nueva página del texto (beta)
Español (pdf)
Artículo en XML
Referencias del artículo
Traducción automática
Enviar artículo por email
Citado por SciELO 
Similares en
SciELO 
Permalink
Introducción
Las algas marinas se caracterizan por ser una rica fuente de biodiversidad ecológica y se consideran un recurso de nuevos compuestos activos (Negreanu-Pirjol et al. 2022). Contienen diversos metabolitos como alcaloides, policétidos, péptidos cíclicos, polisacáridos, florotaninos, diterpenoides, esteroles, quinonas, lípidos y gliceroles, los cuales tienen actividad pesticida (Hamed et al. 2018). Estas características describen el importante potencial que poseen las macroalgas para la obtención de productos comerciales como biocombustibles, fertilizantes, medicamentos de importancia farmacéutica, cosméticos y otros (Thirumaran et al. 2009, Gomez-Zavaglia et al. 2019). Diversos estudios han reportado que algunos antibióticos de algas, como bromofenoles, taninos, floroglucinol y terpenoides, tienen acción antinematodal (Mareggiani et al. 1998). Además, se ha encontrado que las betainas suprimen la fecundidad de los nematodos (Ghareeb et al. 2019). Dentro de la agricultura, el uso de éstos fitoquímicos naturales en la protección de cultivos ofrece un atractivo potencial como agentes nematicidas (Chitwood 2002). Actualmente, su uso se ha estudiado como alternativa a los nematicidas sintéticos, actuando como agente de control biológico contra el nematodo agallador (Meloiodgyne spp.), uno de los patógenos más severos en los cultivos agrícolas a nivel mundial (Archidona-Yuste et al. 2018).
En México, Baja California Sur, es el principal estado productor de albahaca con rendimiento de 8.5 t ha−1 (SIACON 2019). Este cultivo es altamente demandado por la industria cosmética, medicinal y culinaria (Taba et al. 2009). Pero su producción se ve reducida debido al daño causado por el nematodo agallador, al provocar hasta el 85% de daños en la producción agrícola, con pérdidas anuales de hasta 125 mil millones de dólares (Tileubayeva et al. 2021, Bui et al. 2022). Los síntomas incluyen agallas en raíces, por lo que las plantas pueden morir en caso de infestación severa (Sikora y Fernández 2005). El ciclo biológico, comienza a partir del huevo, que presentan alta resistencia a los nematicidas utilizados. Ya que éstos, se encuentran libres en el suelo o embebidos en una matriz gelatinosa, adherida a la raíz, cuando el nematodo emerge del huevo en estado juvenil, este es más agresivo y voraz, induciendo la formación de células gigantes llamadas agallas (Johnson 1986). Las alternativas de control comúnmente son los químicos, pero causan impacto negativo en el ambiente. Por consiguiente, el estudio de alternativas naturales efectivas y sustentables de bajo daño a los organismos benéficos y la nula emisión de bien en la estimulación del crecimiento vegetativo de cultivos agrícolas. Por lo anterior el objetivo del presente estudio es evaluar el efecto de cuatro macroalgas marinas en el control del nematodo agallador (Meloidogyne incognita) y su efecto bioestimulante en el crecimiento en albahaca.
Materiales y métodos
Área de estudio
Cuatro especies de algas marinas; Sargassum spp., Gracilaria spp., Ulva clalhrata y Ulva Lactuca fueron colectadas en la playa del municipio de La Paz, Baja California Sur (BCS), México (24° 08’ 32” LN 110° 18’ 39” LO) durante el periodo de 2021-2022.
Preparación de los extractos de las macroalgas
Se colectaron 10 kg de cada a orillas de playa y dentro del mar (1 m de profundidad) y se transportaron al laboratorio donde se sometieron a un triple lavado con agua de grifo para eliminar los residuos de sales e impurezas. Las macroalgas se extendieron en mesas metálicas con exposición directo al sol por tres días hasta presentar un secado homogéneo. El alga seca se trituró con un molino eléctrico (Modelo 4-E, Marca Straub) hasta obtener un polvo fino. Matraces Erlenmeyer con volumen de 500 mL se llenaron con macroalga fina y se agregó etanol al 96°, sin desnaturalizar hasta cubrir el material de la macroalga. Para luego sellarlos y llevarlos a agitación en un agitador rotatorio a 150 rppm (Brinkmann Rockermix 1030) por siete días. Posteriormente, el extracto se separó del alga utilizando papel filtro Whatman No.1 (Whatman International, Maidstone, England) y se evaporó en un rotavapor (Buchi B-480 Waterbath) a 40°C por cuatro días. Enseguida, el residuo seco se disolvió en etanol para obtener una muestra madre y conservar a 4°C.
