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Botanical Sciences
On-line version ISSN 2007-4476Print version ISSN 2007-4298
Bot. sci vol.93 n.3 México Sep. 2015
https://doi.org/10.17129/botsci.148
Florística y taxonomía
Florística y ecología de diatomeas bentónicas de la zona lacustre de XochimilcoTláhuac, México
Floristic and ecology of benthic diatoms in the lake area of XochimilcoTláhuac, Mexico
Marisela BuendíaFlores, Rosaluz Tavera1 y Eberto Novelo
Facultad de Ciencias, Universidad Nacional Autónoma de México, Distrito Federal, México
1 Autor para la correspondencia: r_tavera@ciencias.unam.mx
Recibido: 4 de junio de 2014.
Aceptado: 30 de junio de 2014.
Resumen
Se registraron 91 taxones de diatomeas bentónicas en varios sitios de la zona lacustre de XochimilcoTláhuac que representan un incremento de más de 50 % en el inventario florístico de diatomeas para esta zona. El estudio se basó en el análisis de 13 recolecciones con muestreos quincenales y mensuales durante la época seca y de lluvias, registrando simultáneamente varios factores ambientales que apoyaron un análisis comparativo para los cambios en la riqueza de especies entre recolecciones y sitios de estudio. Se elaboró una categorización ecológica que permitió asociar esta presencia con las condiciones ambientales propias de la zona lacustre, argumentando que las especies dominantes distinguen florísticamente una región, mientras que las frecuentes distinguen la flora local y las especies raras indican fragmentación del hábitat. La composición y riqueza de especies mostraron una relación evidente con los factores ambientales y resaltó la presencia de Nitzschia frustulum, Pseudostaurosira brevistriata, Fragilaria bidens, Rhoicosphenia abbreviata, Fragilariforma virescens, Staurosira construens, S. construens var. binodis, Staurosirella leptostauron y S. pinnata, las cuales son especies que típicamente se encuentran en los sedimentos de cuerpos de agua someros y eutróficos. La riqueza de especies estuvo estadísticamente correlacionada con la variación del sílice y el pH, lo que mostró que las diatomeas bentónicas pueden ser utilizadas como indicadores ecológicos para dar seguimiento a las condiciones ambientales de la zona lacustre de XochimilcoTláhuac.
Palabras clave: Bacillariophyta, bentos, ecología, eutrofización, riqueza.
Abstract
91 taxa of benthic diatoms were recorded at several sites in the lake district XochimilcoTláhuac representing an increase of over 50 % in the floristic inventory of diatoms in this area. The study was based on analysis of 13 collections with fortnightly and monthly sampling during the dry and rainy seasons, simultaneously recording several environmental factors that supported a comparative analysis for changes in species richness between study sites and collections. An ecological categorization of species allowing to associate their presence with the environmental conditions of the lake area, arguing that the dominant species distinguished floristically a region, while frequent distinguish the local flora and rare species indicate habitat fragmentation. The composition and species richness showed a clear relationship with environmental factors and highlighted the presence of Nitzschia frustulum, Pseudostaurosira brevistriata, Fragilaria bidens, Rhoicosphenia abbreviata, Fragilariforma virescens, Staurosira construens, S. construens var. binodis, Staurosirella leptostauron y S. pinnata, which are species typically found in the sediments of shallow and eutrophic bodies of water. Species richness was statistically correlated with the variation of silica and pH, which showed that benthic diatoms can be used as ecological indicators for monitoring environmental conditions in the lake district of XochimilcoTláhuac.
Keywords: Bacillariophyta, benthos, ecology, eutrophication, species richness.
Las diatomeas sobresalen por su abundancia en el bentos y destacan por la rapidez en la colonización de sustratos. Su distribución espacial y temporal determina la forma en que se distribuyen otros microorganismos, como bacterias, hongos, microfauna, meiofauna y macrofauna, de modo que juegan un papel ecológico importante en la comunidad bentónica (SiqueirosBeltrones, 2002). Esta comunidad es muy rica en sustratos y organismos, por ello se ha procurado especificar la terminología sobre las formas de vida y siguiendo a Round (1984), en este trabajo la referencia a las diatomeas estudiadas como bentónicas corresponde con la definición de herpobentos y se limita a su forma de vida epipélica.
Uno de los ecosistemas que provee un hábitat ideal para las algas bentónicas son los humedales, que por sus sedimentos suaves y flujo de agua moderado se distinguen por incluir algas móviles o sedimentadas (plocónicas) y uno de los elementos que ha hecho que la flora de diatomeas bentónicas domine sobre otras algas es su movilidad, porque secretan una sustancia mucilaginosa que además de que les proporciona unión al sustrato, les permite deslizarse sobre la superficie. Este deslizamiento es distintivo de las diatomeas pennadas con rafe, lo que las hace típicas del bentos, sin embargo algunas diatomeas céntricas secretan mucílago a través de procesos valvares (fulto y rimopórtulas), así que aunque no son frecuentes, también pueden habitar esta comunidad (Lee, 2008).
La zona lacustre de XochimilcoTláhuac funciona ecológicamente como un gran humedal en tanto que está permanentemente cubierto de agua con baja circulación y profundidad somera y los factores climáticos influyen decisivamente su regulación (LiraHernández, 2012; Ramsar, 2015). En la actualidad el humedal de XochimilcoTláhuac se caracteriza por la degradación ambiental como consecuencia de la intensidad de la producción agrícola, el exceso de materia orgánica que se ha generado en los cuerpos de agua y el crecimiento urbano. En este escenario, llama la atención que hasta ahora no han habido estudios de las diatomeas bentónicas de Xochimilco, porque la biota bentónica suele mostrar cambios masivos en composición y riqueza de especies como respuesta a la degradación ambiental (Prasad et al., 2002).
Nuestros resultados permitieron establecer algunas relaciones ecológicas entre los aspectos biológicos y los fisicoquímicos evaluados, lo que fue uno de los principales objetivos del estudio. La composición y riqueza de especies mostraron una relación evidente con los factores ambientales; por ejemplo el registro de Nitzschia frustulum, Pseudostaurosira brevistriata, Fragilaria bidens, Rhoicosphenia abbreviata, Fragilariforma virescens, Staurosira construens, S. construens var. binodis, Staurosirella leptostauron y S. pinnata, las cuales son especies que típicamente se encuentran en los sedimentos de cuerpos de agua someros y eutróficos (Kingston, 2003). La riqueza de especies estuvo estadísticamente correlacionada con la variación de algunos de los parámetros evaluados, lo que mostró que las diatomeas bentónicas pueden ser utilizadas como indicadores ecológicos para dar seguimiento a las condiciones ambientales de la zona lacustre de XochimilcoTláhuac.
Materiales y métodos
Área de estudio. El canal El Japón y el Lago de los Reyes forman parte de la región chinampera de Xochimilco y Tláhuac y se encuentran al sureste de la ciudad de México. El canal El Japón en Xochimilco, con una profundidad no mayor a 3 m, se caracteriza por una intensa actividad ganadera y un gran florecimiento de lirio acuático (Eichhornia crassipes (Mart.) Solms). El Lago de Los Reyes, con una profundidad de 1 a 2 m, se ubica en la cabecera delegacional San Pedro Tláhuac; constituye un espejo de agua de aproximadamente 0.19 km2 y es donde confluyen los canales más importantes que conforman la zona chinampera, el canal de Chalco y el Guadalupano; asimismo, representa el lugar turístico más importante de la jurisdicción (Ensástiga et al., 2010) y además sostiene una gran actividad agropecuaria; a diferencia del canal El Japón y debido a su condición turística el florecimiento de E. crassipes no es intenso.
Ambas zonas ofrecen condiciones someras y abiertas y aunque la mezcla de la columna de agua es frecuente por viento y por la acción mecánica de las embarcaciones propias de la región (trajineras), presentan un deterioro ambiental severo. De acuerdo con Ramos Bello et al. (2001), los suelos de la zona tienen un pH principalmente básico y son ligeramente salinosódicos en las capas superficiales, pero ácidos en las capas más profundas y con altos contenidos de materia orgánica. De acuerdo con RamosBello et al. (íbid) el clima es templado con variaciones de humedad; la precipitación anual es de 970 mm concentrada de junio a octubre y la temperatura media anual es de 16 °C con extremos de 9 a 33 °C.
El lago de Xochimilco que alguna vez formó parte de Texcoco formando un lago de gran tamaño, en la actualidad se ha reducido a una red de canales de anchura variable, con aguas que circundan a las chinampas, a los terrenos de cultivo y a las zonas urbanas.
El agua que es vertida en toda la zona lacustre de Xochimilco proviene principalmente de plantas de tratamiento y contiene una gran cantidad de nutrimentos, pero también existen muchas descargas domésticas, agrícolas y pecuarias en las que el agua no recibe ningún tipo de control por lo que lleva una carga importante de metales pesados, detergentes, sales y organismos patógenos como coliformes y quistes de Giardia (JuárezFigueroa et al., 2003), contaminantes que además elevan la concentración de nutrimentos que aporta el agua tratada. Debido a esto, todos los organismos acuáticos y también la población humana de la zona de estudio, están expuestos a lo que desde el punto de vista de la ecología podemos considerar como una calidad del agua mínima (Kallio et al., 2001).
