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Revista de investigación clínica
versión On-line ISSN 2564-8896versión impresa ISSN 0034-8376
Rev. invest. clín. vol.57 no.1 Ciudad de México ene./feb. 2005
Artículo de revisión
Lectinas vegetales y sus efectos en el cáncer
Plant lectins and their effects on cancer
Adriana CastilloVillanueva,* Fikrat Abdullaev*
* Laboratorio de Oncología Experimental, Instituto Nacional de Pediatría, SS.
Reimpresos:
Dr. Fikrat Abdullaev
Laboratorio de Oncología Experimental,
Instituto Nacional de Pediatría
Avenida IMÁN # 1, Torre de Investigación, 6o. piso.
04530 México, D.F.
Tel. 525510 84 09 00 Ext. 1474 Fax: 525510 84 55 33
Correo electrónico: fikrat@servidor.unam.mx o frikrat@yahoo.com.
Recibido el 12 de mayo de 2004.
Aceptado el 9 de diciembre de 2004.
ABSTRACT
Recently, there has been increased interest in the potential health benefits of plant lectins, particularly due to their anticancer effect. This updated review discusses literature data published on the anticancer activities of plant lectins and their possible molecular mechanism(s) of action.
Key words. Plant lectin. Cytotoxicity. Anticancer and antitumor activities.
RESUMEN
La importancia de estudiar compuestos naturales para utilizarlos como opciones médicas terapéuticas, específicamente contra el cáncer, nos da la pauta para realizar una revisión exhaustiva de la literatura concerniente a la actividad biológica de las lectinas vegetales, las cuales han sido reportadas por poseer propiedades tóxicas, citotóxicas, antitumorales y anticancerígenas. En este trabajo revisamos diferentes estudios publicados sobre el mecanismo de acción de las lectinas con respecto a su efecto antitumoral.
Palabras clave. Lectinas de plantas. Citotoxicidad. Actividades anticancerígenas y antitumorales.
INTRODUCCIÓN
Las lectinas son un grupo de proteínas de origen noinmune que comparten la propiedad de enlazarse de forma específica y reversible a los carbohidratos, ya sean libres o que formen parte de estructuras más complejas. Estas proteínas usualmente tienen al menos dos sitios de unión por molécula: un azúcar específico y una molécula glicosilada. Como característica particular tienden a aglutinar a las células a las cuales se unen.1 Este tipo de moléculas se encuentra distribuida en la naturaleza, en diferentes organismos como microorganismos, hongos, animales y plantas.
En las plantas, la mayoría de estas moléculas están presentes en los cotiledones y endospermos de las semillas y constituyen de 2 a 10% del total de proteína de éstas.2 Se sugiere que dentro de la planta, estas proteínas pueden tener diferentes funciones como son: regulación fisiológica, defensa mecánica contra el ataque de microorganismos, almacenamiento de proteínas, transporte de carbohidratos, estimulación mitogénica, reconocimiento de las bacterias fijadoras de nitrógeno del género Rhizobium, y algunas más.3
La gran importancia de las lectinas se debe fundamentalmente a sus propiedades biológicas como la interacción con grupos sanguíneos específicos, aglutinación de linfocitos, eritrocitos, espermatozoides, plaquetas, bacterias y células tumorales, inducción de la mitosis en el linfocito, y efectos citotóxicos sobre los linfocitos.46 Algunas de sus aplicaciones son: análisis de funciones linfoproliferativas y citotóxicas en células mononucleares causadas por algunas drogas, detección de anormalidades cromosómicas, como marcadores fluorescentes para estudiar cambios estructurales en los glicoconjugados presentes en las superficies celulares, y la detección de transformaciones malignas en las células, entre otras.2
La primera lectina de planta fue descubierta en 1888 en extractos de semillas de Ricinus communis por Stillmark y se le llamó Ricina (RCA). Más tarde, Hellin descubrió la abrina (APA) en semillas de Abrus precatorius por su característica de hemoaglutinante.7 Sin embargo, no es sino hasta 1963 que Aub et al.8 describen que las lectinas de plantas pueden distinguir entre células normales y células malignas y que la diferencia está en la superficie, en otras palabras, que la alteración de la superficie celular es propiedad de células cancerígenas.8 Debido a sus propiedades específicas, las lectinas se han utilizado como herramientas en la bioquímica, biología celular, inmunología, genética y biomedicina con propósitos analíticos y preparativos, así como para el diagnóstico y terapia en el cáncer.2,4,9
Los glicoconjugados de las superficies celulares son conocidos por su desempeño importante en las interacciones célulacélula, tales como el reconocimiento, la comunicación y adhesión.1012 Tales interacciones son también importantes en la tumorogénesis, progresión del tumor y metástasis.11,13 Durante la diferenciación celular y la transformación maligna, la biosíntesis de las cadenas de oligosacáridos de glicoproteínas es frecuentemente alterada y esta alteración puede ser detectada por las lectinas.1416 Dentro de los estudios de membrana se ha reportado el uso de lectinas para investigar cambios estructurales en las superficies celulares.4,17
El objetivo de este trabajo fue realizar una revisión bibliográfica de los estudios publicados sobre el efecto antitumoral de las lectinas de plantas tanto in vivo como in vitro, que nos permita entender el o los mecanismos de acción de estas moléculas sobre células malignas.