Extracción de huevecillos de M. incógnita
El inoculo M. incognita se obtuvo de plantas de tomate (Lycopersicum solanum L. cv. Saladette) con agallamiento radicular. Las raíces con agallas se lavaron con agua corriente por tres veces para eliminar partículas de suelo adheridas. Para luego colectar 50 masas de huevecillos con una aguja fina estéril bajo microscopio estereoscópico (LABOMED LX 400) y depositarlas sobre tubos eppendorf estériles, que contenían 1 mL de agua destilada estéril.
Actividad nematicida del extracto de las macroalgas en la eclosión de huevecillos
Un bioensayo in vitro se llevó a cabo para evaluar la actividad nematicida del extracto de las cuatro macroalgas U. lactuca, U. clathrata, Gracilaria spp. y Sargassum spp. bajo tres dosis (1 000, 2 000 y 3 000 ppm). En tubos eppendorf que contenían 1 mL de agua destilada estéril y 50 masas de huevecillos, para agregar 1 mL de la solución concentrada de las macroalgas, en cada dosis correspondiente, mientras que Tubos eppendorf con 2 mL de agua destilada estéril que contenían huevos sirvieron como control. El nematicida sintético (Rugby, 1mL-1) se usó como control positivo. Los tratamientos, se incubaron a temperatura ambiente (28 ± 2°C) durante 48 h. Después del periodo de incubación, se contabilizó el número de juveniles eclosionados bajo un microscopio de luz (LABOMED LX 400). Seis tratamientos con tres replicas para cada concentración fueron aplicados en este experimento.
Efecto del extracto de macroalgas sobre la germinación, longitud de tallo y raíz
Para evaluar la eficacia del extracto de las macroalgas como bioestimulante en el crecimiento de albahaca, 20 semillas de albahaca fueron depositadas por 24 h en 1 mL de solución a base de cada uno de los extractos y sus dosis correspondientes. Un tratamiento control positivo con fertilizante sintético T17 (1 g L−1 ) fue agregado, así como el tratamiento control con solo agua. Las semillas tratadas y no tratadas (control) se colocaron en cajas Petri estériles, sobre papel filtro Whatman No. 4 previamente húmedo. Posteriormente se incubaron en una cámara de crecimiento convencional a temperatura de 28°C, humedad constante (80%) y fotoperiodo de 12 h luz/oscuridad por 15 días. Todos los días se contabilizó el porcentaje de germinación y al cabo de este tiempo, se midió la longitud de tallo y raíz de las plántulas en las cajas Petri. El experimento se estableció bajo un diseño completamente al azar, donde cada tratamiento tuvo cuatro repeticiones y cada repetición fue una caja Petri con 20 semillas.
Análisis fitoquímicos de las macroalgas
Mediante la metodología propuesta por Egbuna et al. (2018), se realizó un análisis fitoquimico de las macroalgas Sargassum spp. y U. lacttuca que fueron altamente tóxicos sobre los huevecillos de M. incognita en la prueba in vitro para determinar las diferentes familias con posible acción nematicida. Una muestra de alga seca y molida se separó en dos porciones de 50 g. Una porción de 50 g se maceró en 250 mL de etanol por cuatro días, seguido de tres ciclos de 15 minutos en ultrasonido. La mezcla se filtró y el filtrado se concentró bajo presión reducida para obtener los extractos crudos como una pasta viscosa. Para los extractos acuosos, otra porción de 50 g de alga seca molida se mezcló con 400 mL de agua destilada y se sometió a ultra sonicación por 60 min. La mezcla se filtró y el filtrado fue concentrado por liofilización.
