INTRODUCCIÓN
Los sistemas de producción pecuarios, desarrollan formulaciones dietéticas empleando aditivos alimenticios que tienen potencial de modificar el entorno ruminal mejorando o inhibiendo poblaciones microbianas específicas, se han utilizado probióticos para mejorar la microbiota del rumen, la cual es responsable de la degradación de celulosa y hemicelulosa, que permite a los rumiantes se alimenten del consumo de pastos y forrajes, además los probióticos se pueden usar para modular la fermentación del rumen y la microbiota nativa, ya que son una fuente de microorganismos potencialmente útiles (Fraga et al., 2014).
Los probióticos microbianos (Saccharomyces cerevisiae, Lactobacillus plantarum y Bacillus subtilis) utilizados en rumiantes mejoran la ingesta de materia seca y la productividad, la levadura S. cerevisiae es importante y se sabe que su inclusión en las dietas mejora la utilización de forrajes de mala calidad (Shriver-Munsch et al., 2011; Khattab et al., 2020), aumenta la digestibilidad de la fibra y estabiliza el pH del rumen (Moallem et al., 2009; Degirmencioglu et al., 2013; Meller et al., 2014; Khattab et al., 2020).
Lactobacillus plantarum mejora la ingesta de nutrientes, el rendimiento del crecimiento y la fermentación ruminal en corderos (Izuddin et al., 2019; Khattab et al., 2020). Qiao et al. (2010) mencionaron que B. subtilis en corderos redujo la incidencia de diarrea, aumentó la ingesta de materia seca y ganancia diaria de peso antes del destete. Los probióticos influyen en el tracto intestinal con la simbiosis de bacterias beneficiosas, sobre la salud del huésped que también puede implicar la estimulación del crecimiento y contribuyen a una mayor productividad (Markowiak & Ślizewska, 2018).
La concentración de las poblaciones microbianas que viven en el rumen en anaerobiosis, específicamente para bacterias, protozoarios y hongos son de 1010 células/mL, 106 células/mL y 104 células/mL respectivamente (Jouany, 1994; Cardona-Iglesias et al., 2017). Para permitir que los organismos de crecimiento lento; tales como los hongos y protozoarios ruminales puedan reproducirse, se necesita permanencia prolongada del alimento dentro del rumen por periodos de 48 a 72 horas y sostener así la concentración de las poblaciones microbianas (McAllister et al., 1994, Gharechahi et al., 2021). Castillo-Lopez & Domínguez-Ordóñez (2019), Castillo-Lopez et al. (2014) y Petri et al. (2012) reportan que mediante la utilización de la secuenciación de ADN de alto rendimiento han revelado la presencia de 13 principales filos bacterianos en el rumen, que incluyen 40 órdenes bacterianos, alrededor de 80 clases de bacterias, y por lo menos 180 familias bacterianas, unos 320 géneros de bacterias y más de 2,000 unidades taxonómicas bacterianas operativas. La densidad bacteriana en el rumen se encuentra en el rango de 107 a 1010 células/mL de líquido ruminal (McAllister et al., 1994, Gharechahi et al., 2021). Castillo-Lopez & Domínguez-Ordóñez (2019), Castillo-Lopez et al. (2014) y Petri et al. (2012) El género de bacterias ruminales más abundantes es de Prevotella, que representa el 20% de la comunidad bacteriana (Castillo-Lopez & Domínguez-Ordóñez, 2019).
Si bien el número de géneros de protozoarios es menor que el de las bacterias, los protozoarios son físicamente más grandes que estas y pueden constituir aproximadamente la mitad de la biomasa microbiana ruminal total. De los protozoarios se han identificado más de 20 especies cuya concentración en el rumen es de aproximadamente 106 células/mL de líquido ruminal (Martin, 1994; Bodas et al., 2012; Castillo-Lopez & Domínguez-Ordóñez, 2019).
