Pastoreo por el microzooplancton en Bahía Concepción, Golfo de California, México

 

Grazing by microzooplankton in Concepción Bay, Gulf of California, Mexico

 

Alexandra Margarita Noriega Cañar¹ y José Ricardo Palomares García¹*

 

¹ Departamento de Plancton y Ecología Marina. Centro Interdisciplinario de Ciencias Marinas IPN. PO. Box 592. C.P. 23000. La Paz, Baja California Sur, México. * Autor para correspondencia: rpalomar@ipn.mx.

 

Recibido: 8 de enero de 2007
Aceptado: 21 de febrero de 2008

 

RESUMEN

El pastoreo del microzooplancton (< 200 m) sobre el fitoplancton, juega un papel importante en la trofodinámica del sistema pelágico. Para determinar la relevancia de este proceso en Bahía Concepción, se utilizaron la clorofila–a estimada por cromatografía líquida de alta resolución (HPLC) y la microscopía, para determinar las tasas de crecimiento del fitoplancton y pastoreo por el microzooplancton obtenidas con la técnica de dilución. El crecimiento del fitoplancton y pastoreo por el microzooplancton fue evaluado en la región media de la bahía. Las tasas de crecimiento del fitoplancton (µ) de nano y microfitoplancton por microscopía en las distintas estaciones del año fueron respectivamente: 1.04 y 1.06 – d^–1 (primavera); 1.02 y 1.04 (verano); 1.01 y 1.03 (otoño); 1.05 y 1.00 d^–1 (invierno). En tanto que el consumo del microzooplancton (g) de nano y microfitoplancton fue respectivamente de: 1.06 y 1.12 d^–1 en primavera; 1.02 d^–1 y 1.07 d^–1 en verano; 1.03 d^–1 y 1.10 d^–1 en otoño, y 1.14 d^–1 y 1.02 d^–1 para invierno. Las tasas de crecimiento (µ) y pastoreo (g) de la clorofila–a (Cl–a) evaluadas mediante HPLC fueron, respectivamente: 2.47 y 1.33 d^–1 (primavera), 1.31 y 1.00 d^–1 (verano), 2.55 y 1.89 d^–1 (otoño), y 0.29 y 0.05 d^–1 (invierno). En el análisis al microscopio no se observó una preferencia clara por clase de tamaño para el consumo de producción primaria potencial removida (PPPr). Entre las estimaciones de las tasas de crecimiento del fitoplancton (µ) y pastoreo por el microzooplancton (g) con microscopía y HPLC, la PPPr fue muy similar (98.0% para nanofitoplancton, 97.2% para microfitoplancton y 99.7% para HPLC). Estos resultados, pueden ser asociados con la dominancia de la fracción del nanofitoplancton a lo largo del año.

Palabras claves: Microzooplancton, pastoreo, clorofila a, HPLC, Bahía Concepción.

 

ABSTRACT

Microzooplankton (< 200 µm) grazing over phytoplankton, play an important role in the trophodinamic of pelagic system. In order to determine the relevance of this process in Concepción Bay, we used estimations of chlorophyll–a of high–performance liquid chromatography (HPLC) and microscopy to estimate growth and grazing rates obtained with the dilution technique. Phytoplankton growth and microzooplankton grazing was evaluated in the middle region of bay. Seasonal rates of growth (µ) of nanno and microphytoplankton, determined by microscopy were, respectively: 1.04 y 1.06 d^–1 (spring), 1.02 y 1.04 d^–1 (summer), 1.01 y 1.03 d^–1 (autumn), 1.05 y 1.00 d^–1 (winter). The grazing by microzooplankton (g) of nano and microfitoplankton were respectively: 1.06 and 1.12 d^–1 (Spring); 1.02 d^–1 and 1.07 d^–1 (Summer); 1.03 d^–1 and 1.10 d^–1 (Autumn); 1.14 d^–1 and 1.02 d^–1 (Winter). The estimations of u and g of chlorophyll–a (Chl–a) performed through HPLC were, respectively: 2.47 y 1.33 d^–1 (Spring), 1.31 y 1.00 d^–1 (Summer), 2.55 y 1.89 d^–1 (Autumn), y 0.29 y 0.05 d^–1 (Winter). We do not observe a clear preference by size class for the consumption of the potential primary production removed (PPPr), according to the microscopy analysis. Between the assessments of the phytoplankton growth (µ) and microzooplankton grazing (g) by microscope and HPLC, the PPPr were very similar (98.0% for nanophytoplankton, 97.2% for microphytoplankton, and 99.7% for HPLC). These results may be associated with the dominance of nanophytoplankton fraction along the year.