EFECTO ANTITUMORAL DE LAS LECTINAS DE PLANTAS
En el campo de la quimioterapia contra el cáncer, el estudio de las lectinas ha jugado un rol importante. Diferentes estudios in vivo e in vitro con numerosas lectinas de plantas han demostrado que poseen actividad antitumoral (efecto inhibitorio en el crecimiento del tumor) y actividad anticarcinogénica (efecto inhibitorio en la inducción del cáncer por carcinógenos).18 Los trabajos reportados utilizando diferentes lectinas de plantas en casos de cáncer, nos permiten entender que los mecanismos de acción de estas proteínas son muy variados dependiendo de diferentes factores como pueden ser el origen celular, clase de tumor y concentración de lectina (Cuadro 1).
Desde los años setenta se reporta la actividad antitumoral de las lectinas de plantas. La administración intraperitoneal de ricina (RCA) y abrina (APA) en ratones inducidos inhibe el crecimiento de los tumores derivados del carcinoma ascítico Ehrlich19 y en reportes recientes se describe el mecanismo de toxicidad tanto de la ricina como de la abrina.20,21 En otro trabajo, se demostró que la inyección de Con A (Canavalia ensiformis) produce la inhibición del desarrollo tumoral en hamsters (células de polioma transformado 3T3).22 A partir de entonces se han reportado muchos estudios con diferentes lectinas de plantas y su efecto en las células tumorales.
En estudios subsecuentes se reporta que la administración intraperitoneal de la lectina GS1 (Griffonia simplicifolia) en ratones con células asciticas Ehrlich, también inhibe el crecimiento de los tumores por su efecto citotóxico.23,24 Otros autores examinaron la actividad antitumoral de diferentes lectinas: Phaseolus vulgaris (PHA), Glycine max (SBA) y Triticum vulgare (WGA) en células murina en el linfoma ascítico in vivo y encontraron que las cuatro lectinas inhibieron el crecimiento del tumor y aumentaron la posibilidad de vida.25
La dieta con PHA en animales estimulados con células de tumores ascíticos Kreb II provocó que se desarrollaran tumores más lentamente que los controles y se observó que el número total de células tumorales, sus proteínas, DNA, RNA y contenidos de poliaminas se redujeron en comparación con los controles.26 Mukhopadhyay, et al., en 1994, examinaron el efecto de SBA en la suplementación de la dieta con esta lectina en el crecimiento de células de murina del linfoma ascítico y su función inmune en el huésped. Ellos sugieren que el posible mecanismo antitumoral de SBA pueda deberse al fortalecimiento del sistema inmune del huésped.27 Otros trabajos han demostrado que el efecto de las lectinas TMA I y TMA II (Tricholoma mongolicum) es inhibir el crecimiento de células de sarcoma 180 y prolongar la vida de los ratones con tumores.28
Por otro lado, también se han reportado estudios que demuestran el efecto citotóxico de las lectinas en células tumorales in vitro. El estudio con cinco diferentes lectinas: PHA, GSA, Con A, WGA, PNA (Arachis hypogaea), en el crecimiento celular de tres líneas celulares de cáncer colorrectal humano (LoVo, HCT15 y SW837) se ve afectado de manera diferente dependiendo de la concentración y el tipo de lectina, concluyendo que estas lectinas tienen un potencial para afectar el crecimiento de las colonias cancerígenas in vitro.29 Se han reportado estudios sobre la especificidad de las lectinas y su unión a carbohidratos en tres líneas celulares de carcinoma colorrectal humano (CaCo2, HT29 y HCT8), utilizando diferentes lectinas marcadas con fluorescencia: DBA (Dolichos bifíorus), PNA, LCA (Lens culinaria), STL (Solanum tuberosum), UEAI (Ulex europaeus I), y WGA. Se describió la tasa de unión a las diferentes líneas celulares, reflejando el patrón de glicosilación de las células.30 La unión específica de las lectinas sobre residuos de azúcares ha permitido realizar otros estudios con lectinas como la ABL (Agaricus bisporus) que se unen a un disacárido galactosilado expresado en queratinocitos. Estos estudios determinaron que esta lectina reversiblemente inhibe la proliferación de líneas celulares de cáncer sin citotoxicidad y con potencial terapéutico en situaciones como la psoriasis.31
La comparación de patrones de unión de las lectinas en diferentes líneas celulares de melanoma humano ha sido analizada. La glicosilación está generalmente alterada en células tumorales en comparación con su contraparte normal. En este estudio se analizaron comparativamente los patrones de las glicoproteínas de células de melanoma humano utilizando diferentes lectinas marcadas (SNA: Sambucus nigra, MAA: Maackia amurensis y PHA: Phaseolus vulgaris) y se sugiere que en el melanoma humano, la expresión de ramificación y complejos sialilatados del tipo Noligosacáridos se incrementan en las células de sitios metastáticos. También se sugiere que los carbohidratos están asociados con la adquisición del potencial metastásico de células tumorales.32
Extractos de Viscum album (muérdago) son ampliamente utilizados como tratamientos complementarios para el cáncer en Europa. En estos extractos, la presencia de las lectinas se ha identificado como el principal activo. La proliferación celular de 16 líneas celulares con extractos acuosos del muérdago fue investigada, reportándose que en los extractos conteniendo altas cantidades de lectinas se muestra actividad antitumoral en la línea celular de cáncer mamario.33 Por otro lado, ya se ha reportado la inhibición de células de cáncer mamario humano con el uso de otras lectinas.34