Prueba de constituyentes químicos
Aproximadamente 1 mL de una solución de extracto crudo a concentración de 10 mg mL-1 en etanol se utilizó como base para la determinación de los constituyentes químicos a evaluar. En el caso de Alcaloides a la concentración antes señalada se leagregó 1 mL de reactivo de Dragendorff y la prueba fue positiva si muestra turbidez, o un precipitado naranja. Para la determinación de fenoles se agregaron 2-3 gotas de FeCl3 al 5% y la prueba fue positiva al presentar una coloración café, rojo, verde o azul oscuro. A la prueba de péptidos/proteínas se agregaron 2-3 gotas de CuSO4 al 2% seguido por 2-3 gotas de NaOH al 10% y la respuesta fue positiva si presenta una coloración rosa-violeta. Mientras que la determinación de fitoesteroles, se realizó en 1.5 mL de una solución de extracto crudo a concentración de 10 mg mL-1 en anhídrido acético y se agregaron 2-3 gotas de H2SO4 concentrado por las paredes del tubo de ensayo. La prueba es positiva al presentar una coloración verde esmeralda. Para el caso de las saponinas, a un volumen de una solución de extracto crudo a concentración de 10 mg ML-1 en etanol se agregaron 9 volúmenes de agua destilada. La mezcla se agitó vigorosamente y se dejó reposar por 5 minutos. Para obtener una prueba positiva se debe presentar una persistencia de espuma.
Resultados
En relación al efecto de los cuatro tipos demacroalgas evaluadas sobre la eclosión de huevecillos de Meloidogyne spp. específicamente en la dosis de 1 000 ppm, se observó que las macroalgas mostraron diferencias significativas entre ellas y los tratamientos control (Figura 1 y 2). Donde el tratamiento de U. clalhrata y U. latuca tuvieron el mayor efecto de inhibición en la eclosión de huevecillos al presentar cero juveniles de nematodos, lo cual mostró diferencias significativas con respecto a los tratamientos de Sargassum spp. y Gracilaria spp. que siguieron en orden de menor eclosión de nemato dos con 50 y 75 juveniles mL−1 de la solución con respecto al tratamiento nematicida y agua, donde el nematicida presentó150 nematodos, mientras que el tratamiento control agua mostró una eclosión de 1400 juveniles mL −1 de solución.
Figura 1 Efecto de las dosis 1000, 2000 y 3000 ppm de las macroalgas sobre la eclosión de huevecillos.
Figura 2 Efecto de macroalgas sobre la eclosión de huevecillos. A) Juvenil en huevecillo sin eclosionar, B) Huevecillo eclosionado, C) Huevecillo en etapa de mitosis D) Huevecillo con daño celular en su formación y E) Juvenil eclosionado.
La dosis de 2 000 ppm de las macroalgas generó una respuesta diferencial en los resultados sobre la eclosión de los huevecillos de M. incognita (Figura 1). Los resultados mostraron que bajo esta dosis las cuatro macroalgas generaron la menor eclosión de huevecillos, y no presentaron diferencias significativas entre ellas, pero si con respecto al tratamiento del nematicida comercial y el control con agua. Se observó que, dentro de las macroalgas, en el tratamiento Sargassum spp., tuvo el menor número de juveniles eclosionados al presentarse dos nematodos mL−1 , seguido de la macroalga U. lactuca, Gracilaria spp. y U. clathrata con 6, 8 y 13 nematodos mL−1 de la solución con extractos. Mientras que el tratamiento nematicida químico registró 150 juveniles mL−1, mostrando diferencias significativas con las cuatro macroalgas y el tratamiento contras que el tratamiento nematicida químico registró 150 juveniles mL−1, mostrando diferencias significativas con las cuatro macroalgas y el tratamiento con el número de huevecillos eclosionados disminuyo en los cuatro tratamientos a base de las macroalgas, siendo el extracto a base de Sargassum spp. el que provocó la mayor acción de inhibición a diferencia de la respuesta en la dosis de 1000 ppm.