Recolección y proceso de muestras. El estudio se basó en muestreos quincenales (febrero a mayo de 2011) y mensuales (diciembre de 2010, enero de 2011 y junio a agosto de 2011) con un total de 13 recolecciones. La toma de muestras se realizó con un tubo de acrílico de 180 cm de altura con un diámetro interior de 3 cm. En canal El Japón, 19° 16' 0.91" N , 99° 03' 0.27" O, se eligieron tres sitios al azar; en el Lago de los Reyes también se ubicaron tres sitios de recolección, el primero en el embarcadero, Tláhuac Punto A (19° 16'.002" N, 99° 00' 0.412" O), el segundo a la mitad del lago, Tláhuac Punto B (19° 15' 0.96" N, 99° 00' 0.556" O) y el tercero Tláhuac Punto C (19° 16' 0.01" N, 99° 00' 0.767" O) donde confluyen los canales de Chalco y el Guadalupano. En ambas localidades los sitios se mantuvieron como puntos de recolección permanentes durante el muestreo y en cada recolección, en cada punto se extrajeron tres núcleos de sedimento de 1 cm de grosor. Los núcleos se colocaron independientes en una bolsa de plástico hermética y se mantuvieron en refrigeración hasta su procesamiento. En cada sitio de recolección se tomaron variables físicoquímicas como pH, temperatura y conductividad con equipo portátil (Conductronic, México).
Para el análisis de nutrimentos se utilizó un espectrofotómetro Hach DR/2010, siguiendo los métodos estandarizados para el análisis de agua (Hach, 1997). El nitrógeno inorgánico disuelto se determinó como la suma de concentración de nitrato (método de reducción de cadmio), concentración de nitrito (métodos de diazotización) y concentración de amonio (método del salicilato). La concentración de fósforo total se determinó por el método de digestión ácida y la concentración de sílice por el método del silicomolibdato.
Para observar e identificar el material, se eligió al azar sólo una muestra (núcleo) de cada sitio. De cada muestra obtenida, se obtuvieron las frústulas sólo del sedimento superficial y se prepararon por digestión ácida montando preparaciones permanentes con resina Naphrax™ (Brunel Microscopes Ltd., RU). Se analizó el material montado con un microscopio Nikon Optiphot y los ejemplares se fotografiaron utilizando una cámara digital Nikon Coolpix S10.
Para la identificación se utilizaron las siguientes referencias: Cox (1987), Crawford et al. (2003), Davidovich et al. (2010), Krammer (1997a, 1997b, 1999, 2000, 2003), Krammer y LangeBertalot (1985, 1986, 1988, 1991a, 1991b), Novelo (2012), Novelo et al. (2007), OrozcoMartínez (2011), Patrick y Reimer (1966, 1975), Round et al. (1990); Tuji y Williams (2006); así como las páginas electrónicas: Diatoms of the United States (Spaulding et al., 2010) y Common Freshwater Diatoms of Britain and Ireland (Kelly et al., 2005). La clasificación está basada en Round et al. (1990) la cual se confrontó con Novelo (2012) y Guiry y Guiry (2015).
Trabajo de gabinete. La riqueza se basó en el número de especies que fue observado en cada sitio. La distribución de los sitios del Lago de los Reyes cubrió un área más amplia que en el canal El Japón, por tanto se consideraron separadamente los puntos de colecta Tláhuac A, Tláhuac B, Tláhuac C (Tabla 1). Se determinó la categoría ecológica de cada especie de acuerdo con Wasylik (1965) en la que se distinguen especies dominantes, presentes en el 61 a 100 % de las muestras; las dominantes distinguen florísticamente una región. Especies frecuentes, presentes en 21 a 60 % de las muestras; las frecuentes distinguen la flora local. Las especies raras, presentes en menos de 21 % de las muestras; las raras distinguen la fragmentación de un hábitat. Se recopiló la distribución geográfica mundial y particular para México y los ambientes y la forma de vida registrados para cada especie (Tabla 1). Esta información fue tomada de la base de datos Taxfich (2015) y de Novelo y Tavera (2011).
Las muestras fueron etiquetadas con la referencia de la colección y número de herbario correspondientes y se depositaron en el Herbario de la Facultad de Ciencias, UNAM (FCME).
Análisis estadísticos. La influencia de las variables ambientales en la riqueza de especies fue considerada como suma de presencias por localidad y fecha (Tabla 2); se evaluó a través de un análisis de regresión lineal múltiple con el paquete estadístico IBM SPSS v.17.0 (2008). El análisis reunió los datos de todos los sitios estudiados en ambas localidades y se consideró como variable dependiente a la riqueza; las variables predictoras incluidas en el análisis fueron aquéllas que mostraron una correlación significativa (P ≤ 0.05) con la riqueza y que presentaron significancia estadística para elaborar un modelo de regresión; estas fueron pH y sílice (Tablas 3ac).
Resultados
Florística. Se presenta el registro de 89 especies y dos variedades de diatomeas bentónicas para la zona lacustre de XochimilcoTláhuac. Once especies son descritas por completo y se anota un nuevo registro para México. La información se organizó para enlistar a las especies por orden alfabético dentro de cada jerarquía taxonómica superior y para las especies que han sido registradas y documentadas previamente en México se anotaron las medidas de las valvas; para las especies sin registros publicados previos o sin documentación adecuada se anotaron la sinonimia, la descripción completa y la distribución geográfica; para todas las especies se anotaron el material gráfico y el registro de herbario. En el Tabla 1 se anotaron las localidades donde se observaron en XochimilcoTláhuac, incluyendo la categoría ecológica a la que corresponde una especie en función del número de muestras en las que fue observada en la región; además se anotaron los ambientes y las formas de vida donde se han registrado.
Coscinodiscophytina
Coscinodiscophyceae
Aulacoseirales
Aulacoseiraceae
Aulacoseira Thwaites
Aulacoseira granulata (Ehrenberg) Simonsen
Lámina 1: Figuras 12
Largo del manto, 1015 µm. Diámetro de la valva, 37.5 µm. Densidad de estrías pervalvares, 58 en 10 µm. Densidad de areolas, 11 en 10 µm.
FCME: DFXo243 DFXo245, DFXo247, DFXo249, DFXo251 DFXo253, DFXo256, DFXo257, DFTh67 DFTh71, DFTh74 DFTh87, DFTh89 DFTh92, DFTh94 DFTh96, DFTh106 DFTh109, DFTh111.
Aulacoseira italica (Ehrenberg) Simonsen
Lámina 1: Figura 3
Largo del manto, 8.616.5 µm. Diámetro de la valva, 3.39.2 µm. Densidad de estrías pervalvares, 1015 en 10 µm. Densidad de areolas, 15 en 10 µm.
FCME: DFXo243 DFXo247, DFXo251 DFXo253, DFTh67, DFTh68, DFTh81, DFTh82, DFTh87 DFTh94.1, DFTh96 DFTh99, DFTh106 DFTh111.
Bacillariophytina
Mediophyceae
Thalassiosirophycideae
Thalassiosirales
Stephanodiscaceae
Cyclostephanos Round ex Theriot, Håkansson,
Kociolek, Round & Stoermer
Cyclostephanos invisitatus (Hohn & Hellerman) Theriot, Stoermer & Håkansson
Lámina 1: Figura 4
Diámetro de la valva, 6.612.5 µm. Estrías, 1023 en 10 µm.
FCME: DFXo244 DFXo246, DFXo249, DFXo251, DFXo252, DFXo256, DFTh67 DFTh71, DFTh74 DFTh76, DFTh78 DFTh82, DFTh87, DFTh89, DFTh92 DFTh97, DFTh99, DFTh107 DFTh109, DFTh111.
Cyclotella (Kützing) Brébisson
Cyclotella meneghiniana Kützing
Lámina 1: Figuras 56
Diámetro de la valva, 6.618.5 µm. Diámetro del área central, 3.38.8 µm. Densidad de estrías, 917 en 10 µm.
FCME: DFXo243 DFXo247, DFXo249 DFXo253, DFXo256, DFXo257, DFTh67 DFTh82, DFTh84 DFTh90, DFTh92 DFTh99, DFTh106, DFTh107, DFTh109 DFTh111.
Thalassiosiraceae
Thalassiosira Cleve
Thalassiosira visurgis Hustedt
Lámina 1: Figura 7
Diámetro de la valva, 8.626.0 µm. Areolas, 2025 en 10 µm. Filas de areolas, 1923 en 10 µm.
FCME: DFXo245, DFXo250, DFXo251, DFXo253, DFTh67 DFTh69, DFTh76, DFTh78 DFTh80, DFTh83, DFTh84, DFTh89 DFTh92, DFTh94 DFTh96, DFTh98, DFTh99, DFTh106, DFTh107, DFTh109 DFTh111.
Bacillariophyceae
Fragilariophycidae
Fragilariales
Fragilariaceae
Fragilaria Lyngbye
Fragilaria bidens Heiberg
Lámina 1: Figura 8
= Synedra pulchella var. minuta Hustedt; Synedra rumpens var. fragilarioides f. constricta Hustedt.
Frústulas lanceoladas formadas por márgenes lineares con un ligero abultamiento en el centro; polos rostrados. Área central amplia y abultada en ambos lados de la valva formando una fascia transversal; área axial estrecha y recta; estrías paralelas. Largo de la valva, 14.528.4 µm. Ancho de la valva, 2.63.3 µm. Densidad de estrías, 1318 en 10 µm.
No confundir con Fragilaria capucina var. vaucheriae (Kützing) LangeBertalot ya que presenta un lado abultado en el área central, en cambio Fragilaria bidens presenta abultados ambos lados.
Distribución: Cosmopolita. En México en el D.F.
FCME: DFTh81, DFTh83, DFTh96, DFTh99, DFTh106, DFTh111.
Fragilaria dzonoticola Novelo, Tavera & Ibarra
Lámina 1: Figuras 910
Largo de la valva, 1423.5 µm. Ancho de la valva, 4.55 µm. Densidad de estrías, 1213 en 10 µm. Este es el segundo registro de esta especie.
FCME: DFXo243, DFXo250, DFXo257, DFTh67, DFTh68, DFTh79, DFTh80, DFTh86, DFTh92, DFTh108, DFTh111.
Fragilaria goulardii (Brébisson ex Grunow) LangeBertalot Lámina 1: Figura 11
Largo de la valva, 66.0 µm. Ancho de la valva, 8.5 µm. Densidad de estrías, 1314 en 10 µm.
FCME: DFTh69, DFTh86, DFTh87.