Key words: Microzooplankton, grazing, chlorophyll a, HPLC, Concepcion Bay.

 

INTRODUCCIÓN

El microzooplancton es una comunidad taxonómica diversa del plancton integrada por organismos < 200 µm (Dussart, 1965) como protozoos, etapas larvales y nauplios de metazoa, con estrategias nutricionales diferentes (e. g. mixotrofía, heterotrofía) que contribuyen a la pérdida por pastoreo en el ecosistema pelágico (Landry & Calbet, 2004).

El microzooplancton es considerado un componente fundamental de la red microbiana (Odate & Imai, 2003; Calbet & Landry, 2004; Böttjer & Morales, 2005), y la presión de pastoreo que ejerce sobre el fitoplancton puede fluctuar en un amplio intervalo, que va desde un 40 hasta un 70% de la producción primaria (Riley, 1956). De acuerdo con algunos experimentos, ciertos componentes del microzooplancton podrían consumir entre un 20 y 100% de la producción primaria (Heinbokel & Beers, 1979; Capriulo & Carpenter, 1983; Cosper & Stepien, 1984). Otros señalan una remoción >80% de la producción diaria (Gallegos, 1989; Dagg, 1995; Lehrter et al., 1999; Irigoien et al., 2005).

Por su distribución y abundancia, el microzooplancton en aguas templadas y tropicales representa una proporción significativa del total de la comunidad zooplanctónica en todas las estaciones del año (Beers & Stewart, 1971; Taguchi, 1976; Takahashi & Hoskins, 1978; Revelante & Gilmartin, 1983; Paranjape et al., 1985). El microzooplancton tiende a ser dominante sobre los consumidores secundarios (mesozooplancton) en aguas oligotróficas y eutróficas (Sherr & Sherr, 1994), y su impacto sobre el fitoplancton en latitudes altas es similar al observado en latitudes bajas (Paranjape, 1987).

El objetivo del trabajo fue estimar las tasas de crecimiento del fitoplancton (µ) y pastoreo (g) por el microzooplancton, utilizando el método de dilución de agua de mar (Landry & Hassett, 1982) y la técnica de HPLC (high performance liquid chromatography). Ambas herramientas han sido aplicadas durante los últimos años en diversos ambientes (Paranjape, 1987; Gifford, 1988; Strom & Welschmeyer, 1991; Burkhill et al., 1987; García–Pámanes & Lara–Lara 2001). La primera, aporta conocimiento a detalle de los grupos del fitoplancton y de las abundancias celulares, a partir de lo cual se estiman simultáneamente las tasas de crecimiento y pastoreo. En la segunda, las tasas son estimadas con base en la biomasa del fitoplancton (Cl–a). Las bondades de la técnica de dilución han sido contempladas ampliamente en los trabajos de Landry y Hassett (1982); Gifford (1988) y Gallegos (1989). En México existen pocos estudios sobre estimaciones de las tasas de crecimiento y pastoreo con el método de dilución y ninguno contempla la evaluación por dos técnicas diferentes (García–Pámanes & Lara–Lara, 2001; Palomares et al., 2006). Por tanto, el presente estudio es el primero que intenta comparar dos técnicas diferentes (microscopía y HPLC), basadas en el método de dilución, con objeto de contribuir al conocimiento de los procesos biológicos que regulan el ecosistema.

