especiación del As utilizado en nuestro estudio, que fue arsenito y en los estudios comparativos se utilizó arsenato.
El valor de los factores de translocación (FT) y bioacumulación (FB) se muestran en el Cuadro 4. El FT fue inferior a uno, lo cual indica que en la higuerilla bajo estudio el As almacenado raíz no se traslocó a la parte aérea de la planta (Mellem, Baijnath y Odhav, 2012). No obstante, el factor de bioacumulación fue superior a uno en raíz. Esto es particularmente importante si tomamos en cuenta que la producción de biomasa y rendimiento de aceite no se afectaron en presencia de As, esto indica que la higuerilla es una planta tolerante a este metaloide.
Cuadro 4: Factor de Translocación y Bioacumulación de As en plantas de higuerilla adicionadas con biosólidos y diferentes concentraciones de As.
Table 4: Translocation and bioaccumulation factor of As in fig plants added with biosolids and different concentrations of As.
| Descripción | Dosis As | Factor de Translocación | Factor de Bioacumulación | |
| Parte aérea | Raíz | |||
| mg kg-1 | ||||
| BLO | 0 | 0.20 | --- | --- |
| 25 | 0.33 | 0.28 | 1.91 | |
| 50 | 0.45 | 0.43 | 2.01 | |
| 100 | 0.63 | 0.26 | 1.08 | |
| BLA | 0 | 0.38 | --- | --- |
| 25 | 0.46 | 0.75 | 2.81 | |
| 50 | 0.43 | 0.45 | 2.11 | |
| 100 | 0.30 | 0.31 | 2.10 | |
Concentración foliar de nutrimentos
En el Cuadro 5 se muestran las concentraciones de los macro y micronutrientes en respuesta a diferentes dosis de As y biosólidos. En este se observó un incremento de P, K, Zn y Mn en los tratamientos donde se utilizó BLO. Por otra parte, P, K, Ca, Mn y Zn mostraron diferencias por efecto de las dosis. Un estudio demostró que los niveles elevados de Cd y Pb afectan absorción de Ca, Cu, Fe, Mg, Mn y Zn en la raíz y el brote de higuerilla (Costa et al., 2012). A sí mismo, altas concentraciones de Ni afectan la absorción de minerales en plantas de higuerilla (Bauddh, K., & Singh, 2015). Por otra parte, concentraciones de 5000 mg L-1 de As no afecto la absorción Ca, Cu, N, P, Mn y Zn en higuerilla (Melo et al., 2009).
Cuadro 5: Medias y diferencias significativas de macro y micronutrientes en las hojas de higuerilla en respuesta a dosis As y Biosólidos De Lagunas de Oxidación (BLO) Y Biosólidos de Lodos Activados (BLA).
Table 5: Means and significant dif ferences of macro and micronutrients in fig leaves in response to As and Biosolids from Oxidation Lagoons (BLO) and Biosolids from Activated Sludge (BLA).
| Descripción | Dosis As | N | P | K | Ca | Mg | Cu | Fe | Zn | Mn |
| mg kg-1 | - - - - - - - - - - - - - - - % - - - - - - - - - - - - - - - | - - - - - - - - - - mg kg-1 - - - - - - - - - - | ||||||||
| BLO | 0 | 2.03 | 0.18 | 2.93 | 1.08 | 0.21 | 4.35 | 540.7 | 99.9 | 239.8 |
| 25 | 2.24 | 0.22 | 2.71 | 1.75 | 0.25 | 3.35 | 476.4 | 86.5 | 372.3 | |
| 50 | 2.25 | 0.15 | 2.59 | 1.26 | 0.12 | 4.6 | 307.3 | 102.9 | 396.7 | |
| 100 | 1.95 | 0.12 | 2.51 | 1.02 | 0.12 | 4.48 | 595.3 | 65.2 | 368.9 | |
| Promedio | 2.12 | 0.17 A | 2.69 A | 1.28 | 0.18 | 4.20 | 479.9 | 88.6 A | 344.4 A | |
| Coef. de correlación (r) | -0.161 | -0.404 | -0.546* | -0.209 | -0.589* | 0.169 | 0.09 | -0.582* | 0.253 | |
| BLA | 0 | 2.18 | 0.17 | 2.73 | 1.29 | 0.18 | 6.08 | 432 | 110.9 | 147.8 |
| 25 | 2.16 | 0.13 | 2.6 | 1.29 | 0.22 | 4.83 | 389.6 | 86.8 | 126.3 | |
| 50 | 2.15 | 0.08 | 1.93 | 0.98 | 0.12 | 4.88 | 345.8 | 52.3 | 102.8 | |
| 100 | 2.61 | 0.06 | 1.64 | 0.71 | 0.05 | 4.23 | 250 | 31.4 | 37.3 | |
| Promedio | 2.28 | 0.11 B | 2.23 B | 1.07 | 0.14 | 5.01 | 354.4 | 70.4 B | 103.6 B | |
| Coef. de correlación (r) | 0.380 | -0.728** | -0.628** | -0.832** | -0.640** | -0.359 | -0.412 | -0.829** | -0.721* | |
| Tratamiento | ns | ** | ** | ns | ns | ns | ns | ** | ** | |
| Dosis | ns | * | * | ** | ** | ns | ns | ** | ns | |
| Tratamiento x Dosis | ns | ns | ns | ns | ns | ns | ns | ** | ns | |
| Valor promedio adecuado en plantas† | 1.5 | 0.2 | 1.0 | 0.5 | 0.2 | 6 | 100 | 20 | 50 | |
r = coeficiente de correlación de Pearson; ns = diferencias no significativas; * P ≤ 0.05 y ** P ≤ 0.01. †Marschner (2012), valor promedio para un adecuado crecimiento de plantas.
r = Pearson correlation coefficient; ns = nonsignificant differences; * P ≤ 0.05 and ** P ≤ 0.01. †Marschner (2012), average value for adequate plant growth.
Las plantas necesitan nutrientes minerales para facilitar su crecimiento y desarrollo. La capacidad de las plantas para absorber estos nutrientes puede verse afectada cuando crecen en suelos contaminados por metales o metaloides (Yeboah et al., 2020; Samanta y Roychoudhury, 2022) como se observó en nuestro estudio, cuando se incrementó las dosis de As disminuyó la concentración de P, K, Ca, Mg y Zn. A pesar de lo anterior, la mayoría de los nutrimentos, con excepción de P, Mg y Cu fueron superiores al valor promedio para un adecuado crecimiento de plantas (Marschner, 2012).
Conclusiones
Bajo las condiciones experimentales del presente estudio, se concluye que la planta de higuerilla tiene capacidad fitoremediadora de As, debido a que mostró tolerancia a dicho metaloide, ya que la producción de biomasa y el rendimiento de aceite se mantuvieron en presencia de diferentes dosis de As. Lo cual podría ayudar para el aprovechamiento de suelos contaminados con dicho metaloide.
Contribución de los Autores
Conceptualización: U.F.V. Metodología: S.P.M.T. y U.F.V. Validación: M.R.J.S. y S.P.M.T. Análisis formal: S.P.M.T., U.F.V. y T.R.G. Investigación: S.P.M.T. Recursos: M.R.J.S. Curación de datos: P.M.T., U.F.V. y T.R.G. Escritura: preparación del borrador original, S.P.M.T.; escritura: revisión y edición, U.F.V., S.P.M.T., M.R.J.S., T.R.G., A.P.S. y R.T.C. Supervisión: A.P.S. y R.T.C. Administración del proyecto: M.R.J.S. Adquisición de fondos: M.R.J.S.