Fibrobacter succinogenes es una especie dominante en el sistema gastrointestinal de los animales herbívoros, se caracteriza por ser una bacteria Gram negativa, anaeróbica y con capacidad de degradar la fibra y en mayor cantidad (Kobayashi, 2006; Jun et al., 2007). Esta bacteria, que también es una de las dos únicas especies cultivadas, es degradadora eficiente de la celulosa. Específicamente, tiene una actividad particularmente alta contra la celulosa cristalina que requiere un contacto físico cercano con este sustrato (Suen et al., 2011). Por lo tanto, el objetivo fue identificar y evaluar por conteo y PCR punto final bacterias y protozoarios ruminales presentes en ovinos suplementados con biopreparado de microorganismos (PNC) vs probiótico comercial REVET® (PCRE) a diferentes concentraciones.
MATERIAL Y MÉTODOS
Diseño experimental para los animales
El experimento se realizó en la comunidad el Remolino, municipio de Juchipila, Zacatecas, México, localizada entre 103˚07’26.15’’ N y 21˚21’48.10’’ O, a 1220 msnm. El estudio se realizó en la temporada de estiaje (temporada seca con altas temperaturas promedio de 38-40°C) inicia a finales del mes de marzo y termina con las primeras lluvias de junio. Incluyó 21 corderos de pelo en crecimiento, cruza de Katahdin X Dorper, sanos, con edad de 59 ± 5 días, con pesos promedio de 14.3 ± 1.7 kg, alojados en condiciones homogéneas en corraletas individuales de malla de alambre, comederos de canoa, cubeta de 20 litros como bebedero para cada corraleta, la suplementación con las diferentes dosis del biopreparado probiótico no comercial y probiótico comercial REVET® fue adicionada en el agua, la cual estaba ad libitum (El-Sayed & Mousa, 2020). Los ovinos en crecimiento fueron asignados en dos grupos y distribuidos como se indica en el cuadro 1. Se suministró una dieta a base de rastrojo de maíz molido 70%, alfalfa molida 15%, grano de maíz 5%, melaza 8%, bicarbonato 1.5%, premezcla de vitaminas y minerales 0.1%, sal común 0.4%. Las unidades experimentales fueron sometidos a un periodo de adaptación durante 17 días, previo a la temporada de estiaje, de marzo a junio.
Tratamientos | % Dosis | Cantidad de animales |
---|---|---|
T1 PNC | 100% de la dosis recomendada en 6 L de agua + dieta | 3 |
T2 PNC | 66% de la dosis recomendada en 6 L de agua + dieta | 3 |
T3 PNC | 33% de la dosis recomendada en 6 L de agua + dieta | 3 |
T4 testigo | 0% de la dosis recomendada en 6 L de agua + dieta | 3 |
T5 PCRE | 100 % dosis recomendada en 6 L de agua + dieta | 3 |
T6 PCRE | 66 % dosis recomendada en 6 L de agua + dieta | 3 |
T7 PCRE | 33% dosis recomendada en 6 L de agua + dieta | 3 |
PNC: biopreparado de microorganismos. PCRE: probiótico comercial REVET®.
Preparación del biopreparado de microorganismos (PNC) sólido
Para la elaboración del PNC sólido se mezclaron en un barril de plástico con capacidad de 100 litros, 40 kg de salvado de trigo, 20 kg de probiótico forestal (materia orgánica en descomposición) el cual contenía los microorganismos eficientes sólidos (biopreparado); solución de 0.5 kg de melaza en cinco litros de agua. El contenedor se abrió cada dos o tres días para liberar gases generados en los 30 días que tardó el PNC en estar listo y como lo señala Kyan et al. (1999).
Elaboración de PNC líquido
Para elaborar el PNC líquido se tomaron 8 kg de PNC sólido, se colocaron envueltos en una manta y se introdujeron en 100 L de agua con 5 kg de melaza, se dejó reposar por dos horas (Kyan et al., 1999) transcurrido el tiempo estuvo listo para ser utilizado. Posteriormente se caracterizó el contenido de microorganismos mediante el uso de medios selectivos sembrados en placa. El PNC de administración contenía: mesófilos 1.94x107 UFC/100mL, Lactobacillus sp. 1.6x106 UFC/100mL, Staphylococcus aureus 4.2x104 UFC/100mL, Candida sp. 5.5x103 UFC/100mL, E. coli 1.18x106 UFC/100mL, hongos 4.0x105 UFC/100mL y levaduras 4.27x107. En el cuadro 1 se observa el suministro del PNC en los distintos tratamientos.