 

MATERIALES Y METODOS

Área de estudio. Bahía Concepción ha sido una de las bahías más estudiadas en el Golfo de California (26°33'–26°53' N; 111°42'–112°56' O). Tiene 45 Km de largo por 10 Km de ancho en su parte más ancha y una profundidad máxima de 30 m en el canal central (Ramírez–Guillén, 1983). El patrón estacional de vientos es NO durante otoño e invierno y SE durante primavera y verano. La variabilidad de la irradiación solar genera cambios importantes en la estructura de la columna de agua. Durante el período frío, los vientos fuertes del NO producen la mezcla de las aguas y cuando disminuyen en la primavera, se inicia el período de transición asociado con la entrada de aguas ricas en nutrientes que vienen desde el Golfo de California, lo que estimula el crecimiento del fitoplancton (López–Cortés et al., 2003a). En el verano, hay un cambio en los vientos hacia el SE, disminuye la turbulencia en la columna de agua, y se incrementa la temperatura del aire, produciéndose una fuerte termoclina (Reyes–Salinas, 1994). En el otoño, un corto período de transición completa el ciclo, los vientos del NO impulsan la entrada del agua desde el Golfo de California hacia el interior de la bahía, enfriando y mezclando la columna de agua (López–Cortés et al., 1991; Lechuga–Devéze & Morquecho–Escamilla, 1998).

Protocolo de muestreo. La campaña experimental se realizó en la región media de Bahía Concepción, México, entre los 26° 33' y 26° 53' N y los 111° 42' y 112° 56' O, de marzo del 2001 a marzo del 2002. Se ubicaron cuatro temporadas de estudio; primavera (2–3 de mayo del 2001), verano (25 – 26 de julio del 2001), otoño (16–17 de noviembre del 2001) e invierno (6 – 7 de marzo del 2002). Se tomaron muestras de agua de mar para determinar clorofila–a, nutrimentos disueltos, salinidad y temperatura a profundidades estándar (superficie, 5, 10, 15, 20 y 25 m). La temperatura del agua fue registrada con un termómetro Khalsico (± 0.1°C) y la salinidad y los nutrimentos se estimaron con métodos estándar (Strickland & Parsons, 1972). La transparencia se midió con un disco de Secchi.

Todos los frascos utilizados en los experimentos fueron lavados con una solución de ácido clorhídrico al 10% y enjuagados con abundante agua destilada. Para cada experimento se recolectó agua de superficie y a 10 m de profundidad, mediante una botella Niskin de 8 L de capacidad. La mitad de esta agua fue pasada a través de filtros Whatman GF/F de 0.7 µm, con el fin de obtener agua libre de partículas para utilizarse como diluente en las distintas series de dilución. El agua restante fue cuidadosamente filtrada a través de una malla nitex de 200 µm. Las series de dilución se realizaron combinando ambas porciones de agua marina (agua filtrada por la malla de 200 µm para excluir al mesozooplancton, con agua libre de partículas), en frascos de policarbonato de 2.8 L, en proporciones de: 1.0 (100% agua de mar filtrada por la malla de 200 µm), 0.5 (50%), 0.2 (20%), 0.1 (10%) y 0.05 (5%). Se utilizaron tres replicas por dilución. El 100% de dilución (solo agua filtrada por el filtro Whatman GF/F) se utilizó como control para evaluar la contaminación por bacterias que pudiera afectar las diluciones (Li & Dickie, 1985). Se pusieron tres replicas adicionales por cada dilución, para determinar la concentración inicial de fitoplancton y la cantidad inicial de clorofila–a. Todos los frascos fueron incubados in situ por un lapso de 24 h, cerca del sitio de recolecta, sin adicionar nutrimentos, después de ese tiempo todos los frascos fueron transportados al laboratorio y filtrados por duplicado en filtros GF/F para evaluar la concentración de clorofila. Los filtros fueron mantenidos en nitrógeno líquido hasta su análisis con HPLC.

Adicionalmente se fijaron 500 ml de cada réplica de dilución con lugol al 2%, para determinar la composición y densidad del fitoplancton.

Análisis de la Cl–a. Para este análisis se utilizó la técnica de HPLC (cromatografía líquida de alta resolución), siguiendo el procedimiento estándar según el método de Vidussi et al. (1996). El pigmento se identificó a través de tiempos de retención y características espectrales y se cuantificó con el factor de respuesta (Mantoura & Repeta, 1997) obtenido de los estándares comerciales de pigmentos (Agencia Internacional para determinaciones de 14C, Dinamarca).