También se ha hecho un estudio comparativo de muérdago europeo (Viscum album) y muérdago coreano (Viscum album var. coloratum), donde la purificación de la lectina de este último (VCA) muestra que el peso molecular de sus cadenas A y B son diferentes de la lectina purificada del europeo (VAA); sin embargo, encontraron que ambas mostraron actividad similar de citotoxicidad (IC50 igual a 1.2 ng/ mL) contra células Molt4.35
ESTUDIOS REPORTADOS EN LOS ÚLTIMOS ANOS CON LECTINAS DE PLANTAS Y SU EFECTO A NIVEL MOLECULAR
En 1997 se publicó una revisión bibliográfica sobre el efecto antitumoral de las lectinas de plantas in vivo e in vitro. En este estudio se sugiere que este efecto está asociado con la habilidad de las lectinas para modular el crecimiento, la diferenciación, proliferación y apoptosis donde la mayoría de éstos está mediado por los receptores de superficie.18 Los efectos bioquímicos que se han reportado de las lectinas de plantas en células malignas son la inhibición de la síntesis de DNA, RNA y proteínas.29,36 Sin embargo, si el efecto es directo o si es un resultado indirecto de las lectinas, aún es cuestionable. También se describen otros posibles mecanismos por los cuales las lectinas pueden actuar, como su actividad citotóxica vía apoptosis, el efecto de las lectinas en la actividad de dos enzimas la DNA polimerasa y RNA polimerasa, y en la regulación del sistema de adenilación en la membrana celular.37,38 De esta manera, Abdullaev y González (1997)18 revisaron que las lectinas de plantas pueden modular procesos biológicos en las células tales como el crecimiento, la adhesión, transformación maligna, metástasis y apoptosis, proponiendo que las lectinas pueden ser una herramienta útil en las investigaciones sobre el cáncer, para su diagnóstico y como terapéutico. Sin embargo, aún se requieren de más estudios para entender el o los mecanismos del efecto antitumoral de éstas.
A partir de 1999 se han reportado diferentes estudios que permiten entender más el mecanismo de acción a nivel molecular de las lectinas de plantas en relación con su efecto antitumoral.
Con el particular interés de comparar la actividad hemoaglutinante y el efecto citotóxico de diferentes extractos de leguminosas mexicanas para la proliferación, formación de colonias y síntesis de DNA de células cancerígenas, se realizó un estudio donde extractos de frijol tepari (Phaseolus acutifiolius), frijol común (P. vulgaris) y mezquite (Prosopisjuliflora) muestran tener diferentes efectos inhibitorios dosisdependiente. Aparentemente, no existe una correlación entre el contenido proteico, la actividad hemoaglutinante y la actividad citotóxica; siendo el mezquite el que presenta una mayor actividad citotóxica, proponiendo que la purificación y caracterización de las lectinas de estas plantas son necesarias para determinar su(s) mecanismo (s) de acción.
En 1999, se realizaron estudios con VFA (Vicia faba, haba) en la proliferación celular, la adhesión celular, la incorporación de aminoácidos y en la diferenciación de tres líneas celulares derivadas de adenocarcinoma colorrectal (LS174T, SW1222 y HT29). En las tres líneas celulares se observa agregación (10 µg/mL) y se incrementa la diferenciación morfológica relacionada con la adhesión de la molécula epCAM. También se describe la inhibición en la proliferación de las líneas celulares de una manera dosisdependiente y reversible, que no está asociada a la citotoxicidad y se ve incrementada la incorporación de aminoácidos.40
En ese mismo año se determina que la ABL (Algaricus bisporus inhibe) la proliferación de células epiteliales41 de una manera reversible y bloquea la importación de proteínas nucleares dependiente de NLS. 120 µg/mL producen 81% de inhibición de la incorporación de timidina en el DNA de la línea celular de adenocarcinoma HT29. La ABL inhibe la proliferación celular sin citotoxicidad, se internaliza a la célula y bloquea el canal de proteínas dependiente de NLS en el núcleo.42
Bantel, et al., en 1999, investigaron el mecanismo de inducción de MLI en la citotoxicidad de líneas celulares T y B leucémicas. MLI desata la muerte celular y como resultado, la inducción de la apoptosis, la cual fue enteramente dependiente de la activación intracelular de las proteasas de la familia de las caspasas. MLI consiste de dos subunidades que se describen como la cadena B que se requiere para la unión a la membrana celular y la internalización de la cadena A. Esta última se encuentra involucrada en la inactivación ribosomal con la inhibición de la síntesis de proteínas.43
Experimentos sobre el crecimiento de tumores intraperitoneales y subcutáneos de linfoma noHodgkin (NHL) en ratones fueron reducidos con dietas de PHA.44'45 La suplementación en la dieta con lectina de muérdago (ML1) reduce la masa de tumores murina NHL casi 60%.46
En el 2001 se publicaron estudios de VCA en células de leucemia promieloide aguda HL60 demostrando que la viabilidad es dosisdependiente y su IC50 es igual a 5 ng/mL. VCA induce la muerte celular a través del mecanismo de apoptosis, sugiriendo que es por la activación de proteasas caspasa3, la cual fragmenta a PARP [poli(ADPribose)polymerasa].47
Las actividades anticancerígenas y antimetastásicas de la VCA fueron investigadas utilizando la línea celular del melanoma B16BL6 y se demostró que VCA causa una reducción dosisdependiente del crecimiento celular (con una IC50 de 25 ng/mL) e induce la apoptosis. En ratones inoculados con células B16BL6, la VCA no fue capaz de bloquear la formación de tumores, sin embargo, la supervivencia se incrementó y mostró un efecto antimetastásico. VCA inhibe la angiogénesis de una manera dosisdependiente.48