Fragilaria capucina subsp. rumpens (Kützing) LangeBertalot
Lámina 1: Figura 12
= Synedra rumpens Kützing; Fragilaria rumpens (Kützing) Carlson.
Frústulas de forma lanceolada con márgenes rectos con un abultamiento en el centro; polos subrostrados. Área central amplia, se caracteriza por el abultamiento de la valva; área axial más o menos amplia en el centro y estrecha hacia los polos; estrías paralelas que se limitan al margen de la valva. Una rimopórtula polar. Largo de la valva, 32.3 µm. Ancho de la valva, 2.6 µm. Densidad de estrías, 18 en 10 µm.
Esta especie se confunde fácilmente con F. capucina var. vaucheriae y F. capucina Desmaziéres, sin embargo de acuerdo con Tuji y Williams (2006), F. capucina var. vaucheriae se diferencia fácilmente por presentar un abultamiento de un lado de la valva en forma de herradura y una rimopórtula, mientras que F. capucina no presenta polos tan rostrados, tiene dos rimopórtulas. Otra forma de diferenciarlas es en vista cingular, pues F. rumpens se distingue porque la valva se observa más ancha en el centro que en los polos.
Distribución: Cosmopolita. En México el registro es de material fósil (Metcalfe, 1988); este es el primer registro en México como especie actual.
FCME: DFTh75, DFTh81, DFTh94, DFTh96, DFTh106, DFTh108, DFTh109.
Fragilariforma (Ralfs) D.M. Williams & Round
Fragilariforma virescens (Ralfs) D.M. Williams & Round Lámina 1: Figuras 1314
Frústulas con márgenes rectos a convexos; ápices rostrados, con polos redondeados. Un pseudorafe muy estrecho; área axial ausente; estrías muy delgadas, paralelas; una rimopórtula polar. Largo de la valva, 16.535.0 µm. Ancho de la valva, 4.6 µm. Densidad de estrías, 1618 en 10 µm.
Esta especie puede confundirse con Staurosira construens Ehrenberg, sin embargo en esa especie está ausente la rimopórtula y tiene las estrías más gruesas.
Distribución: Cosmopolita. En México en el D.F. y los estados de Jalisco, México, Michoacán y Veracruz.
FCME: DFXo243, DFXo246, DFTh110, DFTh111.
Pseudostaurosira D.M. Williams & Round
Pseudostaurosira brevistriata (Grunow) D.M. Williams & Round
Lámina 1: Figuras 1516
Largo de la valva, 7.326.4 µm. Ancho de la valva, 3.35.0 µm. Densidad de estrías, 1417 en 10 µm.
FCME: DFXo243, DFXo244, DFXo246, DFXo248, DFXo249, DFXo252, DFXo 253, DFXo256, DFXo257, DFTh67, DFTh69 DFTh74, DFTh76, DFTh77, DFTh80, DFTh81, DFTh83 DFTh86, DFTh89, DFTh90, DFTh92 DFTh99, DFTh106 DFTh111.
Staurosira Ehrenberg
Staurosira construens var. construens Ehrenberg
Lámina 1: Figura 17
Largo de la valva, 7.929.0 µm. Ancho de la valva, 3.312.0 µm. Densidad de estrías, 1013 µm.
FCME: DFXo243 DFXo253, DFXo256, DFXo257, DFTh67 DFTh99, DFTh106 DFTh111.
Staurosira construens var. binodis (Ehrenberg) P.B. Hamilton
Lámina 1: Figura 18
Largo de la valva, 13.219.5 µm. Ancho, de la valva 3.35.0 µm. Densidad de estrías, 1516 en 10 µm.
FCME: DFXo252, DFXo256, DFTh79, DFTh89, DFTh90, DFTh94 DFTh98, DFTh106 DFTh109, DFTh111.
Staurosira venter (Ehrenberg) Cleve & Möller
Lámina 1: Figura 19
Largo de la valva, 4.011.0 µm. Ancho de la valva, 2.65.0 µm. Densidad de estrías, 10.014.0 en 10 µm.
FCME: DFXo243 DFXo253, DFXo256, DFXo257, DFTh67 DFTh99, DFTh106 DFTh111.
Staurosirella D.M. Williams & Round
Staurosirella leptostauron (Ehrenberg) D.M. Williams & Round
Lámina 1: Figura 20
Largo de la valva, 5.319.1 µm. Ancho de la valva, 8.09.0 µm. Densidad de estrías, 1013 en 10 µm.
FCME: DFXo243, DFXo244, DFXo246, DFXo248 DFXo253, DFXo256, DFTh68, DFTh70 DFTh72, DFTh74, DFTh76, DFTh77, DFTh79, DFTh80, DFTh82, DFTh85, DFTh88, DFTh89, DFTh92, DFTh94 DFTh99, DFTh106 DFTh111.
Staurosirella pinnata (Ehrenberg) D.M. Williams & Round Lámina 1: Figura 21
Largo de la valva, 3.312.0 µm. Ancho de la valva, 3.35.0 µm. Densidad de estrías, 511 en 10 µm.
FCME: DFXo243, DFXo244, DFXo246, DFXo248 DFXo253, DFXo256, DFTh68, DFTh70 DFTh72, DFTh74, DFTh76 DFTh79, DFTh80, DFTh82, DFTh85, DFTh88, DFTh89, DFTh92, DFTh94 DFTh99, DFTh106 DFTh111.
Tabularia (Kützing) D.M. Williams & Round
Tabularia fasciculata (C. Agardh) D.M. Williams & Round Lámina 1: Figura 22
Largo de la valva, 27.192.4 µm. Ancho de la valva, 2.64.8 µm. Densidad de estrías, 26 en 10 µm.
FCME: DFXo256, DFTh80, DFTh85, DFTh87, DFTh89, DFTh92, DFTh94 DFTh96, DFTh106.
Ulnaria P. Compère
Ulnaria ulna (Nitzsch) P. Compère
Lámina 1: Figura 23
Largo de la valva, 47.5149.8 µm. Ancho de la valva, 4.05.3 µm. Densidad de estrías, 1015 en 10 µm.
FCME: DFXo243 DFXo247, DFXo249 DFXo252, DFTh68, DFTh70, DFTh72, DFTh75, DFTh77, DFTh78, DFTh80 DFTh83, DFTh85, DFTh87 DFTh91, DFTh93 DFTh96, DFTh99, DFTh107, DFTh109, DFTh110.
Eunotiophycidae
Eunotiales
Eunotiaceae
Eunotia Ehrenberg
Eunotia bilunaris (Ehrenberg) Schaarschmidt
Lámina 1: Figura 24
Largo de la valva, 25.157.5 µm. Ancho de la valva, 2.63.3 µm. Densidad de estrías, 1518 en 10 µm.
FCME: DFXo252, DFTh85, DFTh96, DFTh97, DFTh99, DFTh110, DFTh111.
Eunotia flexuosa (Brébisson ex Kützing) Kützing
Lámina 1: Figura 25
Largo de la valva, 91.7138.6 µm. Ancho de la valva, 3.35.0 µm. Densidad de estrías, 1114 en 10 µm.
FCME: DFXo243, DFXo245, DFXo248, DFXo250, DFXo251, DFXo256, DFTh67 DFTh70, DFTh72, DFTh75, DFTh76, DFTh78 DFTh81, DFTh83 DFTh85, DFTh87 DFTh99, DFTh106 DFTh111.
Eunotia pectinalis (Kützing) Rabenhorst
Lámina 2: Figura 26
Las frústulas son alargadas con polos redondeados y subcapitados; el margen ventral es ligeramente cóncavo, en algunas ocasiones presenta un hinchamiento en la parte central de la valva y el margen dorsal es convexo; en los polos se observan claramente las terminaciones del rafe. Las estrías son paralelas, en los polos son ligeramente radiadas y con una distancia menor entre ellas. Largo de la valva, 23.1101.6 µm. Ancho de la valva, 5.310.0 µm. Densidad de estrías en el centro, 913 en 10 µm, en los polos, 1315 en 10 µm.
Distribución: Cosmopolita. En México en el D.F. y los estados de México y Oaxaca.
FCME: DFXo248, DFXo249, DFXo256, DFTh76, DFTh80, DFTh83, DFTh84, DFTh87, DFTh88, DFTh90, DFTh91, DFTh94, DFTh99, DFTh109.
Bacillariophycidae
Cymbellales
Anomoeoneidaceae
Anomoeoneis E. Pfitzer
Anomoeoneis costata (Kützing) Hustedt
Lámina 2: Figuras 2728
Largo de la valva, 17.2104.9 µm. Ancho de la valva, 19.127.7 µm. Densidad de estrías, 1620 en 10 µm.
FCME: DFXo246, DFXo247, DFXo251, DFXo253, DFXo256, DFXo257, DFTh67, DFTh68, DFTh71, DFTh73, DFTh74, DFTh77, DFTh80, DFTh83, DFTh86, DFTh87, DFTh89, DFTh90, DFTh92, DFTh94 DFTh98, DFTh107, DFTh110.
Anomoeoneis sphaerophora E. Pfitzer
Lámina 2: Figura 29
Largo de la valva, 31.7101.6 µm. Ancho de la valva, 8.535.6 µm. Densidad de estrías, 1621 en 10 µm. Densidad de areolas, 1014 en 10 µm.
FCME: DFXo246, DFXo247, DFXo253, DFXo256, DFXo257, DFTh67, DFTh68, DFTh74, DFTh76, DFTh77, DFTh79, DFTh80, DFTh83, DFTh87, DFTh89, DFTh90, DFTh93 DFTh96, DFTh98, DFTh107 DFTh111.
Cymbellaceae
Cymbella C. Agardh
Cymbella aspera (Ehrenberg) Cleve
Lámina 2: Figura 30
Largo de la valva, 88.4138.6 µm. Ancho de la valva, 17.123.5 µm. Densidad de estrías ventrales, 812. Densidad de estrías dorsales, 810 en 10 µm.