Preparación del probiótico comercial REVET® (PCRE) líquido
El probiótico de administración coadyuba al equilibrio de microorganismos intestinales en ovinos, previene la disfunción ruminal, aumenta la síntesis microbiana, mantiene el equilibrio y las condiciones óptimas de la flora del rumen, las dosis recomendadas por el fabricante es 3 g por día en ovinos, los cuales se diluyeron en 6 litros de agua (100%), 1.32 g diluyéndose en 6 litros de agua (66%) y 0.99 g diluyéndose en 6 litros de agua (33%). De acuerdo con las especificaciones del proveedor contiene Lactobacillus acidophilus 7.3x1018 UFC/100mL, Streptococcus faecium 1.1x106 UFC/100mL y Saccharomyces cerevisiae 3.6x1011 UFC/100mL. El probiótico se ofreció en los 6 litros de agua todos los días a las 08:00 horas.
Obtención del líquido ruminal
El líquido ruminal se obtuvo por medio de una sonda ruminal de 0.5” y 1m de largo unida a una jeringa. El experimento duró 110 días; de los cuales los tiempos de muestreo fueron m1 (tiempo 0), m2 (30 días), m3 (60 días) y m4 (110 días); el muestreo m3 se realizó cada 6 horas en ocho intervalos de tiempo (0, 6, 12, 18, 24, 30, 36 y 48 horas). Se recolectaron aproximadamente 30 mL de líquido ruminal.
Obtención y cuantificación de bacterias y protozoarios
El líquido ruminal obtenido se mezcló y filtró para obtener una muestra homogénea y se filtró. Con una pipeta se extrajo 1mL de líquido ruminal, al cual se le adicionaron 9 mL de solución salina con formalina al 10%, posteriormente, las muestras se refrigeraron para su posterior análisis, de esta última solución se obtuvieron 2 mL y se le adicionaron 8 mL de agua destilada lo cual se centrifugó a 2000 xg durante 20 minutos, del sobrenadante se tomó una muestra para hacer el conteo en la cámara de Neubauer apoyándose de un microscopio marca Carl Zeiss a 40X.
PCR punto final
Bacterias totales, Fibrobacter succinogenes y hongos anaerobios ruminales se identificaron por PCR punto final; el método consistió en obtener líquido ruminal a través de una sonda 0.5” y 1m de largo unido a una jeringa, esta alícuota fue conservada a 20°C para su posterior procesamiento en el laboratorio. La extracción de ADN se realizó con el kit Ultra Clean Microbial ADN Isolation de MO BIO Laboratories Inc y su cuantificación se llevó a cabo en un espectrofotómetro (NanoDrop ND-1000 LabTech), su pureza fue determinada considerando relaciones de absorbancia de 260/280 y 260/230 nm (Green et al., 2012; Daza et al., 2014).
Se realizaron diluciones del ADN extraído de cada muestra, a fin de colocar concentraciones equimolares de 50 ng/µL. La secuencia de los oligonucleótidos empleados se muestra en el cuadro 2 además del peso molecular de cada fragmento.