En 2002 se demostró que la VCA induce la apoptosis en células de hepatocarcinoma humano SKHep1 y Hep3B. Esta inducción es a través de la activación de Bax (acelerador de apoptosis) y la inhibición de Bcl2 (supresor de apoptosis). La VCA induce apoptosis a través de la activación de las proteasas caspasa3 e inhibe la actividad de la telomerasa.49
En ese mismo año, se reportó que ABL se internaliza inhibiendo la proliferación y selectivamente bloqueando el importe de proteínas nucleares dependiente de NLS (el cual es esencial para mantener las funciones celulares), y se sugiere que la proteína Orpl50 truncada funciona como factor de transporte citosólico.50 Otros investigadores reportaron que DSA (Datura stramonium) induce irreversiblemente la diferenciación de células de glioma C6, inhibe la proliferación de una manera dosisdependiente, suprime la síntesis de DNA, actúa en la etapa temprana de la proliferación celular e incrementa la expresión de GFAP (proteína de filamento). También se reportó que esta lectina puede distinguir entre glicorreceptores astrocíticos y neuronales.51 En trabajos con abrina se reportó un efecto antitumoral en tumores trasplantados en ratones.52
En el 2003 se reportó que la lectina de Agrocybe aegerita (AAL) tiene un efecto antitumoral inducido vía apoptosis y con actividad de DNAasa. En este estudio se investigaron diferentes líneas celulares derivadas de tumores humanos HeLa, SW480, SCG7901, MGC803, BGC823, HL60 y sarcoma de ratón S180, demostrándose que AAL inhibe su crecimiento; y que in vivo también inhibe la viabilidad de células tumorales S180.53
El efecto inhibitorio de las lectinas aisladas del muérdago coreano (KMLC) en la metástasis de células tumorales murina (melanoma B16BL6, carcinoma de colon 26M3.1 y linfoma L5178YML25) fueron investigadas en ratones in vivo, sugiriendo que estas lectinas tienen una actividad inmunomoduladora para aumentar y fortalecer el sistema de defensa del huésped contra los tumores. Su efecto terapéutico y profiláctico en la metástasis está asociado con la activación de células de muerte natural (NK) y macrófagos.54
Estudios realizados en ratones con tumores NHL sometidos a dietas con un contenido de lectina de muérdago (ML1, 10 mg por día) demostraron que el grado de actividad mitótica en los tumores está reducida en 75%, la infiltración en los tumores de células positivas CD3 está incrementada y hay presencia de cuerpos apoptóticos en los tumores.55
EFECTOS ADVERSOS DE LAS LECTINAS, REPORTES CLÍNICOS
Aunque se han descrito a las lectinas en su actividad antitumoral, es importante mencionar que también se describen como moléculas altamente tóxicas y que la utilización de éstas en algunos casos puede presentar efectos adversos.
La toxicidad de las lectinas se caracteriza por la capacidad de inactivar los ribosomas y se clasifican como proteínas RIP II.56 Dentro de las lesiones patológicas que se describen con la ingesta o administración de lectinas en animales o humanos, se observa la presencia de parenquimatosis, degeneración grasa y edema en varios tejidos. También se describe que las lectinas se unen a los grupos glicosilados de las membranas de las células epiteliales del tracto digestivo, impidiendo la absorción de nutrientes, además la presencia de coágulos en los capilares de todos los órganos, y hemorragias locales en el sitio de aplicación.57,58
Hay estudios en donde se reportan efectos secundarios en la utilización de algunas lectinas como agentes antitumorales. La ricina que ha sido probada por varias rutas aplicación local, intratumoral e intrarterial en pacientes con tumores, ha reportado una variedad de resultados. En un ensayo clínico con bajas dosis de ricina administradas por vía intravenosa a pacientes con cáncer fueron toleradas. Los síntomas que se presentaron fueron igual que los de una gripa, con fatiga y dolor muscular, y algunas veces con náuseas y vómito, empezando los síntomas de cuatro a seis horas después de la administración y durando de uno a dos días. Sin embargo, para el caso de la abrina se reportaron dos muertes en Fase I de ensayos clínicos; estos pacientes presentaron ataques generales y signos de toxicidad en el sistema nervioso central.59
En otro estudio se caracterizó la reactividad inmunológica en pacientes con efectos secundarios durante el tratamiento con extracto acuoso de muérdago europeo, encontrándose la producción variada de citocinas TH1 y TH2, lo cual indica que diferentes mecanismos están involucrados en la inducción de los efectos secundarios. En este estudio se concluye que los efectos secundarios producidos por el muérdago son raros y están dominados por una reacción en el sitio de aplicación sugiriendo la participación de reacciones retrasadas tipo hipersensibilidad.60
Un paciente con un adenocarcinoma de páncreas inoperable fue tratado con inyecciones intraperitumoral y peritumoral de extracto de Viscum album L, el cual contenía 5,700 ng/mL de lectina. Después de la tercera inyección se presentó una marcada eosinofilia. La condición general del paciente fue estable durante el tratamiento y se concluye que la lectina puede estar asociada con la hipereosinofilia, así como también con la producción de citocinas TH1 y TH2.61 La intensidad y el curso del tiempo de las reacciones locales parecen depender de la concentración de las lectinas de muérdago.62