En la dosis de 3 000 ppm, el efecto nematicida fue mayor en el tratamiento del extracto de la macroalga Sargassum spp. teniendo una respuesta mayormente efectiva con respecto a las dosis de 1000 y 2 000 ppm (Figura 1). Este tratamiento tuvo cero nematodos juveniles en la muestra evaluada. En orden de eficacia en la eclosión le siguieron los tratamientos de U. clalthrata y U. lactuca al registrar 2 y 6 juveniles en las muestras, respectivamente. Seguido por el extracto de Gracilaria spp. al presentar 12 nematodos en la solución. Todas las macroalgas mostraron diferencias significativas con respecto al tratamiento químico y el control agua.
Para porcentaje de germinación, se observó que el análisis no mostró diferencias significativas entre los tratamientos y sus controles en las respectivas dosis de 1 000, 2 000 y 3 000 ppm evaluadas (Figura 3 y 4). Pero los resultados mostraron que, bajo las tres dosis, las macroalgas destacaron más con respecto al tratamiento fertilizante y control agua, no así con el tratamiento nematicida, en el cual se observó un efecto de estimulación mayor que el resto de los tratamientos. Dentro de las macroalgas, el género Gracilaria spp. fue constante al presentar hasta 9% más germinación que los otros extractos, seguido de Sargassum spp. El tratamiento nematicida también presentó un porcentaje de germinación alto (70%), mientras que el fertilizante (58%) y el control agua (56%) mostraron una menor germinación. En la dosis de 1 000 ppm, la macroalga Gracilaria spp. Presentó un porcentaje mayor (68%) de germinación, seguido de Sargassum spp. y U. lactuca (62%). Mientras que en U. clalthrata el porcentaje de germinación fue reducido 57%). Para el caso de la respuesta de la semilla en la dosis de 2 000 ppm, U. clathrata tuvo la mayor germinación (80%), seguido de Gracilaria spp. (75%). Mientras que Sargassum spp. y U. Lactuca registraron el menor valor (73 y 55%, respectivamente). En la dosis de 3 000 ppm, los datos fueron muy similares al registrar mayor valor Clathrata spp. (68%), seguido de Sargassum spp. (66%), mientras que Gracilaria spp. (65%) y U. lactuca (64%) presentaron valores menores valores de germinación.
Para la relación de longitud de tallo y raíz, los resultados oscilaron entre 1.68 y 2.59 cm, mientras que para la raíz estuvieron entre 1.28 y 1.92 cm (Tabla 1). En la dosis de 1 000 ppm, en el caso de la longitud de tallo, el extracto de U. lactuca mostró diferencias significativas con el tratamiento correspondiente a Gracilaria spp., donde U. lactuca registró un valor mayor en longitud, mientras que Gracilaria spp. Tuvo la menor. Pero para U. lactuca fue igual estadísticamente con el resto de los tratamientos, donde en orden de mayor valor fue para Sargassum spp., seguido por el control agua, presentando los menores valores, el tratamiento nematicida, U. clathrata y fertilizante. En dosis de 2 000 y 3 000 ppm, los tratamientos no presentaron diferencias significativas entre éstos. Aunque los extractos mostraron respuesta similar entre ellos, el efecto de las dosis presentó diferencia en el crecimiento de tallos tratados con los extractos a base de Gracilaria spp. y U. clathrata al registrar un mayor valor respecto a la dosis de 1 000 ppm. Pero no se observó el mismo efecto en U. lactuca y Sargassum spp.
Tabla 1 Datos referentes al efecto del extracto de las macroalgas sobre la longitud de Tallo y Raíz en albahaca.