Especies de destino | Secuencia de oligonucleótidos | pb |
---|---|---|
Bacterias totales | f- CGGCAACGAGCGCGAACCC r- CCATTGTAGCACGTGTGTAGCC | 130 |
Fibrobacter succinogenes | f- GTTCGGAATTACTGGGCGTAAA r- CGCCTGCCCCTGAACTATC | 121 |
Anaerobic fungi | f- GAGGAAGTAAAAGTCGTAACAAGGTTTC r- CAAATTCACAAAGGGTAGGATGATT | 120 |
La mezcla de PCR tuvo un volumen final de 25 µL, la cual contenía: amortiguador de reacción 1X (Tris-HCl 20 mM pH 8.4, KCL 50 mM (Invitrogen®)), MgCl2 1.2 mM (Invitrogen®)), MgCl2 1.25mM (Invitrogen®), dNTPs 0.25 µM (Invitrogen®), cada primer 0.5 µM de, Platinum Taq DNA Polymerase 1U (Invitrogen®), y agua de ámpula. Para evitar contaminación la mezcla de la reacción se llevó a cabo en campana de flujo laminar (FH1200). Los productos amplificados se sometieron a electroforesis en una cámara horizontal (Thermo® EC 330) en geles de agarosa al 0.8% en TAE 1X con bromuro de etidio, utilizando como marcador de referencia Wide Range DNA Marker de 250 a 10,000 pb (Sigma-Aldrich®).
Análisis estadístico
Se realizo un análisis de contrastes ortogonales y la prueba de chi cuadrada en el programa SAS (SAS, 2011), para el conteo de protozoarios y bacterias se utilizó el procedimiento GENMOD de SAS (Castañeda et al., 2021).
RESULTADOS Y DISCUSIÓN
Las bacterias, protozoos y hongos que conforman el ecosistema ruminal difieren en sus requerimientos de nutrientes y en su metabolismo (Bach et al., 2005; Rodríguez et al., 2007; Matthews et al., 2018). Las bacterias del rumen anaeróbico, los protozoos y los hongos degradan el material fibroso, lo que permite a los rumiantes utilizar la fibra vegetal para su nutrición (Rodríguez et al., 2007). Las bacterias son los microorganismos más numerosos y al igual que las anteriores, juegan un papel importante en la degradación biológica de la fibra dietética, Rodríguez et al. (2012) plantean que son muchas las bacterias y levaduras que se pueden usar de forma benéfica para mantener una flora digestiva sana y en equilibrio.
En el cuadro 3 se observan los resultados del conteo de protozoarios realizados cada seis horas y donde se observa que el tratamiento PCRE al 100% presenta los valores menores en el tiempo cero (7.5x103 células/mL), cuando en general el promedio es 105 células/mL.
HORAS | 0 | 6 | 12 | 18 | 24 | 30 | 36 | 48 |
---|---|---|---|---|---|---|---|---|
PNC 100% | 1.0x105 | 1.1x105 | 5.2x104 | 1.0x105 | 1.5x105 | 7.5x104 | 7.2x104 | 8.2x104 |
PNC 66% | 1.0x104 | 6.5x104 | 1.3x105 | 1.2x105 | 8.7x104 | 3.0x104 | 5.7x104 | 4.0x104 |
PNC 33% | 3.5x104 | 9.5x104 | 3.7x104 | 1.5x105 | 4.7x104 | 2.5x104 | 1.7x104 | 1.1x105 |
TESTIGO | 1.5x105 | 8.7x104 | 2.5x104 | 1.2x105 | 1.5x105 | 7.2x104 | 5.5x104 | 2.5x104 |
PCRE 100% | 7.5x103 | 1.7x104 | 4.7x104 | 2.2x104 | 3.5x104 | 1.1x105 | 2.7x104 | 1.0x104 |
PCRE 66% | 1.2x105 | 2.4x105 | 2.4x105 | 9.7x104 | 1.1x105 | 6.0x104 | 6.5x104 | 6.0x104 |
PCRE 33% | 1.7x105 | 4.2x104 | 1.9x105 | 3.2x104 | 3.5x104 | 7.5x103 | 9.7x104 | 2.1x105 |
PNC: biopreparado de microorganismos. PCRE: probiótico comercial REVET®.
En el cuadro 4 y 5 se presentan los resultados del análisis estadístico en el que se muestra que la comparación entre tratamientos es significativa (P<0.05), no así entre tiempos de conteo (P>0.05).