En otro trabajo se reportan tres casos clínicos en donde hay reacciones anafilácticas severas después de la inyección de muérdago, dos de ellos en pacientes con cáncer y un tercero como una propuesta preventiva por el hecho de que un hermano padecía cáncer.63
Hay estudios preclínicos que muestran un efecto citotóxico e inmunoestimulado de muérdago, predominantemente en el sistema celular inmune. La base de datos clínicos, sin embargo, no es tan buena como los resultados experimentales. Hasta ahora, no se ha visto una acción directa anticancerígena o un mejoramiento en el tiempo de progresión del tumor o en general en la supervivencia de pacientes con cáncer. La terapia con muérdago no ha adquirido un lugar estable en la oncología, sin embargo, en un futuro, investigaciones clínicas bien planeadas serán necesarias para verificar las primeras conclusiones positivas con respecto a un mejoramiento de la calidad de vida de los pacientes con cáncer.64
Numerosos estudios in vitro y preclínicos con muérdago han reportado efectos de inmunoestimulación, citotóxicos y proapoptóticos. La traducción de estos efectos en respuestas clínicas continúa planteando un problema. Mientras en un número de estudios clínicos se ha encontrado mejoramiento en la calidad de vida, los datos de la eficacia del muérdago para prolongar la supervivencia son contradictorios y de calidad variable. Los datos de los ensayos clínicos con respecto a la toxicidad y farmacocinética de los compuestos del muérdago con conocimiento in vitro o en actividad preclínica son deficientes.65
LECTINAS COMO INMUNOTOXINAS PARA EL TRATAMIENTO DE CÁNCERES HUMANOS
Dada las propiedades de las lectinas como proteínas RIP, algunos estudios se han enfocado en el uso de éstas para la producción de inmunotoxinas contra el cáncer, donde la lectina o su parte activa es unida a un anticuerpo monoclonal, que posee un sitio receptor específico para células tumorales.66 La ricina, altamente tóxica, ha sido estudiada como componente de estos agentes antitumorales. La ricina nativa, o sólo la cadena A de ésta, es conjugada a anticuerpos monoclonales específicos de células tumorales. Se han realizado estudios clínicos de Fase I y Fase II con estos compuestos como agentes anticancerígenos. Aunque los resultados han sido prometedores, hay dos factores que parecen limitar la eficacia de ricina como inmunotoxina:
1. Carece de especificidad al anticuerpo.
2. Inmunotoxigenicidad significativa del motivo de la toxina, que resulta en un rápido ataque de inmunidad al agente terapéutico.59
Por otro lado, también se reporta que el principal efecto adverso dosis limitante de la terapia en pacientes con la inmunotoxina formada por la cadena A de ricina es el síndrome vascular infiltrado.67
Kreitman, en 1999, hace una revisión acerca de la terapia del cáncer con inmunotoxinas, sugiriendo que esta terapia tiene un potencial de eficiencia clínica en pacientes con enfermedades malignas que son intratables con cirugía, radiación y quimioterapia. Las inmunotoxinas se empiezan a desarrollar como nuevos antígenos para el tratamiento del cáncer.68
Un trabajo de análisis retrospectivo en 102 pacientes con recaída de linfoma noHodgkin y tratados con inmunotoxinas de ricina en cinco ensayos clínicos de Fase I, indicó que el síndrome vascular infiltrado fue más frecuente y severo en pacientes que previamente fueron tratados con radioterapia. Excluyendo a estos pacientes la dosis máxima de tolerancia de inmunotoxina no se alcanzó en ningún ensayo y son más altas que las reportadas previamente, por lo que se sugiere que para los ensayos clínicos en lo sucesivo se podría incrementar las dosis de inmunotoxina.69
Otro estudio reporta el uso de inmunotoxinas de ricina en la Fase I de estudio en 19 niños con recaimiento de linfoma y leucemia de linaje B. La dosis máxima de tolerancia fue de 40 pg/kg por día y la toxicidad de la dosis fue el síndrome capilar infiltrado.â¢
En una evaluación clínica de inmunotoxinas de ricina en pacientes con linfoma de Hodgkin, se determinó la dosis máxima de tolerancia, la toxicidad dosis limitante, la farmacocinética, la actividad antitumoral y la respuesta inmune contra las inmunotoxinas. Dentro de los resultados se reporta que hay remisiones parciales, respuestas menores, enfermedades estables y se concluye que las inmunotoxinas muestran moderada eficacia en pacientes con linfoma Hodgkin.71
El mecanismo de acción tóxica de la ricina es actualmente estudiada para la preparación de inmunotoxinas selectivas, las cuales podrían ser utilizadas en la terapia de varios tipos de cáncer. Hay resultados prometedores in vitro, pero algunos efectos adversos in vivo limitan el uso de esta preparación en la terapia real.72
En un trabajo reciente se describe que la construcción de una immunotoxina a partir de la cadena A desglicosilada de ricina es segura y efectiva contra células de carcinoma humano creciendo subcutáneamente en ratones.73
SUGERENCIAS DEL MECANISMO DE ACCIÓN DE LAS LECTINAS PARA SU EFECTO ANTITUMORAL
Los estudios realizados in vitro e in vivo sobre las lectinas y su participación en el cáncer han sido numerosos y demuestran que éstas pueden modular diversos procesos biológicos, tales como el crecimiento celular, la adhesión, acoplamiento, transformación maligna, metástasis y apoptosis.18,40,42,43,48,51,54 En los últimos años los trabajos que se han realizado con diferentes lectinas de plantas en células cancerígenas demuestran que la acción de éstas varía desde la especificidad de unión a azúcares hasta el mecanismo de acción a nivel molecular (Cuadro 1).