| Tratamientos | Tallo (ppm) | Raíz (ppm) | ||||
|---|---|---|---|---|---|---|
| 1000 | 2000 | 3000 | 1000 | 2000 | 3000 | |
| Gracilaria spp. | 1.68 ± 0.24b | 2.09 ± 0.34a | 2.38 ± 0.13a | 1.74 ± 0.67a | 1.83 ± 0.50a | 1.28 ± 0.33a |
| Ulva clathrata | 1.95 ± 0.30ab | 2.15 ± 0.11a | 2.32 ± 0.26a | 1.3 ± 0.15a | 1.61 ± 0.26a | 1.68 ± 0.22a |
| Ulva lactuca | 2.59 ± 0.23a | 2.21 ± 0.25a | 2.23 ± 0.23a | 1.92 ± 0.55a | 1.71 ± 0.30a | 1.31 ± 0.22a |
| Sargassum spp. | 2.40 ± 0.44ab | 1.94 ± 0.33a | 2.08 ± 0.20a | 1.28 ± 0.16a | 1.46 ± 0.34a | 1.38 ± 0.22a |
| Nematicida | 1.99 ± 0.18ab | 1.99 ± 0.18a | 1.99 ± 0.18a | 1.45 ± 0.38a | 1.45 ± 0.38a | 1.45 ± 0.38a |
| Fertilizantes | 1.79 ± 0.41b | 1.79 ± 0.41a | 1.79 ± 0.41a | 1.48 ± 0.38a | 1.48 ± 0.38a | 1.48 ± 0.38a |
| Agua | 2.24 ± 0.37ab | 2.24 ± 0.37a | 2.24 ± 0.37a | 1.69 ± 0.37a | 1.69 ± 0.37a | 1.69 ± 0.37a |
Medias con la misma letra dentro de cada columna son estadísticamente iguales (Tukey, p ≤ 0.05).
En relación con las pruebas cualitativas realizadas para detectar las diferentes sustancias fitoquimicas, se observó que mostraban similitud en la presencia de algunos compuestos (Tabla 2). Como el grupo de sustancias asociadas a alcaloides, donde Ulva latuca, Ulva clathrata, Sargassum spp. y Gracilaria spp tuvieron respuesta positiva, pero en mayor proporción las macroalgas Sargassum spp. Y Gracilaria spp. Para los Fenoles totales la mayoría de las macroalgas presentaron este tipo de sustancia, excepto la macroalga U. calthrata que mostró una respuesta negativa en la prueba cualitativa. Para los péptidos y/o proteínas, ninguna de las macroalgas mostró presencia de este tipo de componente en los extractos. Mientras que en los fitoesteroles la respuesta positiva de la presencia de esta sustancia fue expresada en U. lactuca, Gracilaria spp. Mientras que en el caso de Sargassum spp., los fitoesteroles se observaron con una mayor proporción; mientras que U. clathrata tuvo respuesta negativa. Para las Saponinas, U. lactuca y U. clathrata presentaron respuesta negativa, a diferencia de Sargassums.pp. y Gracilaria spp. que tuvieron respuesta positiva, y la última mostró una proporción incrementada.
Tabla 2 Datos de pruebas cualitativas de las cuatro macroalgas
| Fitoquimicos | Macroalgas Marinas | |||
|---|---|---|---|---|
| U. lactuca | U. clathrata | Sargassum | Gracilaria | |
| Alcaloides | + | + | ++ | ++ |
| Fenoles | + | - | + | + |
| Péptidos/proteínas | - | - | - | - |
| Fitoesteroles | + | - | +++ | + |
| Saponinas | - | - | ++ | +++ |
Positivo (+) = Presencia de fitoquímico. Negativo (-) = Ausencia de fitoquímico.+ = Proporción baja, ++ = Proporción media y +++ = Proporción alta.
Discusión
Las macroalgas principalmente de las especies de Ulva lactuca y U. clathrata tienen desde concentraciones bajas, compuestos metabólicos con acción antimicrobiana, la cual pudo estar asociado con la inhibición de la eclosión de los huevecillos de nematodos. Al respecto, Ali et al. (2019), señalan que algunos extractos de macroalgas pueden tener actividad contra la fecundidad. Así mismo, diversos estudios sugieren que las macroalgas pueden ser utilizadas para proteger a las plantas del estrés biótico debido a que poseen compuestos asociados a fucoidanos y alginatos, los cuales actúan como elicitores para activar la defensa de las plantas. También, Williams et al. (2021), mencionan que los extractos de macroalgas se han usado por décadas en la agricultura como bioestimulantes, y que también pueden ser utilizados para reducir la ocurrencia del daño ocasionado por el Meloidogyne spp; indicando que los extractos de macroalgas reducen la abundancia del nematodo agallador y que los factores que afectan su eficacia son las especies de macroalgas y el cultivo. Además, los resultados obtenidos coinciden con los reportados por Ghareeb et al. (2019), quienes también evaluaron especies de macroalgas dentro de las que destaca el género Ulva, donde analizaron in vitro el efecto nematicida del extracto de Ulva fasciata Delile, Corallina mediterranea y Corallina officinalis sobre la eclosión de huevecillos y la mortalidad del segundo estado juvenil de Meloidogyne incognita encontrando que las concentraciones aplicadas inhibieron la eclosión de los huevecillos y que el extracto del alga Ulva fasciata Delile mostró la mayor actividad en decremento de la eclosión de huevecillos con 87% de inhibición.