Análisis al microscopio. Una submuestra de 10 ml fue tomada de la muestra madre (500 ml), para llenar de manera homogénea una cámara de sedimentación del mismo volumen y se tapó sin dejar burbuja. El tiempo de sedimentación del material celular fue de 24 h. Para la cuantificación, se realizaron dos transectos, leyendo el fondo de la cámara de sedimentación, en sentido horizontal y vertical y cubriendo el campo visual con la reglilla del ocular. El barrido de toda el área de superficie del fondo, consistió en contar el fitoplancton raro que no había sido observado en los dos transectos (Utermöhl, 1958). Las claves taxonómicas para la identificación del fitoplancton fueron: Hustedt (1930), Schiller (1930, 1937), Cupp (1943), Brunel (1962), Taylor (1976), Dodge (1982), Yamaji (1984), Dodge (1985), Hasle y Syvertsen (1985), Sournia (1986), Balech (1988), Licea et al. (1995), Moreno et al. (1996), Tomas (1997), Therriault–Bérard et al. (1999), Faust y Gulledge (2002).

Tasas de crecimiento del fitoplancton (µ) y pastoreo (g) por el microzooplancton.

Las tasas de crecimiento del fitoplancton (µ) y pastoreo (g) por el microzooplancton del análisis al microscopio y Cl–a de HPLC, se estimaron considerando el crecimiento exponencial del fitoplancton (Landry & Hassett, 1982). El método de dilución asume que la presión de pastoreo se reduce en función de la dilución de los depredadores, por lo que el fitoplancton crecerá a una tasa constante en cada tratamiento. Esta velocidad de crecimiento será una función lineal de la densidad de consumidores. Por tanto el cambio en la densidad del fitoplancton, P, en un tiempo, t, es:

P_t = P_oe^{(k–g) t} 0 (1/t) ln [P_t / P₀]=k–g

Donde, k es la tasa instantánea de crecimiento del fitoplancton (d^–1) y g es la tasa instantánea de mortalidad del fitoplancton debido al pastoreo (d^–1) en 24 h. El término ln [Pt / Po]/t es la tasa aparente de crecimiento del fitoplancton. El crecimiento aparente del fitoplancton es graficado en función del factor de dilución y el punto de intersección con el eje y de la regresión lineal es la verdadera tasa de crecimiento del fitoplancton teórica (k), en ausencia de consumidores y la pendiente negativa es el coeficiente de pastoreo (g). Ambos parámetros fueron calculados, utilizando un ajuste por mínimos cuadrados para la regresión lineal simple. El coeficiente de regresión (r) fue determinado como parte del planteamiento teórico. El valor de u significa la tasa de crecimiento del fitoplancton después del procedimiento y es utilizada para calcular la tasa de duplicación del fitoplancton (µ/ln2). Los porcentajes de producción primaria potencial consumida o removida estacionalmente (% PPPr) se estimaron según Gifford (1988) y el crecimiento por temperatura se calculó con base en la ecuación de Eppley (1972), la cual utiliza el valor de la temperatura en los niveles de profundidad del estudio, y el antilogaritmo de la fórmula es obtenido en la hoja de cálculo de Microsoft Excel. Este cálculo se realizó para estimar el crecimiento teórico máximo en función de la temperatura.

Para conocer si, había diferencias significativas entre las tasas de crecimiento (µ), pastoreo (g) y los porcentajes de producción primaria potencial removida (PPPr), estimados por ambos métodos (microscopía y Cl–a de HPLC) durante las temporadas de estudio, se realizó una prueba estadística de "t", utilizando el programa Statistica versión 6.0.

 

RESULTADOS

Condiciones hidrográficas. Los registros de temperatura, salinidad, oxígeno disuelto, nitratos, nitritos, fosfatos y silicatos mostrados en la Tabla 1 corresponden a los valores promedio de tres niveles de profundidad (0, 5 y 10 m).

En el área de estudio se generan cuatro períodos diferentes. Un período más frío cuando prevaleció una columna de agua bien mezclada (enero, febrero, marzo y diciembre del 2001, enero, febrero y marzo del 2002); dos períodos de transición (abril–mediados de mayo y octubre–noviembre) y un período cálido con estratificación fuerte de la columna de agua (fines de mayo, junio, julio y agosto).

Durante el período de mezcla en la columna de agua, los nitratos y fosfatos mostraron concentraciones más bajas (< 1 µMol L^–1), en tanto que en abril–mayo (primer período de transición) los nutrimentos se incrementaron y fue más acentuado durante el período estratificado. Los nitratos y fosfatos aumentaron significativamente con la profundidad, el incremento máximo se localizó en los 10 y 15 m durante los períodos de transición y cerca del fondo en la condición estratificada. Los silicatos se encontraron en un patrón similar, con valores más bajos en condiciones de mezcla (< 25 µMol L^–1) y más altos cercano al fondo (100 µMol L^–1), durante la estratificación y el segundo período de transición (octubre–noviembre).