La utilización de las lectinas como moléculas marcadoras en células transformadas ha demostrado que la unión de las lectinas es específica en las líneas celulares y esto podría reflejar distintas vías de progresión de las líneas individuales celulares tumorales.32,74,75
A nivel metabólico se describe una secuencia de eventos desde que las lectinas entran al tracto digestivo:
1. Unión a linfocitos
2. Liberación de citocinas en la sangre.
3. Activación y liberación de linfocitos del bazo en la circulación.
4. Activación de células NK y macrófagos.
5. Producción de factores antiangiogénicos, dando como resultado una escasa vascularización y estancamiento de suministros de oxígeno.
6. Combinación de hiperplasia intestinal y efecto antiangiogénico reduciendo la disponibilidad de nutrientes para el tumor
7. Efecto citotóxico sobre las células tumorales.55
A nivel bioquímico y molecular del efecto antitumoral de las lectinas, se proponen diferentes mecanismos de acción. Un mecanismo describe la unión de lectinas a moléculas de adhesión de la superficie (epCAM) que participan en una gran variedad de señales de traducción que son importantes para la regulación celular.40 Un segundo mecanismo sugiere que la lectina se internaliza en la célula y afecta el proceso celular fundamental para la división celular.42 La lectina se une a una forma truncada de Orpl50 la cual está directamente involucrada en el proceso del importe nuclear dependiente de NLS.50 Un tercer mecanismo explica que la lectina induce apoptosis por diversas vías:
1. Dependiente de la activación intracelular de la caspasa 8/FLICE requiriendo la internalización de la lectina e involucra su actividad inhibitoria ribosomal y de la síntesis de proteínas.43
2. A través de la activación de la caspasa3 y la ruptura de PARP.46
3. Por la activación de Bax (acelerador de apoptosis) y la inhibición tanto de Bcl2 (supresor de apoptosis) como de la telomerasa.49
En estudios más recientes se ha descrito que las leetinas inducen la muerte celular apoptótica a través de la desfosforilación de Akt en correlación con la inhibición de la actividad de la telomerasa y la activación de la caspasa3.76 Con todos estos estudios se sugiere que las lectinas disparan cambios moleculares que dan como resultado la inhibición del crecimiento celular y la inducción de la muerte celular apoptótica de células cancerígenas (Cuadro 1). Por otro lado, cabe mencionar que también se han reportado trabajos en donde las lectinas aumentan la sensibilidad de las células tumorales a drogas,7779 y su utilización en el diseño de immunotoxinas para el tratamiento del cáncer.68
CONCLUSIONES
En la búsqueda de agentes derivados de plantas como opciones contra el cáncer,80 se confirma la actividad antitumoral de las lectinas de plantas, siendo éstas una herramienta útil en las investigaciones del cáncer, así como para el diagnóstico y terapia en la medicina moderna. La acción de las lectinas varía desde la especificidad de unión a azúcares hasta el mecanismo de acción a nivel molecular. La especificidad en las diferentes líneas celulares tumorales podría reflejar distintas vías de progresión de estas últimas. A nivel molecular se han descrito algunos mecanismos apoptóticos que desencadenan diferentes lectinas. Sin embargo, es importante hacer hincapié en que la respuesta del uso de las lectinas a nivel clínico continúa planteando un problema, ya que se reportan resultados contradictorios, es necesaria la continuidad de las investigaciones relacionadas con las lectinas de plantas como alternativa para el tratamiento del cáncer.
AGRADECIMIENTOS
Los autores agradecemos al Dr. Silvestre Frenk por su valiosa revisión y comentarios acerca de este escrito y al CONACyT por el apoyo recibido, proyecto CO14001.