Tratamiento | Estimación de media | Media Limite de confianza | Estimación | β | Error estándar | Chi cuadrada | P>Chi cuadrada |
---|---|---|---|---|---|---|---|
PNC100%- PCRE100% | 0.9618 | 0.7958 | 0.9939 | 3.2258 | 0.9518 | 11.49 | 0.0007 |
PNC100%-PCRE66% | 0.3547 | 0.1004 | 0.7303 | -0.5985 | 0.8136 | 0.54 | 0.462 |
PNC100%-PCRE33% | 0.6563 | 0.2025 | 0.9349 | 0.6468 | 1.0294 | 0.39 | 0.5298 |
PNC66%-PCRE100% | 0.9012 | 0.6083 | 0.9817 | 2.2106 | 0.9033 | 5.99 | 0.0144 |
PNC66%-PCRE66% | 0.1661 | 0.0368 | 0.5096 | -1.6137 | 0.843 | 3.66 | 0.0556 |
PNC66%-PCRE33% | 0.4089 | 0.0853 | 0.8369 | -0.3684 | 1.0223 | 0.13 | 0.7185 |
PNC33%-PCRE100% | 0.8515 | 0.4865 | 0.972 | 1.7468 | 0.9188 | 3.61 | 0.0573 |
PNC33%-PCRE66% | 0.1113 | 0.0207 | 0.4259 | -2.0775 | 0.9075 | 5.24 | 0.0221 |
PNC33%-PCRE33% | 0.3032 | 0.0513 | 0.7779 | -0.8322 | 1.0641 | 0.61 | 0.4342 |
PNC100%-TESTIGO | 0.5822 | 0.2133 | 0.8775 | 0.3319 | 0.8352 | 0.16 | 0.6911 |
PNC66%-TESTIGO | 0.3355 | 0.0871 | 0.7277 | -0.6834 | 0.8501 | 0.65 | 0.4215 |
PNC33%-TESTIGO | 0.241 | 0.0501 | 0.6567 | -1.1472 | 0.9163 | 1.57 | 0.2106 |
PCRE100%-TESTIGO | 0.0525 | 0.008 | 0.2758 | -2.894 | 0.984 | 8.65 | 0.0033 |
PCRE66%-TESTIGO | 0.7171 | 0.313 | 0.9338 | 0.9303 | 0.8757 | 1.13 | 0.2881 |
PCRE33%-TESTIGO | 0.4219 | 0.0832 | 0.8544 | -0.3149 | 1.0637 | 0.09 | 0.7672 |
PNC: biopreparado de microorganismos. PCRE: probiótico comercial REVET®.
Los contrastes de pruebas entre tratamientos muestran que el tratamiento PNC al 100%, es diferente (P<0.05) a su contraparte PCRE al 100%, al PNC al 66% es diferente (P<0.05) al PCRE al 100 y 66% (P=0.055) y el PNC al 33% es diferente (P>0.057) al PCRE al 100 y 66% (P<0.05), así como PCRE 100% fue diferente (P>0.05) al testigo.
Fuente | Grados de libertad | Chi Cuadrada | P>Chi Cuadrada |
---|---|---|---|
Tratamiento | 6 | 18.43 | 0.0052 |
Tiempo | 7 | 7.17 | 0.4118 |
La prueba chi-cuadrada para la cantidad de protozoarios en los tratamientos PNC vs PCRE en concentración 66% de la dosis recomendada. No evidenció una cantidad mayor de protozoarios en los PNC, aunque se observa un crecimiento más favorable con respecto al PCRE al 66% una P<0.0556. En los tratamientos PNC vs PCRE en concentración 33% no observó diferencia estadísticamente significativa entre los conteos de protozoarios de los tratamientos al 33% de PNC y PCRE (P<0.05).
El conteo de bacterias se realizó cada 6 horas en ocho intervalos de tiempo obteniendo concentraciones promedio de 106 células/mL en la mayoría de los tiempos y tratamientos, siendo el tratamiento PNC al 66% quien presentó la mayor concentración de bacterias (1.49x107 células/mL), mientras que en el tiempo de 30 horas se identificó la menor concentración en los diferentes tratamientos (Cuadro 6).