El oxígeno disuelto fue similar en toda la columna de agua durante el período de mezcla; sin embargo, cuando la termoclina estuvo bien desarrollada, durante el período de estratificación, los valores fueron más bajos en el fondo (< 1 ml O₂ L^–1). El oxígeno disuelto en la superficie varió entre 4 a 6 ml O₂ L^–1 durante el año, con valores más bajos en verano y más altos en invierno. La salinidad varió desde 34.2 a 35.9 en la superficie y de 34.1 a 35.8 debajo de 15 m, encontrándose los valores más altos durante la estratificación.

Composición del microplancton. Un total de 76 y 99 especies de diatomeas y dinoflagelados respectivamente, fueron identificadas durante las temporadas de estudio. Los nanoflagelados fueron dominantes en la fracción de tamaño < 20 µm. Las diatomeas y dinoflagelados fueron los grupos importantes en la fracción de tamaño > 20 µm, con una gran variedad de taxa, siendo los géneros más comunes en diatomeas; Actinoptychus, Chaetoceros, Guinardia, Haslea, Pleurosigma/Gyrosigma, Nitzschia, Pseudo–Nitzschia, Rhizosolenia, Skeletonema, Synedra, Thalassionema y Thalassiosira, y en los dinoflagelados: Alexandrium, Amphidinium, Ceratium, Dinophysis, Gymnodinium, Gyrodinium, Gonyaulax, Heterocapsa, Oxyphysis, Oxytoxum, Podolampas, Prorocentrum, Protoperidinium y Torodinium. Otros grupos importantes con taxa conocidas fueron cianofitas (Oscillatoria y Trichodesmium), silicoflagelados (Dictyocha y Distephanus) y flagelados del microfitoplancton (Eutreptiella). La abundancia porcentual por fracciones de tamaño se muestra gráficamente en la Figura 1.

Tasas de crecimiento del fitoplancton (µ) y pastoreo (g) según el análisis al microscopio. Durante las temporadas de estudio, las tasas de crecimiento promedio del fitoplancton indicaron valores similares a los de las tasas de pastoreo promedio por el microzooplancton en las dos fracciones de tamaño (nano y microfitoplancton) (Fig. 2). Las tasas de crecimiento del nanofito–plancton (µ) variaron desde 1.01 a 1.05 d^–1 y las tasas de pastoreo (g) de 1.02 – 1.14 d^–1. Las tasas de duplicación promedio de la fracción fueron de 1.42 – 1.47 d–¹ y los porcentajes de producción primaria potencial promedio removida (PPPr) fueron de 96.7% – 99.6%. En el microfitoplancton, las tasas de crecimiento promedio comprendieron de 1.00 – 1.06 d^–1 y las tasas de pastoreo promedio de 1.02 – 1.12 d^–1. Las tasas de duplicación promedio fueron de 1.4 – 1.5 d^–1 y los porcentajes de producción primaria potencial promedio removida fueron desde 96.8% a 97.7% (Tabla 2).

Tasas de crecimiento del fitoplancton (µ) y pastoreo (g) según el análisis de HPLC. Las tasas de crecimiento (µ) y pastoreo (g) promedio durante el período de estudio fueron notables. Los valores estimados fueron desde 0.29 hasta 2.55 d–¹ en el crecimiento del fitoplancton, y de 0.05 – 1.89 d^–1 en el pastoreo por el microzooplancton (Fig. 3). Las tasas de duplicación promedio del fitoplancton fueron de 0.42 – 3.68 d^–1 y los porcentajes de PPPr de 99.2% a 99.9% (Tabla 3). No se observaron diferencias estadísticas significativas entre las tasas de crecimiento estimadas por conteo celular y las estimadas con base a la concentración de clorofila (t = 1.42, p = 0.25), y tampoco se registraron diferencias entre las tasas de pastoreo (g) estimadas por ambos métodos (t = –0.46, p = 0.07).