REFERENCIAS
1. Goldstein IJ, Hughes RS, Monsigny M, Osawa T, Sharon N. What should be called a lectin? Nature 1980; 285: 6656. [ Links ]
2. Hernández DP, Martin GO, Rodríguez PV, Ganem BF. Aplicaciones de las lectinas. Rev Cubana Hematol Inmunol Remoter 1999; 15: 915. [ Links ]
3. Pusztai AJ. Plant lectins. Cambridge: Cambridge University Press, 1991. [ Links ]
4. Sharon N, Lis H. History of lectins: from hemagglutinins to biological recognition molecules. Glycobiology 2004; 14(11): 53R62R. [ Links ]
5. Lajolo FM, Genoves MI. Nutritional significance of lectins and enzyme inhibitors from legumes. J Agrie Food Chem 2002; 50(22): 65928. [ Links ]
6. Sharon N, Lis H. Lectinsproteins with a sweet tooth: functions in cell recognition. Essays Biochem 1995; 30: 5975. [ Links ]
7. Ohba H, Moriwaki S, Bakalova R, Yasuda S, Yamasaki N. Plantderived abrina induces apoptosis in cultured leukemic cell lines by different mechanism. Toxicol Appl Pharmacol 2004: 195(2): 18293. [ Links ]
8. Aub JC, Tieslau C, Lankester A. Reactions of normal and tumor cell surfaces to enzymes. I. Wheat germ lipase and associated mucopolysaccharides. Proc Nati Acad Sci USA 1963; 50: 6139. [ Links ]
9. Guillot J, Guerry M, Konska G, CaldefieChezet F, De Latour M, PenaultLlorca F. Modification of glycoconjugates during the carcinogenesis: the case of mammary carcinomas. Bull Cancer 2004; 91(2): 14158. [ Links ]
10. Gabius HJ, Probing the cons and pros of lectininduced immunomodulation: case studies for the mistletoe lectin and galectin1. Biochimie 2001; 83(7): 65966. [ Links ]
11. Kannagi R, Izawa M, Koike T, Miyazaki K, Kimura N. Carbohydratemediated cell adhesion in cancer metastasis and angiogenesis. Cancer Sci 2004; 95(5): 37784. [ Links ]
12. Kobata A. A retrospective and prospective view of glycopathology. Glycoconjugates J 1998; 15: 32331. [ Links ]
13. Gabius HJ, Gabius S. Glycosciences: status and perspectives. London: Chapman and Hall; 1997. [ Links ]
14. Fan X, She YM, Bagshaw RD, Callahan JW, Schachter H, Mahuran DJ. A method for proteomic identification of membranebound proteins containing Asnlinked oligosaccharides. Anal Biochem 2004; 332(1): 17886. [ Links ]
15. Hakomori S. Cancerassociated glycosphingolipid antigens: their structure, organization and function. Acta Anat 1998; 161: 7990. [ Links ]
16. Dabelsteen E. Cell surface carbohydrates as prognostic markers in human carcinomas. J Pathol 1996; 179: 35869. [ Links ]
17. Kitamura N, Guo S, Sato T, Hiraizumi S, Taka J, Ikekita M, Sawada S, Fujisawa H, Furukawa K. Pronostic significance of reduced expression of betaNacetylgalactosaminylated Nlinked oligosaccharides in human breast cancer. Int J Cancer 2003; 105(4): 53341. [ Links ]
18. Abdullaev FI, González de Mejía E. Antitumor effect of plant lectins. Natural toxins 1997; 5: 15763. [ Links ]
19. Lin JK, Tserng KY, Chen CC, Lin LT, Tung TC. Abrin and ricin: new antitumor substances. Nature 1970; 227: 2923. [ Links ]
20. Doan LG. Ricin: mechanism of toxicity, clinical manifestations, and vaccine development. J Toxicol Clin Toxicol 2004; 42(2): 2018. [ Links ]
21. Dickers KJ, Bradberry SM, Rice P, Griffiths GD, Vale JA. Abrin poisoning. Toxicol Rev 2003; 22(3): 13742. [ Links ]
22. Shoham J, Inbar M, Sachs L. Differential toxicity on normal and transformed cells in vitro and inhibition of tumour development in vivo by concanavalin A. Nature 1970; 227: 12446. [ Links ]
23. Chen YF, Boland CR, Kraus ER, Goldstein IJ. The lectin Griffonia simplicifolia IA4 (GSIA4) specifically recognizes terminal alphalinked Nacetylgalactosaminyl groups and is cytotoxic to the human colon cancer cell lines LSII74 and SW1116. Int J Cancer 1994; 57: 5617. [ Links ]
24. Knibbs RN, MacCallum DK, Lillie JH, Goldstein IJ. Wildtype and cultured Ehrlich ascites tumor cells differ in tumorigenicity, lectin binding pattern and binding to basement membranes. Glycobiology 1994; 4: 41928. [ Links ]
25. Ganguly C, Das S. Plant lectins as inhibitors of tumor growth and modulators of host immune response. Chemotherapy 1994; 40: 2728. [ Links ]
26. Pryme IF, Pusztai AJ, Bardocz S. A diet containing the lectin phytohaemagglutinin (PHA) slows the proliferation of Krebs II cell tumours in mice. Cancer Lett 1994; 76: 1337. [ Links ]
27. Mukhopadhyay P, Gupta JD, Sanyal U, Das S. Influence of dietary restriction and soybean supplementation on the growth of a murine lymphoma and host immune function. Cancer Lett 1994; 78: 1517. [ Links ]
28. Wang HX, Ng TB, Ooi VE, Liu WK, Chang ST. Actions of lectins from the mushroom Tricholoma mongolicum on macrophages, splenocytes and lifespan in sarcomabearing mice. Anticancer Res 1997; 17: 41924. [ Links ]