HORAS | 0 | 6 | 12 | 18 | 24 | 30 | 36 | 48 |
---|---|---|---|---|---|---|---|---|
TESTIGO | 3.1x106 | 1.6x106 | 1.0x106 | 2.75x106 | 9.5x105 | 2.8x106 | 1.6x106 | 1.65x106 |
PNC 100% | 2.7x106 | 2.5x106 | 1.4x106 | 2.5x106 | 2.6x106 | 8.0x105 | 1.7x106 | 8.5x105 |
PNC 66% | 2.55x106 | 1.25x106 | 1.49x107 | 2.8x106 | 8.75x106 | 5.0x105 | 1.25x106 | 2.5x106 |
PNC 33% | 3.5x106 | 8.45x106 | 1.25x106 | 6.05x106 | 1.6x106 | 1.5x105 | 2.9 x106 | 4.45x106 |
TESTIGO | 3.1x106 | 1.6x106 | 1.0x106 | 2.75x106 | 9.5x105 | 2.8x106 | 1.6x106 | 1.65x106 |
PCRE 100% | 7.5x105 | .35x106 | 11.35x106 | 3.65x106 | 2.5x106 | 3.7x106 | 3.35x106 | 1.05x106 |
PCRE 66% | 3.2x106 | 5.3x106 | 1.45x106 | 2.8x106 | 1.4x106 | 5.6x106 | 3.9x106 | 5.15x106 |
PCRE 33% | 4.05x106 | 2.15x106 | 2.8x106 | 5.9x106 | 7.0x106 | 4.5x105 | 1.7x106 | 1.85x106 |
PNC: biopreparado de microorganismos. PCRE: probiótico comercial REVET®.
En el trabajo realizado por Uchida et al. (1987) reportaron que un solo protozoario puede tomar hasta 104 bacterias por hora. Estas estimaciones indican que la depredación de los protozoarios puede renovar toda la biomasa bacteriana en el rumen con alta densidad de protozoarios (105 a 106). Los ovinos suplementados con PNC y PCRE se ven beneficiados en las poblaciones de protozoarios y bacterias.
En el cuadro 7 y 8 se presenta la prueba chi cuadrada en el cual se observa que no existe diferencia estadísticamente significativa entre los conteos de bacterias con las diferentes dosis estudiadas de PNC vs PCRE (P<0.05). La única comparación que mostró diferencias entre PNC 100% vs PCRE 66%, siendo mayores en PCRE 66%.
Tratamiento | Estimación de media | Media Límite de confianza |
Estimación β | Error estándar | Chi Cuadrada | P>Chi Cuadrada | |
---|---|---|---|---|---|---|---|
PNC100%-PCRE100% | 0.4364 | 0.1282 | 0.803 | -0.2557 | 0.8475 | 0.09 | 0.7629 |
PNC100%-PCRE66% | 0.1458 | 0.0299 | 0.4859 | -1.7679 | 0.8732 | 4.1 | 0.0429 |
PNC100%-PCRE33% | 0.2255 | 0.0538 | 0.5987 | -1.2339 | 0.8338 | 2.19 | 0.1389 |
PNC66%-PCRE100% | 0.5539 | 0.1625 | 0.8882 | 0.2164 | 0.947 | 0.05 | 0.8192 |
PNC66%-PCRE66% | 0.2149 | 0.0401 | 0.6421 | -1.2958 | 0.9594 | 1.82 | 0.1768 |
PNC66%-PCRE33% | 0.3183 | 0.0712 | 0.7398 | -0.7618 | 0.9218 | 0.68 | 0.4086 |
PNC33%-PCRE100% | 0.7429 | 0.3163 | 0.9475 | 1.0611 | 0.9348 | 1.29 | 0.2563 |
PNC33%-PCRE66% | 0.3891 | 0.0952 | 0.794 | -0.4511 | 0.9186 | 0.24 | 0.6234 |
PNC33%-PCRE33% | 0.5207 | 0.1567 | 0.864 | 0.0829 | 0.901 | 0.01 | 0.9267 |
PNC100%-TESTIGO | 0.4713 | 0.1579 | 0.8091 | -0.1148 | 0.7955 | 0.02 | 0.8852 |
PNC66%-TESTIGO | 0.5884 | 0.2011 | 0.8903 | 0.3573 | 0.886 | 0.16 | 0.6867 |
PNC33%-TESTIGO | 0.7689 | 0.3639 | 0.9509 | 1.202 | 0.8983 | 1.79 | 0.1809 |
PCRE100%-TESTIGO | 0.5352 | 0.1744 | 0.8625 | 0.1409 | 0.8652 | 0.03 | 0.8707 |
PCRE66%-TESTIGO | 0.8393 | 0.4782 | 0.9675 | 1.6531 | 0.8879 | 3.47 | 0.0626 |
PCRE33%-TESTIGO | 0.7538 | 0.366 | 0.942 | 1.1191 | 0.8513 | 1.73 | 0.1886 |
PNC: biopreparado de microorganismos. PCRE: probiótico comercial REVET®.