Para la dosis de 2000 ppm se observó que el número de huevecillos eclosionados disminuyó en los cuatro tratamientos con macroalgas, siendo el extracto de Sargassum spp. el que provocó la mayor acción de inhibición en el número de juveniles eclosionados a diferencia de la respuesta en la dosis de 1000 ppm. Esto podría estar relacionado a la acción de los componentes químicos de Sargassum spp. Sean eficientes a dosis incrementadas, debido a la potencialización de sus reacciones sobre la estructura de los huevecillos de Meloidogyne spp. Estos resultados coinciden con los reportados por Khan et al. (2018), quienes evaluaron in vitro la actividad nematicida de 32 macroalgas sobre la eclosión de Meloiodgyne javanica y la mortalidad larval y obtuvieron que Sargassum tenerrimum se encontraba dentro de las especies de algas que presentaron mayor inhibición en la eclosión de huevecillos al registrar un 96% en agua y extracto de metanol al 10% después de 72 h de exposición. La respuesta de los extractos en la dosis de 3 000 ppm, evidenció en algunos de los casos que su actividad se incrementaba. En el caso de Sargassum spp. y U. lactuca, al incrementar la dosis del extracto se tuvo la mayor inhibición en la eclosión de huevecillos, lo cual se considera respuesta positiva y en relación a ello. Al respecto, Pasqua y Melillo (2021) reportan que U. lactuca, Sargassum muticum, Sargassum tenerrimum, Sargassum swartzii, Sargassum vulgare y Sargassum wigbtii tienen actividad contra Meloidogyne javanica e incognita.
Los resultados mostran que las macroalgas no presentaron una respuesta positiva para la germinación, al verse ésta disminuida o retrasada en la mayoría de los extractos. Caso contrario a lo que señala Santaniello et al. (2017) quienes reportan que los extractos de macroalgas en las plantas mejoran el desarrollo del cultivo y la producción, además de estimular la germinación y aumentar la resistencia a factores bióticos y abióticos. Los resultados, obtenidos, muestran y confirman el efecto que poseen algunas macroalgas como U. Lactuca en la estimulación del crecimiento de las plantas, lo cual coincide con la definición reportada por du Jardi (2015), quien menciona que el extracto de macroalgas es considerado como un estimulante orgánico y natural para el crecimiento vegetal. Debido a que el extracto de macroalgas consiste en una mezcla de sustancias activas biológicamente que actúan sobre el proceso del metabolismo celular de las plantas tratadas que consecuentemente conducen a efectos benéficos en las mismas (Yusuf et al. 2012).
Diversos estudios señalan que, entre las macroalgas marinas, los extractos de las macroalgas cafés han generado gran interés e importancia y se han usado en la agricultura moderna, sustentable y orgánica como un estimulante en el crecimiento de las plantas o como biofertilizante (Craigie, 2011). Esto puede ser atribuido a la presencia de una gran cantidad de fitohormonas naturales, así como un mayor contenido de micro y macronutrientes a diferencia de otro tipo de macroalgas (Hernández Herrera et al. 2014). Los resultados obtenidos en este estudio, coinciden con lo reportado por Mahmoud et al. (2019), quien evaluó el extracto de Sargassum vulgare para incrementar el crecimiento, la producción y la calidad nutricional de plantas de rábano, donde obtuvieron resultados positivos al registrar que las semillas incubadas en el extracto mostraron los mayores valores significativos en todos los caracteres medidos.
