SciELO - Scientific Electronic Library Online

 
vol.52 issue1Bi and Three-Metallic Electrocatalysts Preparation for Methanol OxidationMolecular Speciation Effect on Docking and Drug Design. A Computational Study for Mangiferin, a Carbohydrate-Polyphenol Bioconjugate as a Test Case author indexsubject indexsearch form
Home Pagealphabetic serial listing  

Services on Demand

Journal

Article

Indicators

Related links

  • Have no similar articlesSimilars in SciELO

Share


Journal of the Mexican Chemical Society

Print version ISSN 1870-249X

J. Mex. Chem. Soc vol.52 n.1 Ciudad de México Jan./Mar. 2008

 

Article

 

Folded Conformations of Maitotoxin

 

Myrna H. Matus,1,2 Laura Escobar,3 and Marcelo Galván1*

 

1 Departamento de Química, Universidad Autónoma Metropolitana–Iztapalapa, A.P. 55–534, C.P. 09340, México D.F., México. Phone: 55+5804–6413; FAX: 55+5804–4666; *Responsible authors: mgalvan@xanum.uam.mx.

2 Department of Chemistry, The University of Alabama, Shelby Hall, Box 810336, Tuscaloosa, AL 35481–0336.

3 Departamento de Fisiología, Facultad de Medicina, Universidad Nacional Autónoma de México.

 

Recibido el 20 de diciembre del 2001
Aceptado el 19 de febrero del 2008

 

Abstract

We used classical molecular mechanics and dynamics simulations to sample the conformational space of maitotoxin, the largest and most lethal natural product. Among the set of minima obtained, the five conformers with the lowest energies show folded structures with an intramolecular hole. We found the folding mainly due to hydrogen bonds that fasten the mobile zones of the molecule. The hole on each MTX conformer is big enough to interact with ions, such as Ca2+ or Na+, which could be involved in its toxic effects observed on all cell types.

Keywords: Maitotoxin, conformational analysis, hydrogen bonds.

 

Resumen

Se estudia el espacio conformacional de la maitotoxina por medio de mecánica y dinámica molecular clásicas. La maitotoxina es hasta ahora el producto natural con mayor número de átomos y con mayor toxicidad que se conoce. De todas las estructuras encontradas como mínimos, las cinco con menor energía muestran una estructura plegada que incluye una cavidad intramolecular. El plegamiento se debe, en buena medida, a la formación de puentes de hidrógeno que anclan las zonas móviles de la molécula. En el contexto de su actividad biológica, se discute la hipótesis de que la molécula pueda interactuar con Ca2+ y Na+.

Palabras clave: Maitotoxina, análisis conformacional, puentes de hidrógeno.

 

DESCARGAR ARTÍCULO EN FORMATO PDF

 

Acknowledgements

We acknowledge Arturo Rojo and Luis Vaca for helpful discussions and CONACYT for financial support (contract 49057–F).

 

References

1. Anderson, D.M. in Red Tides: Biology, Environmental Science and Toxicology; Okaichi, T., Anderson, D.M., Nemoto, T., Eds.; Elsevier: New York, 1994.         [ Links ]

2. Murata, M.; Naoki, H.; Matsumaga, S.; Satake, M.; Yasumoto, T. J. Am. Chem. Soc. 1994, 116, 7098–7107.         [ Links ]

3. Yasumoto, T.; Bagnis, R.; Vernoux, J.P. Bull. Jpn. Soc. Sci. Fish. 1976, 42, 359–365.         [ Links ]

4. Zheng, W.; DeMaittei, J.A.; Wu, J.; Duan, J.W.; Cook, L.R.; Oinuma, H.; Kishi, Y. J. Am. Chem. Soc. 1996, 118, 7946–7968.         [ Links ]

5. Kishi, Y. Pure and Appl. Chem. 1998, 70, 339–344.         [ Links ]

6. Gallimore, A.R.; Spencer, J.B. Angew. Chem. Int. Ed. Engl. 2006, 45, 4406–4413.         [ Links ]

7. Murata, M.; Yasumoto, T. Nat. Prod. Rep. 2000, 17, 293–314.         [ Links ]

8. Yasumoto, T. Chem. Rec. 2001, 1, 228–242.         [ Links ]

9. Nicolaou, K.C.; Frederick, M.O. Angew. Chem. Int. Ed. 2007, 46, 5278–5282.         [ Links ]

10. Igarashi, T.; Aritake, S.; Yasumoto, T. Nat. Toxins 1999, 7, 71–79.         [ Links ]

11. Gusovsky, F.; Daly, J.W. Biochem. Pharmacol. 1990, 39, 1633–1639.         [ Links ]

12. Weber, W.M.; Popp, C.; Clauss, W.; Van Driessche, W. Eur. J. Physiol. 2000, 439, 363–369.         [ Links ]

13. Diakov, A.; Koch, J.–P.; Ducoudret, O.; Müller–Berger, S.; Frönter, E. Eur. J. Physiol. 2001, 442, 700–708.         [ Links ]

14. de la Rosa, L.A.; Alfonso, A.; Vilariño, N.; Vieytes, M.R.; Yasumoto, T.; Botana, L.M. Cell. Signalling 2001, 13, 711–716.         [ Links ]

15. Martinez–François, J.R.; Morales–Tlalpan, V.; Vaca, L. J. Physiol. 2002, 538, 79–86.         [ Links ]

16. Morales–Tlalpan, V.; Vaca, L. Toxicon 2002, 40, 493–500.         [ Links ]

17. Treviño, C.L.; de la Vega–Beltrán, J.L.; Nishigaki, T.; Felix, R.; Darszon, A. J. Cell. Physiol. 2006, 206, 449–456.         [ Links ]

18. Takahashi, M.; Ohizumi, Y.; Yasumoto, T. J. Biol. Chem. 1982, 257, 7287–7289.         [ Links ]

19. Escobar, L.I.; Salvador, C.; Martinez, M.; Vaca, L. Neurobiology (Bp) 1998, 6, 59–74.         [ Links ]

20. Yuhi, T., Wada, A.; Yamamoto, R.; Urabe, M.; Niina, H; Izumi, F.; Yanagita, T. Naunyn Schmiedebergs Arch. Pharmacol. 1994, 350, 209–212.         [ Links ]

21. Baden, D.G. Faseb J. 1989, 3, 1807–1817.         [ Links ]

22. Catterall, W.A.; Trainer, V.; Baden, D.G. Bull. Soc. Pathol. Exot. 1992, 85 (5 Pt 2), 481–485.         [ Links ]

23. Scheiner–Bobis, G.; Heringdorf, D.M.Z.; Christ, M.; Habermann, E. Mol. Pharmacol. 1994, 45, 1132–1136.         [ Links ]

24. Boyd, D.B.; Lipkowitz, K.B. J. Chem. Educ. 1982, 59, 269–274.         [ Links ]

25. Rappé, A.K.; Casewit, C.J. Molecular Mechanics Across Chemistry, University Science Books, 1997.         [ Links ]

26. Shi, S.; Yan, L.; Yang, Y.; Fisher–Shaulsky, J.; Thacher, T. J. Comp. Chem. 2003, 24, 1059–1076.         [ Links ]

27. InsightII, Discover User Guide, Part 1, Molecular Simulations, San Diego, CA. 1996.         [ Links ]

28. Kirkpatrick, S.; Gelatt, C.D.; Vecchi, M.P. Science 1983, 220, 671–680.         [ Links ]

Creative Commons License All the contents of this journal, except where otherwise noted, is licensed under a Creative Commons Attribution License