Los ovinos suplementados con PNC y PCRE se ven beneficiados en las poblaciones de protozoarios y bacterias. Según Williams & Coleman (2012) los tiempos de multiplicación para los protozoarios varían de 5-14 horas, coincidiendo con los tiempos de concentraciones en el PCRE las máximas poblaciones se presentaron a las 12 horas al 66% y a las 18 horas con el 33%, por su parte Jouany (1994) y Williams & Coleman (2012) encontraron que varias especies de protozoarios ruminales poseen alfa amilasa y uno de los que presentan mayor actividad amilolítica de este tipo es el Entodinium caudatum, así mismo, Mould & Thomas (1958) y Arcos-García et al., (2007), encontraron alfa y beta amilasa en protozoarios holotricos que promueven el desdoblamiento de las unidades de azúcar de reserva y estructurales de las plantas.
En la parte nutricional los probióticos y las enterobacterias compiten por los aminoácidos esenciales y azúcares, reducen la producción de aminas tóxicas, esto es remediado con los Lactobacillus acidófilos importante al estado de salud del animal (Castillo-Lopez et al., 2013). La densidad bacteriana en el rumen 107 y 1010 células de líquido ruminal, los filos de bacteroides más abundantes incluyen el 75% de la población bacteriana total (Castillo Lopez & Domínguez-Ordóñez, 2019).
Los probióticos no comerciales (PNC) puede ser una alternativa para complementar la dieta de ovinos en crecimiento, es necesario indicar que los PNC en ovinos pudieran ser usados para optimizar la producción en la dieta integral de los animales, sin causar impacto negativo sobre la ecología lo que pueden lograr a través del suministro directo de PNC y PCRE.
Respecto a las concentraciones de ADN registradas para el tratamiento testigo, se obtuvo una concentración promedio de 58.36 ng/µL teniendo como mínimo un valor de 28 ng/µL y un valor de 100 ng/µL. En el cuadro 9 se observa cada una de las concentraciones obtenidas, así como la relación 260/280, que indica que la pureza del ADN es adecuada para protocolos de PCR.
En los ovinos suplementados con PNC se obtuvo ADN genómico en las siguientes concentraciones promedio 77.6 ng/µL, 69.7 ng/µL y 70.18 ng/µL, en los tratamientos de 100%, 66% y 33% respectivamente (Cuadro 9). Las concentraciones de ADN obtenido de microorganismos del líquido ruminal de ovinos suplementados con PCRE con los siguientes promedios: en 100% 46.81 ng/mL, en 66% de 46.09 ng/mL y en 33% de 36.36 ng/mL.