Tasas de crecimiento por temperatura. Las tasas de crecimiento fueron estimadas a partir de valores de temperatura de la columna de agua de 0 a 10 m. En las temporadas de estudio, las estimaciones fluctuaron desde 2.56 hasta 5.65 d–1. Para las tasas de crecimiento por temperatura, no se probó si había diferencias significativas en las tasas de crecimiento del fitoplancton y pastoreo por el microzooplancton, dado que es sólo una estimación teórica, que se hace en función de la temperatura (Tabla 4).

 

DISCUSIÓN Y CONCLUSIONES

Aunque los valores obtenidos de crecimiento y consumo realizadas por medio de conteo celular al microscopio y por estimación de los cambios en la concentración de clorofila–a, utilizando la cromatografía líquida de alta resolución (HPLC), mostraron resultados con tendencias diferentes, no fueron significativas estadísticamente (α = 0.05). El principal hallazgo de este trabajo fue determinar que el microzooplancton consume una parte substancial de la producción fitoplanctónica (> 95% de la producción primaria potencial) en Bahía Concepción. Otro punto de convergencia entre ambos métodos fue la confirmación de las diatomeas y dinoflagelados, como los grupos que aportan la mayor parte de la biomasa del microfitoplancton, lo cual coincide con lo registrado por otros autores, que han utilizado tanto el conteo de células como el análisis de pigmentos con diferentes escalas temporales (Martínez–López & Gárate–Lizárraga, 1994; 1997; López–Cortés et al., 2003b).

De acuerdo con el análisis al microscopio, el crecimiento del fitoplancton por fracción de tamaño no presentó grandes variaciones estacionales. De hecho, el análisis al microscopio mostró que las tasas de crecimiento del fitoplancton para ambas fracciones de tamaño (< 20 µm y > 20 µm) y el pastoreo por el microzooplancton mantuvieron un estado estable.

Esto podría tener relación con el predominio de la fracción nanofitoplanctónica (< 20 µm), que caracteriza a la comunidad fitoplanctónica de la región central del Golfo de California e interior de Bahía Concepción y que contribuye con el mayor porcentaje de la biomasa y la producción primaria (Gilmartin & Revelante, 1978; Lara–Lara & Valdez–Olguín, 1988; Lara–Lara et al. 1993; Martínez–López y Gárate–Lizárraga, 1994).

Diversos estudios han demostrado que la fracción < 20 µm, es el tipo de alimento idóneo para la mayoría de los componentes del microzooplancton (Paranjape, 1987; Strom & Welschmeyer, 1991; Putland, 2000). Esto explicaría las altas tasas de consumo registradas para esta fracción (< 20 µm). Sin embargo, en el caso del microfitoplancton también se observaron altas tasas de consumo en las cuatro temporadas del año. De acuerdo con Strom et al. (2001), el protozooplancton juega un papel relevante en el control de los florecimientos fitoplanc–tónicos en aguas costeras, debido a que diversas especies de ciliados oligótricos y tintínnidos pueden alimentarse de diatomeas y dinoflagelados a una tasa elevada cuando estas presas tienen un tamaño entre 10 – 30 µm. A este respecto nuestros resultados indican que los tintínnidos y dinoflagelados heterótrofos fueron abundantes, sobre todo aquellas especies pertenecientes a los géneros Gyrodinium y Protoperidinium, quienes pueden consumir grandes cantidades de fitoplancton y aún exhibir cierta predilección por diatomeas grandes, que forman cadenas (Hansen & Calado, 1999).

El análisis con HPLC mostró una variación estacional con crecimientos máximos durante la primavera y el otoño, aunque el promedio anualizado (1.65 d^–1), fue muy cercano al obtenido por García–Pámanes y Lara–Lara (2001), quienes determinaron un crecimiento promedio anual de 1.6 d^–1 para la parte central del Golfo de California. Palomares et al. (2006) encontraron que las mayores concentraciones de clorofila a en Bahía Concepción se presentan durante los períodos de transición y son el resultado de las elevadas tasas de crecimiento, durante la transición primavera–verano y durante el otoño. Este mismo patrón ha sido observado por diferentes autores, quienes atribuyen este crecimiento acelerado a la entrada de nutrimentos y cambios en la estructura de la columna de agua (Lechuga–Devéze & Morquecho–Escamilla, 1998; López–Cortés et al., 2003a).