FCME: DFXo243, DFXo244, DFXo246 DFXo248, DFXo251, DFXo254, DFXo256, DFXo257, DFTh67, DFTh74, DFTh76, DFTh77, DFTh79, DFTh80, DFTh82, DFTh83, DFTh85, DFTh86, DFTh89, DFTh91, DFTh92, DFTh94, DFTh95, DFTh97, DFTh98, DFTh109.
Cymbella mexicana (Ehrenberg) Cleve
Lámina 2: Figura 31
Largo de la valva, 52.5170.0 µm. Ancho de la valva, 23.132.5 µm. Densidad de estrías dorsales, 7 en 10 µm. Densidad de estrías ventrales, 8 en 10 µm.
FCME: DFXo243 DFXo246, DFXo249, DFXo251, DFXo253, DFTh67 DFTh71, DFTh73, DFTh74, DFTh76, DFTh77, DFTh82 DFTh90, DFTh93, DFTh94, DFTh97, DFTh99, DFTh107, DFTh108, DFTh111.
Encyonema Kützing
Encyonema mesianum (Cholnoky) D.G. Mann
Lámina 2: Figura 32
Largo de la valva, 19.837.5 µm. Ancho de la valva, 4.610.0 µm. Densidad de estrías dorsales, 1115 en 10 µm. Densidad de estrías ventrales, 1015 en 10 µm.
FCME: DFXo243, DFXo245, DFXo247, DFXo248, DFXo251 DFXo253, DFXo256, DFXo257, DFTh67 DFTh82, DFTh84, DFTh85, DFTh87 DFTh 97, DFTh106 DFTh111
Placoneis C. Mereschkowsky
Placoneis exigua (Gregory) Mereschkovsky
Lámina 2: Figura 33
= Navicula exigua (Gregory) Grunow
Frústulas elípticas lanceoladas con ápices ligeramente alargados y polos redondeados. El área axial es delgada y recta; el área central circular, moderadamente amplia, sin estigma central; el rafe es recto con las fisuras proximales rectas y las fisuras distales dobladas hacia el mismo lado; las estrías son radiadas en toda la valva, en el centro se alternan estrías cortas y largas con una separación mayor que las del resto de la valva. Largo de la valva, 25.033.0 µm. Ancho de la valva, 8.010.0 µm. Densidad de estrías, 1415 en 10 µm.
Distribución: Cosmopolita. En México se ha registrado como fósil y en el estado de Oaxaca.
FCME: DFXo246, DFXo247, DFTh70, DFTh78, DFTh87, DFTh91, DFTh93, DFTh94, DFTh96, DFTh97, DFTh99, DFTh106.
Placoneis porifera var. opportuna (Hustedt) E. Novelo, R. Tavera & C. Ibarra
Lámina 2: Figura 34
Largo de la valva, 18.019.0 µm. Ancho de la valva, 8.09.0 µm. Densidad de estrías, 1416 en 10 µm.
FCME: DFXo252, DFXo 256, DFXo257, DFTh89, DFTh98, DFTh107.
Gomphonemataceae
Gomphoneis Cleve
Gomphoneis eriensis (Grunow) Skvortzow & Meyer
Lámina 3: Figura 35
Largo de la valva, 7.357.5 µm. Ancho de la valva, 3.316.5 µm. Densidad de estrías, 1416 en 10 µm.
FCME: DFXo253, DFXo256, DFTh68, DFTh87, DFTh89, DFTh94 DFTh97, DFTh99, DFTh106, DFTh108, DFTh111
Gomphonema Ehrenberg
Gomphonema acuminatum Ehrenberg
Lámina 3: Figura 36
Largo de la valva, 41.047.5 µm. Ancho de la valva, 8.511.0 µm. Densidad de estrías en el centro, 14 en 10 µm. Densidad de estrías en los polos, 1416 en 10µm.
FCME: DFXo243, DFXo244, DFXo246 DFXo248, DFTh70, DFTh76, DFTh78, DFTh79, DFTh88, DFTh91, DFTh93, DFTh94, DFTh97, DFTh108.
Gomphonema affine Kützing
Lámina 3: Figura 37
Largo de la valva, 21.152.5 µm. Ancho de la valva, 6.09.2 µm. Densidad de estrías, 912 en 10 µm.
FCME: DFXo243, DFXo246, DFXo249, DFXo250, DFXo253, DFXo256, DFTh67 DFTh75, DFTh77 DFTh87, DFTh89 DFTh94, DFTh96 DFTh99, DFTh106, DFTh107, DFTh109 DFTh111.
Gomphonema gracile Ehrenberg
Lámina 3: Figura 38
Largo de la valva, 24.450.0 µm. Ancho de la valva, 6.68.0 µm. Densidad de estrías, 1016 en 10 µm.
FCME: DFXo243, DFXo246, DFXo247, DFXo249, DFXo251 DFXo253, DFXo256, DFXo257, DFTh67, DFTh68, DFTh70, DFTh73 DFTh76, DFTh78 DFTh81, DFTh83, DFTh84, DFTh86, DFTh87, DFTh89 DFTh97, DFTh99, DFTh106 DFTh111.
Gomphonema parvulum (Kützing) Kützing
Lámina 3: Figura 39
Largo de la valva, 13.237.0 µm. Ancho de la valva, 4.07.0 µm. Densidad de estrías, 1016 en 10 µm.
FCME: DFXo243 DFXo246, DFXo249 DFXo253, DFTh67 DFTh70, DFTh72 DFTh86, DFTh88, DFTh91, DFTh94, DFTh95, DFTh97, DFTh99, DFTh106 DFTh111.
Gomphonema truncatum Ehrenberg
Lámina 3: Figura 40
Largo de la valva, 31.053.5 µm. Ancho de la valva, 6.08.5 µm. Densidad de estrías, 17 en 10 µm.
FCME: DFXo243, DFXo252, DFTh85 DFTh87, DFTh91, DFTh97, DFTh98, DFTh107.
Rhoicospheniaceae
Rhoicosphenia Grunow
Rhoicosphenia abbreviata (C. Agardh) LangeBertalot Lámina 3: Figuras 4143
Largo de la valva, 20.557.5 µm. Ancho de la valva, 4.010.0 µm. Densidad de estrías, 1012 en 10 µm.
FCME: DFXo243, DFXo246 DFXo248, DFXo250 DFXo252, DFXo256, DFXo257, DFTh67 DFTh72, DFTh75 DFTh87, DFTh89, DFTh90 DFTh99, DFTh106 DFTh111.
Achnanthidiaceae
Achnanthidium Kützing
Achnanthidium exiguum (Grunow) Czarnecki
Lámina 3: Figura 44
Largo de la valva, 9.312.5 µm. Ancho de la valva, 4.05.5 µm. Densidad de estrías, 2527 en 10 µm.
FCME: DFXo243, DFXo244, DFXo246, DFXo251 DFXo253, DFXo256, DFTh67, DFTh69, DFTh70, DFTh74 DFTh76, DFTh78, DFTh79, DFTh81, DFTh82, DFTh84, DFTh87, DFTh91, DFTh94, DFTh95, DFTh97, DFTh98, DFTh106, DFTh109, DFTh111.
Achnanthidium minutissimum (Kützing) Czarnecki
Lámina 3: Figura 45
Largo de la valva, 9.214.4 µm. Ancho de la valva, 2.43.3 µm. Densidad de estrías, 25 en 10 µm.
FCME: DFXo256, DFTh69, DFTh74, DFTh75, DFTh78, DFTh81, DFTh84, DFTh87, DFTh95, DFTh98, DFTh111.
Lemnicola Round & P.W. Basson
Lemnicola hungarica (Grunow) Round & P.W. Basson Lámina 3: Figuras 4647
Largo de la valva, 13.227.5 µm. Ancho de la valva, 5.37.5 µm. Densidad de estrías, 2025 en 10 µm.
FCME: DFXo244 DFXo248, DFXo250 DFXo253, DFXo256, DFXo257, DFTh67 DFTh71, DFTh74 DFTh76, DFTh78 DFTh82, DFTh84, DFTh85, DFTh87, DFTh88, DFTh90 DFTh92, DFTh94 DFTh97, DFTh99, DFTh106 DFTh108, DFTh111.
Planothidium Round & L. Bukhtiyarova
Planothidium frequentissimum (LangeBertalot) Lange.Bertalot
Lámina 3: Figuras 4849
Largo de la valva, 11.017.0 µm. Ancho de la valva, 5.07.0 µm. Densidad de estrías, 1416 en 10 µm.
FCME: DFXo250, DFXo252, DFXo256, DFXo257, DFTh68, DFTh75, DFTh89, DFTh93 DFTh97, DFTh106, DFTh109, DFTh111.
Cocconeidaceae
Cocconeis Ehrenberg
Cocconeis placentula var. euglypta (Ehrenberg) Grunow Lámina 3: Figura 50
Largo de la valva, 13.237.6 µm. Ancho de la valva, 7.921.1 µm. Densidad de estrías, 21 en 10 µm. Densidad de areolas, 1220 en 10 µm.
FCME: DFXo243 DFXo253, DFXo256, DFXo257, DFTh67 DFTh69, DFTh70 DFTh99, DFTh106 DFTh111.
Cocconeis placentula var. lineata (Ehrenberg) van Heurck Lámina 3: Figura 51
Largo de la valva, 17.233.0 µm. Ancho de la valva, 10.617.8 µm. Densidad de estrías, 1216 en 10 µm. Densidad de areolas, 23 en 10 µm.
FCME: DFXo243 DFXo253, DFXo256, DFXo257, DFTh67 DFTh99, DFTh106 DFTh111.
Diadesmidaceae
Diadesmis Kützing
Diadesmis confervacea Kützing
Lámina 3: Figuras 52
Largo de la valva, 10.617.5 µm. Ancho de la valva, 4.67.5 µm. Densidad de estrías, 22 en 10 µm.