Las pruebas cualitativas demostraron que las cuatro macroalgas poseen componentes químicos diversos a distintas proporciones. Al respecto, otros estudios han confirmado que los organismos marinos producen miles de productos químicos, y cada año se siguen descubriendo cientos de nuevos compuestos (Romano et al. 2017). Al respecto, Stirk et al. (2014) señala que los extractos de las macroalgas poseen sustancias activas que actúan como estimuladores, como polifenoles, polisacáridos, alginatos, poliaminas, pigmentos, aminoácidos libres, betainas y vitaminas. Así mismo, Romano et al. (2017), reporta que hay un interés constante en explorar el hábitat marino en busca de nuevos productos farmacéuticos, ya que gracias al avance en las tecnologías de cultivo y en las técnicas de biología molecular se han logrado identificar varios compuestos. Sobre lo mismo, Echave et al. (2021), señalan que las algas marinas son explotadas industrialmente para la obtención de pigmentos, polisacáridos o compuestos fenólicos con aplicación en diversos campos. Además, su rica composición en fibra, minerales y proteínas, las ha señalado como una fuente útil de estos componentes. Aunque todos los extractos mostraron una respuesta positiva en las pruebas cualitativas, la mayor intensidad de color se presentó en el extracto de Sargassum spp. y Gracilaria spp. Al respecto, Cassio et al. (2020), menciona que, aunque las algas marinas son una fuente de varios compuestos bioactivos, pocos estudios han descrito y caracterizado la actividad de los alcaloides de algas marinas.
En relación a fenoles, la mayoría de los extractos de macroalgas presentaron esta pigmentación con excepción de U. clathrata. Al respecto, Cotas et al. (2020), señalan que las algas marinas son una valiosa fuente de compuestos polifenólicos como florotaninos, bromofenoles, flavonoides, terpenoides fenólicos y aminoácidos similares a las micosporinas, siendo los florotaninos la clase polifenólica principal que se encuentra en las algas pardas marinas. Así mismo Gómez-Guzmán et al. (2018), reporta que la mayor proporción de compuestos fenólicos presentes en las algas verdes y rojas son bromofenoles, flavonoides, ácidos fenólicos, terpenoides fenólicos y aminoácidos similares a las micosporinas. Estas moléculas se consideran metabolitos secundarios, ya que son agentes protectores que se producen en respuesta a diferentes estímulos y son mecanismos de defensa de las algas frente a la herbivoría y la radiación UV.
Con respecto a péptidos y proteínas se pudo observar que los extractos no presentaron la coloración de rosa-violeta, sino que su expresión en la pigmentación fue más con tendencia a un color turbio u oscuro. Los resultados son consistentes con lo reportado por Echave et al. (2021), quien menciona que el contenido de proteína en las algas marinas es variable entre las algas rojas (Rhodophyta), marrones (Ochrophyta) y verdes (Chlorophyta) y que en el caso de las algas rojas se consideran la fuente de proteínas más destacada, con un contenido de proteína que representa entre el 19 y 44% del peso seco, mientras que las verdes y las marrones presentan cantidades de proteína más bajas, alrededor del 10 o 20% del peso seco, respectivamente. Estos compuestos bioactivos, se usan en la agricultura como acondicionadores del suelo. También se ha confirmado que los polisacáridos de macroalgas se utilizan como quelantes de iones metálicos y poseen grupos funcionales que tienen la capacidad de unirse a algunos microelementos con un valor nutricional importante para las plantas. Además, actúan como reguladores de crecimiento de plantas bajo condiciones de estrés mejorando el rendimiento y la productividad los cultivos (Hamed et al. 2018).
Conclusiones
El extracto de la macroalga marina Sargassum spp., presentó la mayor actividad nematicida sobre la eclosión de huevecillos de Meloidogyne incognita y generó igual o mayor efecto en el porcentaje de germinación que el control con agua. Mientras que U. lactuca estimuló el crecimiento de tallo, mientras que Sargassum spp. y registró el contenido más alto de fitoquimicos. Los resultados demuestran el efecto benéfico de los extractos derivados de macroalgas marinas para el control de nematodos fitopatógenos como Meloidogyne incognita.