En términos generales algunas de las estimaciones de crecimiento del fitoplancton realizadas en este trabajo se ubican cerca y por debajo del crecimiento máximo teórico en función de la temperatura (Eppley, 1972; Tabla 3 y 4). Esto es, en relación con el análisis basado en los cambios de la Cl–a, la menor tasa de crecimiento se registró durante el invierno, cuando la temperatura era más baja y prevalecía la condición de mezcla de la columna de agua. No obstante, la mayor tasa de crecimiento, no se presentó en el verano sino en la primavera y el otoño. Esto implica que durante el verano, existen otros factores como una columna de agua estratificada y baja disponibilidad de nutrientes que podrían estar limitando el crecimiento del fitoplancton (Palomares et al., 2006).

Recientemente, se ha revalorado la importancia del micro–zooplancton como consumidor del fitoplancton, debido a que tanto para ambientes oligotróficos como eutróficos, se ha comprobado que la presión de pastoreo ejercida por éste, es regularmente superior a la ejercida por el mesozooplancton (Sherr & Sherr, 1992; Odate & Imai, 2003; Calbet & Landry, 2004; Böttjer & Morales, 2005). Esto se debe en gran medida, a su alta tasa de duplicación, comparable a la exhibida por el fitoplancton, lo que le permite responder rápidamente a los incrementos en la biomasa del fitoplancton y bajo ciertas condiciones hace posible que la producción en exceso del fitoplancton sea controlada por el pastoreo (Frost, 1993).

De esta forma, con el análisis al microscopio resultó que durante la mayor parte del año las tasas de crecimiento y pastoreo tendieron a estar en equilibrio. En cambio en el análisis por HPLC, las variaciones entre las tasas de pastoreo y crecimiento del fitoplancton (en términos de la cantidad de Cl–a), tendieron a ser mayores cuando la tasa de crecimiento era alta. Entonces durante la primavera, cuando el diferencial entre ambas tasas (g:µ) fue mayor, se presentó una acumulación de biomasa, en correspondencia con una menor tasa relativa de pastoreo. Así, durante el resto del año existió un mejor acoplamiento entre el crecimiento y el pastoreo.

La presión ejercida por el pastoreo ha sido estudiada en diversos ambientes, donde se reporta que un 60 a 75% de la producción primaria puede ser consumida (Landry & Calbet, 2004). En este trabajo, los porcentajes de producción primaria potencial removida (PPPr) fueron elevados, (96.7% – 99.6% PPPr nano– y 96.8% – 97.7% PPPr microfitoplancton), pero se ubican en un intervalo muy similar a los registrados por otros autores que informan sobre porcentajes cercanos al 100% PPPr (García–Pámanes & Lara–Lara, 2001; Gifford, 1988) e incluso superiores como Strom y Strom (1996) en el Golfo de México (38 – 209%) y Lessard y Murrell (1998) en el Mar de los Sargazos (84 – 512%).

Finalmente considerando que el microzooplancton se alimenta de pico–, nano– y ultraplancton (Revelante & Gilmartin, 1983; Paranjape, 1988 en Jyothibabu et al., 2003; Beers & Stewart, 1967; Parsons & LeBrasseur, 1970; Berk et al., 1977) y que las formas herbívoras consumen principalmente nano– y microfitoplancton (Beers & Stewart, 1971; Beers et al., 1975,1980; Heinbokel, 1978a, b; Smetacek, 1981; Stoecker et al., 1981), el microzooplancton actúa como intermediario trófico, sirviendo de enlace entre la producción generada por el fitoplancton y los niveles tróficos más altos. En Bahía Concepción el pastoreo por el microzooplancton, actúa como un relevante factor regulador de la comunidad fitoplanctónica a lo largo del año, siendo la producción y el pastoreo los procesos que generan las complejas formas de transferencia o utilidad de los flujos de energía para el ecosistema (Calbet & Landry, 2004; Leising et al., 2005a).

 

AGRADECIMIENTOS

La primera autora expresa su reconocimiento a la Dra. Aída Martínez López por la asesoría en taxonomía y especialmente al Dr. Alfonso Esquivel Herrera por las debidas observaciones en la corrección del manuscrito. El autor JRPG es becario de la Comisión de Operación y Fomento Actividades Académicas (COFAA) y Estímulo al Desempeño en Investigación (EDI).

 

REFERENCIAS

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