FCME: DFXo246, DFXo250, DFXo256, DFTh67, DFTh75, DFTh77, DFTh82, DFTh87, DFTh89, DFTh90, DFTh92 DFTh99, DFTh106, DFTh109, DFTh111.
Luticola D.G. Mann
Luticola goeppertiana (Bleisch) D.G. Mann
Lámina 4: Figura 53
Largo de la valva, 12.021.8 µm. Ancho de la valva, 4.66.6 µm. Densidad de estrías, 2224 en 10 µm. Densidad de areolas, 23 en 10 µm.
FCME: DFXo248, DFXo252, DFTh67, DFTh79, DFTh94, DFTh97, DFTh98, DFTh106, DFTh108, DFTh109, DFTh111.
Neidiaceae
Neidium Pfitzer
Neidium affine (Ehrenberg) Pfitzer
Lámina 4: Figura 54
= Navicula affinis Ehrenberg; Neidium affine var. amphirhynchus (Ehrenberg) Cleve; Neidium affine var. genuinum Cleve; Neidium affine var. longiceps (Gregory) Cleve; Neidium affine var. undulata (Grunow) Cleve.
Frústulas lineallanceoladas con ápices rostrados y polos ligeramente alargados. Conopeum evidente a lo largo de la valva, paralelo al margen; el área axial es recta y estrecha; el área central es elipsoidal y no se extiende hasta los márgenes de la valva; el rafe es filiforme, las fisuras proximales son alargadas, se curvan hacia lados opuestos y se unen por un intermissio, las fisuras distales son bifurcadas; la estriación es muy fina, paralela a ligeramente radiada y punteada. Largo de la valva, 42.2103.0 µm. Ancho de la valva, 11.2 µm. Densidad de estrías, 2328 en 10 µm.
Distribución: Cosmopolita. En México en los estados de Hidalgo, México y Michoacán.
FCME: DFXo253, DFTh69, DFTh72, DFTh74, DFTh75, DFTh77, DFTh81, DFTh84, DFTh97, DFTh108, DFTh110, DFTh111.
Neidium ampliatum (Ehrenberg) Krammer
Lámina 4: Figura 55
Largo de la valva, 45.564.0 µm. Ancho de la valva, 11.213.8 µm. Densidad de estrías, 1720 en 10 µm.
Esta especie es muy parecida a Neidium productum (W. Smith) Cleve sin embargo se diferencia por tener polos más delgados, alargados y la forma de la valva es lineal elíptica.
FCME: DFXo247, DFXo252, DFXo253, DFTh84, DFTh87, DFTh93, DFTh96.
Neidium iridis (Ehrenberg) Cleve
Lámina 4: Figura 56
Largo de la valva, 37.6 µm. Ancho de la valva, 13.2 µm. Densidad de estrías, 17 en 10 µm. Densidad de areolas, 1920 en 10 µm.
FCME: DFXo247, 250, DFTh72, DFTh75 DFTh77, DFTh82, DFTh84, DFTh87, DFTh89.
Diploneis Ehrenberg ex Cleve
Diploneis subovalis Cleve
Lámina 4: Figura 57
Largo de la valva, 19.832.3 µm. Ancho de la valva, 10.618.5 µm. Densidad de estrías, 1114 en 10 µm. Densidad de areolas, 22 en 10 µm.
FCME: DFXo243, DFXo244, DFXo246, DFXo247, DFXo251, DFXo252, DFXo256, DFTh78, DFTh87, DFTh97, DFTh108, DFTh109.
Naviculaceae
Eolimna LangeBertalot & W. Schiller
Eolimna subminuscula (Manguin) Moser, LangeBertalot & Metzeltin
Lámina 4: Figura 58
Largo de la valva, 5.38.5 µm. Ancho de la valva, 2.65.0 µm. Densidad de estrías, 21 en 10.
FCME: DFXo243, DFXo252, DFXo253, DFXo256, DFXo257, DFTh67, DFTh69, DFTh71 DFTh75, DFTh77, DFTh78, DFTh80 DFTh82, DFTh85, DFTh87, DFTh89, DFTh92 DFTh99, DFTh107 DFTh111.
Hippodonta LangeBertalot, Witkowski & Metzeltin
Hippodonta hungarica (Grunow) LangeBertalot, Metzeltin & Witkowski
Lámina 4: Figura 59
Largo de la valva, 12.523.1 µm. Ancho de la valva, 4.06.0 µm. Densidad de estrías, 913 en 10 µm.
FCME: DFXo256, 257, DFTh68, DFTh72, DFTh81, DFTh82, DFTh84, DFTh85, DFTh87, DFTh92, DFTh93, DFTh94, DFTh96, DFTh99, DFTh106, DFTh108, DFTh109, DFTh111.
Geissleria LangeBertalot & Metzeltin
Geissleria tagensis Novais & Ector
Lámina 4: Figura 60
Las frústulas son pequeñas, elípticas con ápices subrostrados y polos redondeados. El área axial es estrecha y recta; el área central es rectangular caracterizada por la presencia de una estría más separada de las demás en ambos lados de la valva; el rafe es recto y filiforme con las fisuras distales y proximales también rectas; las estrías son ligeramente radiales, de la misma longitud. Como característica especial presenta un par de annulos en ambos polos, esto es, areolas más largas que las demás, esta característica se observa fácilmente en microscopia de luz como puntos más gruesos y brillantes. Largo de la valva, 7.914.0 µm. Ancho de la valva, 4.67.2 µm. Densidad de estrías, 18 en 10 µm.
Distribución: Portugal (Novais et al., 2013).
En las localidades donde habita hay una temperatura elevada, conductividad moderada a alta (270718 µS cm1) y un pH circumneutro. En términos de dimensiones se considera muy cercana a Geissleria acceptata (Hustedt) LangeBertalot & Metzeltin, de la que difiere por sus valvas más amplias, un área central también más amplia y estrías más radiales. Como G. acceptata, tampoco posee un poro aislado, por lo que se distingue fácilmente (microscopía de luz) de otras especies de Geissleria a las que también se parece por tamaño y forma de la valva. La similitud entre estas dos especies pudo causar una mala interpretación sobre su presencia en México, pues el único antecedente conocido es como Navicula acceptata Hustedt, en la Laguna Zacapu, Michoacán (Metcalfe, 1988). Es el primer registro para México.
FCME: DFXo243, DFXo248, DFXo252, DFXo253, DFTh72, DFTh74, DFTh87, DFTh89, DFTh96, DFTh99, DFTh108.
Navicula Bory de SaintVicent
Navicula cryptotenella LangeBertalot
Lámina 4: Figura 61
Largo de la valva, 14.526.4 µm. Ancho de la valva, 4.66.1 µm. Densidad de estrías, 1719 en 10 µm.
FCME: DFXo243, DFXo246, DFXo247, DFXo250 DFXo252, DFTh67 DFTh82, DFTh84, DFTh87 DFTh97, DFTh99, DFTh107 DFTh111.
Navicula viridula (Kützing) Ehrenberg
Lámina 4: Figura 62
= Frustulia viridula Kützing; Navicula viridula (Kützing) Kützing; Pinnularia viridula (Ehrenberg) Ehrenberg; Pinnularia virudula (Kützing) Rabenhorst; Schizonema viridulum (Kützing) Kuntze.
Frústulas lineallanceoladas con ápices rostrados y polos obtusos. El área axial es estrecha y recta; el área central es amplia y de forma circular, se caracteriza por presentar estrías más cortas y separadas que el resto, siempre se observan estrías pequeñas en el centro acompañadas de estrías laterales más largas, dándole la forma redondeada al área central, las fisuras proximales del rafe se curvan hacia el lado primario de la valva (opuestas a la discordancia de Voigt) y las fisuras distales con forma de signo de interrogación; estrías radiadas en el centro y paralelas en los ápices. Largo de la valva, 20.542.2 µm. Ancho de la valva, 4.06.6 µm. Densidad de estrías, 1824 en 10 µm.
Distribución: Cosmopolita. En México en el D.F. y en los estados de Guanajuato, Hidalgo, Jalisco, Veracruz y Yucatán.
FCME: DFXo250, DFXo252, DFTh68, DFTh76, DFTh81, DFTh92, DFTh94, DFTh96, DFTh97, DFTh99, DFTh108, DFTh110, DFTh111.
Naviculadicta LangeBertalot
Naviculadicta brasiliana (Cleve) Metzeltin & LangeBertalot Lámina 4: Figura 63
Largo de la valva, 33.048.2 µm. Ancho de la valva, 5.012.5 µm. Densidad de estrías en los polos, 2527 en 10 µm. Densidad de estrías en el centro de la valva, 2526 en 10 µm.
FCME: DFXo243, DFTh89, DFTh94, DFTh96, DFTh99, DFTh110.
Naviculadicta pseudoventralis (Hustedt) LangeBertalot Lámina 4: Figura 64
= Navicula pseudoventralis Hustedt
Frústulas linealelípticas con ápices redondeados y polos alargados. El área axial es estrecha y recta; el área central es de forma rectangular y se caracteriza por presentar 2 estrías más pequeñas que el resto; fisuras proximales del rafe rectas; estrías ligeramente radiadas a lo largo de toda la valva. Largo de la valva, 8.513.5 µm. Ancho de la valva, 4.05.0 µm. Densidad de estrías, 1920 en 10 µm.
Distribución. Templada. En México en la región central (como Navicula pseudoventralis). Es una especie con pocos registros, se ha reportado como una especie indicadora de ambientes oligomesotroficos (Whitton et al., 2003, Potapova & Charles 2007), sin embargo en XochimilcoTláhuac es una especie frecuente, lo que modifica su carácter indicador.
FCME: DFXo243, DFXo246, DFXo250, DFXo252, DFXo257, DFTh85, DFTh89, DFTh95 DFTh97, DFTh99, DFTh106 DFTh108, DFTh110, DFTh111.
Pinnulariaceae
Caloneis Cleve
Caloneis bacillum (Grunow) Cleve
Lámina 4: Figuras 6566
Largo de la valva, 17.533.7 µm. Ancho de la valva, 4.610 µm. Densidad de estrías, 2228 en 10 µm.