Testigo | PNC 100% | PNC PNC PCRE 66% 33% 100% | PCRE 66% | PCRE 33% | ||||
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Muestreo | Concentración (ng/mL) | |||||||
M1 (0 Días) | 48 | ---- | ----- | 72 | 103 | 65 | 52 | |
M2 (30 Días) | 65 | 94 | 84 | 64 | 60 | 72 | -------- | |
6hr | 57 | 136 | 41 | 34 | 36 | 37 | 28 | |
18hr | 28 | 45 | 95 | 127 | 59 | 30 | 30 | |
24hr | 100 | 26 | 78 | 199 | 37 | 36 | 29 | |
30hr | 88 | 52 | 109 | 34 | 28 | 61 | 42 | |
36hr | 58 | 234 | 48 | 23 | 25 | 53 | ----- | |
M3 (60 Días) | 70 | 46 | 49 | 42 | 48 | 31 | 85 | |
42hr | 31 | 38 | 74 | 37 | 55 | 48 | 55 | |
48hr | 55 | 44 | 50 | 71 | 25 | 29 | 45 | |
M4 (110 Días) | 42 | 61 | 69 | 69 | 39 | 45 | 34 |
PNC: biopreparado de microorganismos. PCRE: probiótico comercial REVET®.
La diversidad de bacterias totales en el rumen es importante durante la degradación del alimento y fermentación, ya que esto permite tener una amplia variedad de enzimas, así como reacciones bioquímicas precisas que ayuden a hidrolizar el material vegetal a estructuras más simples y puedan tener mayor disponibilidad para los microorganismos y aumentar los productos de fermentación (López et al., 2020).
Con respecto a las bacterias totales, la banda de amplificación por PCR corresponde a 130 pb, lográndose identificar esta banda característica en el gel testigo, el cual corresponde a la figura 1 (A). De acuerdo con estos resultados se puede mencionar que el probiótico con mejor efecto de adaptación de las bacterias totales fue el PNC, ya que este permitió que la microbiota de bacterias continuará creciendo en el rumen y por lo tanto, no afectará la degradación del alimento y fermentación ruminal.
Las bacterias del rumen participan en la degradación de celulosa, esta especie presenta más de 100 secuencias que codifican para enzimas que degradan polisacáridos (Morrison et al., 2003; Jun et al., 2007; Firkins, 2021), la mayoría son responsables de la degradación de sustratos celulosos, además estas bacterias degradan xilano, hemicelulosa y los monosacáridos de las paredes de las plantas (Mirón, 1991; Hobson & Stewart, 2012).
Se demostró que el PCRE tiene un efecto inhibitorio sobre Fibrobacter succinogenes en una concentración de 100%, ya que no se observa la banda específica para el oligonucleótido (121 pb) en comparación con el testigo como se observa en la figura 1 (H), sin embargo, para las concentraciones de 66 y 33% esta banda si está presente (Figura 1, J, K).
Los hongos anaerobios ruminales desempeñan un papel estratégico en la digestión de alimentos fibrosos, ya que presentan una gran habilidad para colonizar paredes de celulosa lignificada y para debilitar los tejidos fibrosos de las plantas, así como la degradación de los componentes estructurales de su pared celular (Galindo et al., 2017). Para los hongos anaerobios (120 pb), estos no se vieron afectados con la suplementación del probiótico en ninguna de sus concentraciones (Figura 1, P, Q, R, S, T, U).
El efecto de los probióticos parece estar relacionado con los mecanismos y procesos metabólicos llevados a cabo por los microorganismos que participan en la fermentación ruminal y formación de metano, Rodríguez et al. (2013) plantean que son muchas las bacterias y levaduras que se pueden usar de forma benéfica para mantener una flora digestiva sana y en equilibrio. Los microorganismos más usados son Lactobacillus sp., Sreptococcus faeccium, B. subtilis, B. cereus, B. licheniformis, B. stearothermophyllus y S. cerevisiae.
Los Lactobacillus crecen rápidamente en el intestino, son quizá los más conocidos, se trata de bacterias que pueden transformar la lactosa en ácido láctico. Este aumento de ácido láctico disminuye el pH intestinal, lo cual afecta la supervivencia de microorganismos no benéficos para la flora ruminal, patógenos, entre otros.
CONCLUSIONES
El probiótico no comercial puede ser una alternativa para complementar la dieta de los ovinos en crecimiento en la región del cañón de Juchipila, Zacatecas, México, por generar un incremento de bacterias y protozoarios. Los probióticos son un aditivo que se puede utilizar con éxito ya que no modificó la población de bacterias totales y hongos anaerobios en el rumen.