FCME: DFXo245, DFXo248, DFXo252, DFXo256, DFTh69, DFTh75, DFTh81, DFTh84, DFTh87, DFTh89, DFTh90, DFTh96, DFTh97, DFTh99, DFTh106, DFTh108, DFTh109.
Caloneis silicula (Ehrenberg) Cleve
Lámina 4: Figura 67
Largo de la valva, 32.350.8 µm. Ancho de la valva, 10.012.5 µm. Densidad de estrías, 20 en 10 µm.
FCME: DFXo246, DFXo252, DFXo256, DFXo257, DFXo257, DFTh69, DFTh78, DFTh86, DFTh87, DFTh89, DFTh99, DFTh109, DFTh111.
Pinnularia Ehrenberg
Pinnularia acrosphaeria W. Smith
Lámina 5: Figura 68
Largo de la valva, 46.2177.5 µm. Ancho de la valva, 3.313.2 µm. Densidad de estrías, 1115 en 10 µm.
FCME: DFXo256, DFTh68 DFTh70, DFTh79, DFTh81, DFTh88, DFTh91, DFTh94, DFTh95, DFTh97 DFTh99, DFTh106, DFTh107, DFTh109.
Pinnularia acuminata W. Smith
Lámina 5: Figura 69
= Navicula acuminata (W. Smith) Ralfs; Pinnularia viridis var. acuminata (W. Smith) Brun; Navicula viridis var. acuminata (W. Smith) M. Peragallo.
Frústulas linearlanceoladas con polos no alargados y ápices cuneados. El área axial es amplia en toda la valva y estrecha en los polos; el área central no se diferencia del área axial; el rafe es filiforme, las fisuras proximales se curvan hacia el mismo lado y las fisuras distales tienen forma de hoz; las estrías son radiadas en el centro y paralelas en los polos, en el centro de la valva hacia los márgenes no hay estrías. Largo de la valva, 56.180.0 µm. Ancho de la valva, 12.015.0 µm. Densidad de estrías, 10 en 10 µm.
Distribución. Cosmopolita. En México en el D.F. y en el estado de Veracruz.
FCME: DFXo246, DFXo251, DFTh69, DFTh75, DFTh77, DFTh79, DFTh81, DFTh91, DFTh92, DFTh97, DFTh99, DFTh106.
Pinnularia gibba (Ehrenberg) Ehrenberg
Lámina 5: Figura 70
Largo de la valva, 24.460.0 µm. Ancho de la valva, 4.69.0 µm. Densidad de estrías, 915 en 10 µm.
FCME: DFXo243 DFXo245, DFXo247, DFXo249 DFXo251, DFXo256, DFTh67 DFTh70, DFTh72, DFTh75 DFTh79, DFTh81 DFTh83, DFTh85 DFTh91, DFTh93, DFTh95 DFTh99, DFTh106 DFTh109, DFTh111.
Pinnularia viridis (Nitzsch) Ehrenberg
Lámina 5: Figura 71
Largo de la valva, 79.2135.3 µm. Ancho de la valva, 15.221.8 µm. Densidad de estrías, 913 en 10 µm.
FCME: DFXo246, DFXo250, DFXo256, DFTh76, DFTh106, DFTh110.
Sellaphoraceae
Fallacia Stickle & D.G. Mann in Round,
Crawford & Mann
Fallacia pygmaea (Kützing) A.J. Stickle & D.G. Mann Lámina 5: Figura 72
Largo de la valva, 19.822.4 µm. Ancho de la valva, 7.9 µm. Densidad de estrías, 3032 en 10 µm.
FCME: DFXo248, DFTh68, DFTh77, DFTh90, DFTh96, DFTh110.
Sellaphora Mereschkowsky
Sellaphora laevissima (Kützing) D.G. Mann
Lámina 5: Figura 73
Largo de la valva, 29.043.0 µm. Ancho de la valva, 6.612.5 µm. Densidad de estrías, 18 en 10 µm.
FCME: DFXo243, DFXo244, DFXo246, DFXo247, DFXo250, DFXo251, DFXo253, DFTh68 DFTh70, DFTh76 DFTh79, DFTh81, DFTh82, DFTh87 DFTh91, DFTh93, DFTh94, DFTh96, DFTh97, DFTh99, DFTh106 DFTh111.
Sellaphora pupula (Kützing) Mereschkowsky
Lámina 5: Figura 74
Largo de la valva, 19.842.9 µm. Ancho de la valva, 5.98.5 µm. Densidad de estrías, 23 en 10 µm.
FCME: DFXo243, DFXo246 DFXo249, DFXo253, DFXo256, DFTh68 DFTh72, DFTh74 DFTh91, DFTh94 DFTh96, DFTh99, DFTh106 DFTh108, DFTh110, DFTh111.
Stauroneidaceae
Craticula Grunow
Craticula ambigua (Ehrenberg) D.G. Mann
Lámina 5: Figuras 7576
= Navicula ambigua Ehrenberg; Navicula cuspidata var. ambigua (Ehrenberg) Cleve.
Frústulas elípticolanceoladas con ápices rostrados, polos redondeados y márgenes convexos. El área axial es recta y estrecha; el área central no se distingue claramente del área axial, sin embargo se observa ligeramente lanceolada; el rafe es filiforme con las fisuras proximales rectas y las fisuras distales dirigidas hacia el mismo lado; un nódulo central pequeño; estrías ligeramente radiadas a lo largo de toda la valva y con areolas muy finas. Largo de la valva, 36.059.4 µm. Ancho de la valva, 10.016.5 µm. Densidad de estrías en el centro, 1920 en 10 µm; en los polos, 2223 en 10 µm.
Distribución: Cosmopolita. En México en los estados de Baja California Sur y Tabasco.
De acuerdo con LangeBertalot (2001) este taxón fue considerado erróneamente como un sinónimo de Craticula cuspidata. La diferencia entre estos taxones es la forma de la valva, que en el caso de C. cuspidata es rómbicolanceolada con ápices no alargados y en el caso de C. ambigua es elípticolanceolada con los ápices alargados.
FCME: DFXo243, DFXo256, DFXo257, DFTh67, DFTh85, DFTh107, DFTh111.
Craticula cuspidata (Kützing) D.G. Mann
Lámina 6: Figura 77
Largo de la valva, 92.4113.0 µm. Ancho de la valva, 20.423.1 µm. Densidad de estrías en el centro, 1521 en 10 µm; en los polos, 22 en 10 µm.
FCME: DFXo243, DFXo246, DFXo253, DFXo256, DFXo257, DFTh67, DFTh70, DFTh77, DFTh79, DFTh83, DFTh84, DFTh87, DFTh95, DFTh99, DFTh108, DFTh110, DFTh111.
Craticula halophila (Grunow) D.G. Mann
Lámina 6: Figura 78
Largo de la valva, 16.520.50 µm. Ancho de la valva, 4.05.0 µm. Densidad de estrías, 25 en 10 µm.
FCME: DFXo250, DFXo253, DFTh81, DFTh96, DFTh108.
Stauroneis Ehrenberg
Stauroneis phoenicenteron (Nitzsch) Ehrenberg
Lámina 6: Figura 79
Largo de la valva, 91.1102.3 µm. Ancho de la valva, 17.018.0 µm. Densidad de estrías, 1721 en 10 µm. Densidad de areolas, 1416 en 10 µm.
FCME: DFXo246, DFXo248, DFXo251, DFXo253, DFTh75, DFTh77, DFTh81, DFTh87, DFTh89 DFTh91, DFTh93 DFTh96, DFTh99, DFTh106, DFTh110, DFTh111.
Thalassiophysales
Catenulaceae
Amphora C.G. Ehrenberg ex F. T. Kützing
Amphora copulata (Kützing) Schoeman & R.E.M. Archibald
Lámina 6: Figura 80
Largo de la valva, 27.140.5 µm. Ancho de la valva, 6.08.0 µm. Densidad de estrías dorsales, 13 en 10 µm; estrías ventrales, 1215 en 10 µm.
FCME: DFXo243 DFXo245, DFXo247 DFXo253, DFXo256, DFXo257, DFTh67 DFTh75, DFTh77 DFTh87, DFTh89, DFTh91 DFTh94, DFTh96, DFTh98, DFTh99, DFTh107 DFTh110.
Halamphora (Cleve) Levkov
Halamphora coffeaeformis (C. Agardh) Levkov
Lámina 6: Figura 81
Largo de la valva, 23.134.3 µm. Ancho de la valva, 5.26.6 µm. Densidad de estrías, 21 en 10 µm.
FCME: DFXo246, DFXo252, DFXo257, DFTh79, DFTh95, DFTh106, DFTh111.
Halamphora veneta (Kützing) Levkov
Lámina 6: Figura 82
Largo de la valva, 13.226.4 µm. Ancho de la valva, 3.35.0 µm. Densidad de estrías, 2329 en 10 µm.
FCME: DFXo244, DFXo247, DFXo251 DFXo253, DFXo256, DFXo257, DFTh67 DFTh72, DFTh74 DFTh99, DFTh106 DFTh111.
Bacillariales
Bacillariaceae
Denticula Kützing
Denticula valida (Pedicino) Grunow
Lámina 6: Figuras 8384
Largo de la valva, 21.833.0 µm. Ancho de la valva, 8.017.2 µm. Densidad de estrías, 1517 en 10 µm.
FCME: DFXo243, DFXo 244, DFXo246 DFXo248, DFXo250 DFXo253, DFXo256, DFXo257, DFTh67, DFTh68, DFTh69, DFTh72 DFTh78, DFTh80 DFTh82, DFTh84 DFTh90, DFTh92, DFTh93, DFTh96, DFTh 97, DFTh99, DFTh106 DFTh108, DFTh110, DFTh111.
Hantzschia Grunow
Hantzschia amphioxys (Ehrenberg) Grunow
Lámina 6: Figura 85
Largo de la valva, 25.747.0 µm. Ancho de la valva, 5.07.0 µm. Densidad de estrías, 2528 en 10 µm. Densidad de fíbulas, 811 en 10 µm.
FCME: DFXo246, DFXo253, DFTh79, DFTh106, DFTh110, DFTh111.
Nitzschia Hassall
Nitzschia acicularis (Kützing) W. Smith
Lámina 6: Figura 86
Largo de la valva, 41.656.1 µm. Ancho de la valva, 2.64.0 µm. Densidad de fíbulas, 1324 en 10 µm.
FCME: DFXo244DFXo246, DFXo251, DFXo252, DFTh67, DFTh68, DFTh71, DFTh75, DFTh78, DFTh80, DFTh89, DFTh93 DFTh96, DFTh107, DFTh110, DFTh111.
Nitzschia amphibia Grunow
Lámina 6: Figura 87
Largo de la valva, 21.552.5 µm. Ancho de la valva, 3.34.5 µm. Densidad de estrías, 1720 en 10 µm. Densidad de fíbulas, 910 en 10 µm.
FCME: DFXo249, DFXo250, DFXo252, DFXo253, DFXo257, DFTh81, DFTh83, DFTh87, DFTh89, DFTh92 DFTh96, DFTh98, DFTh109, DFTh111.
Nitzschia clausii Hantzsch
Lámina 6: Figura 88
Largo de la valva, 17.7 µm. Ancho de la valva, 4 µm. Densidad de fíbulas, 1013 en 10 µm.
FCME: DFXo249, DFTh79, DFTh83, DFTh89, DFTh106, DFTh111.
Nitzschia communis Rabenhorst
Lámina 6: Figura 89
Largo de la valva, 13.236.3 µm. Ancho de la valva, 3.34.0 µm. Densidad de fíbulas, 1424 en 10 µm.
FCME: DFXo256, DFXo257, DFTh92, DFTh106, DFTh110.
Nitzschia frustulum (Kützing) Grunow
Lámina 6: Figura 90
Largo de la valva, 11.243.5 µm. Ancho de la valva, 3.34.0 µm. Densidad de estrías, 1828 en 10 µm. Densidad de fíbulas, 814 en 10 µm.
FCME: DFXo243 DFXo253, DFXo256, DFXo257, DFTh67 DFTh99, DFTh106 DFTh111.
Nitzschia gracilis Hantzsch
Lámina 6: Figura 91
Largo de la valva, 50.8 µm. Ancho de la valva, 4.0 µm. Densidad de fíbulas, 15 en 10 µm.
FCME: DFTh70, DFTh85, DFTh94, DFTh106, DFTh109.
Nitzschia palea (Kützing) W. Smith
Lámina 6: Figura 92
Largo de la valva, 21.171.5 µm. Ancho de la valva, 3.35.0 µm. Densidad de fíbulas, 1115 en 10 µm.
FCME: DFXo245, DFXo252, DFXo256, DFTh89, DFTh90, DFTh95, DFTh96, DFTh106 DFTh111.
Nitzschia umbonata (Ehrenberg) LangeBertalot
Lámina 6: Figura 93
Largo de la valva, 37.057.4 µm. Ancho de la valva, 6.07.0 µm. Densidad de estrías, 30 en 10 µm, Densidad de fíbulas, 10 en 10 µm.
FCME: DFXo244 DFXo246, DFXo248, DFXo251, DFXo252, DFTh67, DFTh93, DFTh94.
Tryblionella W. Smith
Tryblionella apiculata Gregory
Lámina 7: Figura 94
Largo de la valva, 45.054.8 µm. Ancho de la valva, 6.07.2 µm. Densidad de estrías, 2022 en 10 µm.
FCME: DFXo253, DFXo256, DFTh109, DFTh111.
Rhopalodiales
Rhopalodiaceae
Epithemia Brébisson
Epithemia adnata (Kützing) Brébisson
Lámina 7: Figura 95
Largo de la valva, 22.477.5 µm. Ancho de la valva, 7.212.5 µm. Costillas, 35 en 10 µm. Hileras de areolas, 1012 en 10 µm.
FCME: DFXo243, DFXo245 DFXo248, DFXo252, DFXo253, DFXo256, DFXo257, DFTh68, DFTh69, DFTh71, DFTh72, DFTh74 DFTh 80, DFTh82, DFTh84, DFTh86 DFTh97, DFTh99, DFTh106 DFTh111.
Epithemia sorex Kützing
Lámina 7: Figura 96
Largo de la valva, 21.025.0 µm. Ancho de la valva, 7.08.0 µm. Densidad de estrías, 1516 en 10 µm. Densidad de costillas, 78 en 10 µm. Estrías entre costillas, 13.
FCME: DFXo246, DFXo251, DFTh68, DFTh70, DFTh75, DFTh76, DFTh79, DFTh80, DFTh82, DFTh83, DFTh85, DFTh87, DFTh88, DFTh90, DFTh91, DFTh92, DFTh94, DFTh95, DFTh97, DFTh98, DFTh106, DFTh107, DFTh109, DFTh110.
Epithemia turgida (Ehrenberg) Kützing
Lámina 7: Figura 97
Largo de la valva, 53.489.1 µm. Ancho de la valva, 12.015.2 µm. Densidad de costillas, 4 en 10 µm. Hileras de areolas, 8 en 10 µm.
FCME: DFXo244, DFXo246, DFXo248, DFXo250 DFXo253, DFXo256, DFXo257, DFTh67 DFTh70, DFTh72 DFTh93, DFTh95, DFTh97 DFTh99, DFTh106 DFTh111.
Rhopalodia O. Müller
Rhopalodia gibba (Ehrenberg) O. Müller
Lámina 7: Figuras 9899
Largo de la valva, 56.1120.8 µm. Ancho de la valva, 6.07.5 µm. Densidad de estrías, 1015 en 10 µm.
FCME: DFXo243, DFXo246, DFXo247, DFXo251, DFXo253, DFXo256, DFXo257, DFTh67, DFTh68, DFTh72 DFTh77, DFTh79, DFTh83, DFTh85, DFTh87 DFTh91, DFTh94, DFTh95, DFTh97, DFTh106, DFTh107, DFTh109 DFTh111.
Rhopalodia gibberula (Ehrenberg) O. Müller
Lámina 7: Figura 100
Largo de la valva, 38.3 µm. Ancho de la valva, 11.2 µm. Densidad de fíbulas, 5 en 10 µm. Densidad de estrías, 19 en 10 µm.
FCME: DFXo246, DFXo253, DFXo257, DFTh76, DFTh98, DFTh107.
Rhopalodia operculata (C. Agardh) Håkanasson
Lámina 7: Figura 101
Frústulas semielípticas con el margen dorsal convexo y el margen ventral recto; ápices redondeados con polos ligeramente alargados. El rafe es ventral; las costillas delgadas se observan más separadas en el centro que en los polos; estrías ligeramente radiadas. Largo de la valva, 20.042.5 µm. Ancho de la valva, 6.010.0 µm. Densidad de fíbulas, 6 en 10 µm. Estrías entre fíbulas, 5.
Distribución: Cosmopolita. En México en el D.F. y en los estados de Guanajuato, Michoacán y Puebla.
FCME: DFXo244, DFXo246, DFXo251 DFXo253, DFXo256, DFXo257, DFTh67, DFTh70, DFTh71, DFTh73 DFTh80, DFTh82, DFTh83, DFTh87, DFTh90, DFTh93 DFTh95, DFTh97, DFTh99, DFTh106, DFTh107, DFTh109, DFTh111.
Surirellales
Surirellaceae
Cymatopleura W. Smith
Cymatopleura solea (Brébisson) W. Smith
Lámina 7: Figura 102
Largo de la valva, 88.492.5 µm. Ancho de la valva, 17.820.0 µm. Densidad de costillas, 8 en 10 µm. Densidad de estrías, 27 en 10 µm.
FCME: DFTh75, DFTh87, DFTh90, DFTh92, DFTh99.
Surirella Turpin
Surirella biseriata Brébisson
Lámina 7: Figura 103
Largo de la valva, 102.3 µm. Ancho de la valva, 30 µm. Canales, 9 en 10 µm.
FCME: DFXo247, DFXo248, DFXo256, DFXo257, DFTh83, DFTh88, DFTh89.
Surirella brebissonii Krammer & LangeBertalot
Lámina 7: Figura 104
Largo de la valva, 55.2 µm. Ancho de la valva, 31.7 µm. Densidad de estrías, 1824 en 10µm, Canales, 7 en 10µm.
FCME: DFTh82.1.
Surirella tenera W. Gregory
Lámina 7: Figura 105
Largo de la valva, 70.0102.3 µm. Ancho de la valva, 20.030.0 µm. Canales, 6 en 10 µm.
FCME: DFXo253, DFTh92, DFTh99.
Frecuencia y afinidad geográfica de las especies. Con base en la calificación ecológica de las especies (Tabla 1) se determinó que 22 especies fueron dominantes. Destacan Cocconeis placentula var. euglypta, Nitzschia frustulum y Cyclotella meneghiniana por su presencia en 4852 de las 54 muestras analizadas. La mayoría de las especies fueron frecuentes (42 especies) y 27 especies fueron raras y destacan Surirella brebissonii, Surirella tenera y Fragilaria goulardii que estuvieron presentes en 1 a 3 muestras. Considerando la distribución geográfica, la mayoría de las especies tiene una distribución cosmopolita (68 especies); 17 especies presentan una distribución templada, 12 de ellas han sido registradas también en el trópico y 5 tenían hasta ahora una distribución exclusivamente templada. De las 6 especies con distribución tropical, dos han sido registradas también en zonas templadas.
Análisis estadísticos. En la Tabla 2 se reunieron por localidad y fecha los datos de riqueza y variables fisicoquímicas medidas. En la Tabla 3a se muestran las variables que se correlacionaron significativamente con la riqueza y que fueron la temperatura, pH, conductividad (Pearson significativo con un valor de P ≤ 0.01) y sílice (Pearson significativo con un valor de P ≤ 0.05). El análisis de regresión lineal múltiple mostró un valor de R2 ajustada pequeño (0.174), por lo que para elaborar el modelo se seleccionaron sólo las variables pH y sílice pues mostraron significancia tanto en la varianza de la regresión (ANOVA, P = 0.003) como en los coeficientes Beta (P ≤ 0.03), con valores de tolerancia cercanos a 1.0 (Tabla 3 b, c). De acuerdo con los coeficientes estandarizados propuestos por el modelo de regresión, las contribuciones del pH y del sílice fueron negativas y se expresó matemáticamente con la ecuación de regresión del modelo generado (Tabla 3c):
Riqueza = 98.273 (valor) 4.04 (pH) 0.969 (sílice).
Discusión
Las clases Mediophyceae y Bacillariophyceae (pennadas) fueron las mejor representadas con un 95 % de la composición total mientras que la clase Coscinodiscophyceae (centrales) solamente contó con un 5 %. Esto apoya lo que han establecido algunos autores (Lee, 2008; Round et al., 1990; Wetherbee et al., 1998) sobre la forma de vida bentónica como la que predomina en las diatomeas penadas, pues argumentan que se relaciona con la presencia del rafe y los campos porosos apicales que les permiten asociarse con algún tipo de sustrato.
La flora bentónica de XochimilcoTláhuac se calificó como tolerante a una gama amplia de condiciones (Tablas 2, 3), lo que posibilita su presencia en ambientes con un grado importante de alteración. La diversidad observada entonces reúne especies propias de ambientes eutróficos a hipereutróficos y es significativa en comparación con los estudios iniciales realizados en el área de Xochimilco enfocados al plancton, en los que sólo se habían registrado 56 especies de diatomeas para toda la zona lacustre (FloresGranados, 1980; ReynosoÁlvarez, 1986; Figueroa et al., 2008). En este estudio estamos registrando un total de 91 taxones, con sólo un 42 % de ellas compartidas con los registros que mencionamos anteriormente, lo que implica un aumento sustancial en el registro de la diversidad.
Un enlace entre la diversidad registrada y la forma de vida bentónica muestra aspectos interesantes, pues se encontraron especies principalmente epipélicas, pero también planctónicas y epífitas. En el caso de las especies planctónicas, comparten la característica de ser eurioicas y por ello se registran con más de una forma de vida (Smol y Stoermer, 2010). Tal es el caso de Achnanthidium minutissimum, Aulacoseira italica, Cyclotella meneghiniana, Nitzschia frustulum, Pseudostaurosira brevistriata, Fragilaria bidens, Rhoicosphenia abbreviata, Fragilariforma virescens, Staurosira construens y S. construens var. binodis, Staurosirella leptostauron y S. pinnata (Tabla 1), las cuales son especies que frecuentemente se encuentran en los sedimentos (Kingston, 2003).
Otro caso de particular atención es la presencia de Aulacoseira granulata, ya que a pesar de ser una especie planctónica se encontró en el sedimento como dominante en ambas localidades. Esto puede explicarse pues es una especie fuertemente silificada con una rápida tasa de sedimentación y una de las más adaptables a condiciones de baja irradianza, a diferencia de otras especies planctónicas con alta biomasa (Reynolds, 1994; Hall y Smol, 2001); también es determinante que en columnas mezcladas A. granulata se resuspende a menudo desde los sedimentos (Vila y Pardo, 2003) por lo que se registra también como una especie común en el plancton del Canal El Japón y el Lago de los Reyes (Figueroa et al., 2008; LiraHernández, 2012). En el caso de Staurosirella leptostauron y S. pinnata, también dominantes en la zona (Tabla 1), la resuspensión frecuente no es una limitante debido a su talla pequeña, así que las consideramos tanto planctónicas como bentónicas.
La presencia de especies epífitas como las de los géneros Cocconeis, Epithemia, Amphora y Rhopalodia no es rara en sedimentos debido a que pueden adherirse también al sedimento, no sólo a los tejidos vegetales y como también son especies altamente silificadas (Tiffany, 2011), es frecuente observar frústulas de estas especies acompañando a la flora epipélica (Round, 1984). La presencia de estas especies en la zona de estudio se promueve por el desarrollo abundante de macrofitas, principalmente el lirio acuático.
La calificación ecológica de las especies mostrada en los resultados destaca por dos aspectos, primero porque documenta detalladamente los nuevos registros y las especies poco conocidas para el país como es el caso de Geissleria tagensis y de Naviculadicta brasiliana, N. pseudoventralis, Fragilaria capucina ssp. rumpens y Placoneis exigua. Asimismo, la calificación ecológica verifica que la cuarta parte de las diatomeas bentónicas de esta cuenca lacustre tienen una presencia definida como dominantes en las localidades estudiadas, y de acuerdo con el índice aplicado (Wasylik, 1965) estas especies podrían estar distribuidas en toda la zona lacustre de XochimilcoTláhuac, es decir que se deben considerar especies regionales. El 46 % de las especies se califican como frecuentes, por lo que deben considerarse especies locales de los sitios estudiados y el 30 % que corresponde con las especies calificadas como raras, son especies que podrían estar disminuyendo su área de distribución, por lo que son observadas ocasionalmente. Esto se relaciona con fragmentación del hábitat, que en las condiciones hipereutróficas de la cuenca lacustre es el escenario posible para especies con afinidad ecológica restringida y señalan la necesidad de estudios más frecuentes (Fahrig, 2003).
La calificación ecológica se apoyó además en el análisis de regresión, que está respaldado por los valores de correlación entre la riqueza y algunas de las variables ambientales. La estadística de colinearidad (Tabla 3c) indicó que las variables son adecuadas para explicar el comportamiento de la riqueza, pero en vista del bajo valor de R2 ajustada pensamos que la variabilidad debe ser más amplia de lo estimado y esto también sugiere que se requiere un muestreo más frecuente, mayor de un año. El modelo generado nos permite prever cierto comportamiento ambiental para las diatomeas bentónicas de la zona lacustre de XochimilcoTláhuac e indica que no se benefician cuando el pH alcanza valores acentuadamente básicos y cuando las concentraciones de sílice son muy altas, lo que fue frecuente en los cuerpos de agua estudiados (Tabla 2). Es notable la designación de "alcalífila" para más de la mitad de las especies que estamos registrando (Tabla 1) y esta designación usualmente aplica a valores de pH de 8.0 a 8.5 (Stevenson et al., 1996), que de acuerdo con nuestros datos comúnmente se eleva (73 % de las medidas) muy por encima de este intervalo (Tabla 2). Además, de acuerdo con el modelo presentado existe una relación de riqueza y sílice; cuando este alcanza los valores mayores (19.525.4 mg l1) se registra la mínima riqueza y por el contrario cuando presenta valores menores (14.819.4 mg l1), la riqueza es mayor. De acuerdo con la propuesta de Brzezinski (1985) las diatomeas requieren del ácido silíceo además de nitrógeno y fósforo para sintetizar sílice biogénico para la construcción de sus frústulas y este autor especifica una proporción Redfield de C:Si:N:P = 106:15:16:1. De acuerdo con nuestros datos, aunque la riqueza no tuvo una correlación significativa con nitrógeno inorgánico disuelto ni con fósforo total, la proporción promedio de sílice fue diez veces mayor a la esperada con respecto al fósforo y el nitrato fue diez veces menor que la proporción esperada respecto al sílice (Tabla 2) y este desbalance puede también afectar la riqueza, pues para algunas diatomeas la asimilación de sílice es dependiente de la concentración de nitrato (aunque no de otras formas de nitrógeno); esta relación sin embargo puede afectar más la composición de especies y no la riqueza que es lo que estamos evaluando, debido a variaciones en las sensibilidades particulares (van Ruth et al., 2012).
Otro aspecto importante a considerar con respecto a la asimilación de sílice es la influencia que el pH puede tener sobre las respuestas a nivel de membrana de las células, porque depende del sitio de localización de los transportadores en la célula (MartinJézéquel et al., 2000). Se piensa que la tasa de asimilación de sílice (que dependerá de las estrategias de las especies) también influye en la construcción de la frústula, lo que sugiere que un mecanismo de control intracelular acopla el transporte con la asimilación (ibid).
Otro nivel en el que pueden relacionarse sílice y pH es la disolución de diatomeas; por encima de valores de pH 9.0 las tasas de disolución se incrementan exponencialmente debido a la disociación del ácido silícico (Leira, 1998; Ramírez et al., 2007). En trabajos realizados anteriormente en esta localidad y enfocados al monitoreo de clorofila a, se ha explicado que debido a la intensidad de la actividad agropecuaria, el canal El Japón puede ser el sitio donde los cambios en el pH respondan más directamente a cambios en la materia orgánica disuelta en el agua de esta cuenca lacustre, que debe ser altamente variable (VillegasCastañeda, 2011) y se ha observado que en ocasiones las fluctuaciones en valores de pH pueden rebasar el valor de 10.0, aunque en toda la cuenca lacustre esto pueda ocurrir de forma intermitente (Tavera y Díez, 2009; XolalpaLaurel, 2009; LiraHernández, 2012).
Como hemos mostrado, hay varios argumentos que apoyan la interacción especiesambiente en la zona estudiada. Estos resultados se suman a la documentación ecológica precisa de muchas especies de diatomeas de agua dulce, que está aún en construcción para México (Tavera et al., 1994; CantoralUriza, 1997; Novelo et al., 2007; Ibarra et al., 2009, SeguraGarcía, 2011) y permitirá construir patrones más generales.
Agradecimientos
Los autores agradecen el apoyo técnico de Guadalupe Vidal para la preparación de las muestras y la documentación de herbario y las sugerencias de Enrique Cantoral y David A. Siqueiros.
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