29. Kiss R, Camby I, Duckworth D, DeDecker R, Salmon I et al. In vitro influence of Phaseolus vulgaris, Griffonia simplicifolia, Concanavalin A, wheat germ and peanut agglutinins on HCT15, LoVo and SW 837 human colorrectal cancer cell growth. Gut 1997; 40: 25361. [ Links ]
30. Garbor F, Stangl M, Wirth M. Lectinmediated bioadhesion: binding characteristics of plant lectins on the enterocytelike cell lines Caco2, HT29 and HCT8. J Control Release 1998; 55: 13142. [ Links ]
31. Parslew R, Jones KT, Rhodes JM, Sharpe GR. The antiproliferative effect of lectin from the edible mushroom (Agarics bisporus) on human keratinocytes: preliminary studies on its use in psoriasis. Br J Dermatol 1999; 140: 5660. [ Links ]
32. Litynska A, Przybylo M, Pochec E, HojaLukowicz D, Ciolczyk D, Laidler P, Gil D. Comparison of the lectinbinding pattern in different human melanoma cell lines. Melanoma Res 2001; 11: 20512. [ Links ]
33. Maier G, Fiebig HH. Absence of tumor growth stimulation in a panel of 16 human tumor cell lines by mistletoe extracts in vitro. AntiCancer Drugs 2002; 13: 3739 [ Links ]
34. Valantier U, Fabian S, Schumancher U, Leathern AJ. The influence of dietary lectins on the cell proliferation of human breast cancer cell lines in vitro. Anticancer Res 2003; 23(2B): 1197206 [ Links ]
35. Lyu SY, Park SM, Choung BY, Park WB. Comparative study of Korean (Viscum album var. coloratum) and European mistletoes (Viscum album). Arch Pharm Res 2000; 23: 5928. [ Links ]
36. Schumacher U, Stamouli A, Adam E, Peddie M, Pfuller U. Biochemical, histochemical and cell biological investigations on the actions of mistletoe I, II and III with human breast cancer cell lines. Glycoconj J 1995; 12: 2507. [ Links ]
37. Umekawa H, Kondoh K, Furuichi Y, Takahashi T, Yoshida S. DNA polymerase alpha, beta and gamma activities in human lymphocytes stimulated by Toramame (Phaseolus vulgaris) lectin. Biochem Int 1992; 28: 106370. [ Links ]
38. Leist M, Wendel A. A novel mechanism of murine hepatocyte death inducible by concanavalin A. J Hepatol 1996; 25: 94859. [ Links ]
39. Rocha N, SalazarOlivo LA, Abdullaev F, González de Mejía E. The hemagglutinating and cytotoxic activities of extracts from Mexican legumes on human tumor cells. In: Whitaker JR, Haard NF, Shoemaker CF, Singh RP (eds.). The proceeding of the 3rd. International Conference Food for Health in the Pacific Rim. Connecticut: Food & Nutrition Press; 1999, p. 4206. [ Links ]
40. Jordison M, ElHariry I, Calnan D, Calam J, Pignatelli M. Vicia faba agglutinin, the lectin present in broad beans, stimulates differentiation of undifferentiated colon cancer cells. Gut 1999; 44: 70914. [ Links ]
41. Kent D, Sheridan CM, Tomkinson HA, White SJ, Hiscott P, Yu L, Grierson I. Edible mushroom (Agaricus bisporus) lectin inhibits human retinal pigment epithelial cell proliferation in vitro. Wound repair regen 2003; 11(4): 28591. [ Links ]
42. Yu LG, Fernig DG, White MRH, Spiller DG, Appleton P, Evans RC, Grierson I, Smith JA, Davies H, Gerasimenko OV, Petersen OH, Milton JD, Rhodes JM. Edible mushroom (Agaricus bisporus) lectin, which reversibly inhibits epithelial cell proliferation, blocks nuclear localization sequencedependent nuclear protein import. J Biol Chem 1999; 274: 48909. [ Links ]
43. Bantel H, Engels IH, Voelter W, SchulzeOsthoff K, Wesselborg S. Mistletoes lectin activates caspase8/FLICE independently of death receptor signaling and enhances anticancer druginduced apoptosis. Cancer Res 1999; 59: 208390. [ Links ]
44. Pryme IF, Pustai A, Bardocz S, Ewen SW. A combination of dietary protein depletion and PHAinduced growth gut reduce the mass of murine nonHodkin lymphoma. Cancer Lett 1999; 139: 14552. [ Links ]
45. Pryme IF, Bardocz S, Pusztai A, et al. The growth of an established murine nonHodkin lymphoma tumour is limited by switching to a phytohaemagglutinincontaining diet. Cancer Lett 1999; 146: 8791. [ Links ]
46. Pryme IF, Bardocz S, Pusztai A, et al. Dietary mistletoe lectin supplementation and reduced growth of a murine nonHodkin lymphoma. Histol Histopathol 2002; 17: 26171. [ Links ]
47. Lyu SY, Park WB, Choi KH, Kim WH. Involvement of caspase3 in apoptosis induced by Viscum album var. coloratum agglutinin in HL60 cells. Biosci Biotechnol Biochem 2001: 65: 53441. [ Links ]
48. Park, WB, Lyu SY, Kim JH, Choi SH, Chung HK, Ann SH, Hong SY, Yoon TJ, Choi MJ. Inhibition of tumor growth and metastasis by Korean mistletoe lectin is associated with apoptosis and antiangiogenesis. Cancer Biother Radiopharm 2001; 16: 43947. [ Links ]
49. Lyu SY, Choi SH, Park WB. Korean mistletoe lectininduced apoptosis in hepatocarcinoma cells is associated with inhibition of telomerase via mitochondrial controlled pathway independent of p53. Arch Pharm Res 2002; 25(1): 18. [ Links ]
50. Yu LG, Andrews N, Weldon M, Gerasimenko OV, Campbell BJ, Singh R, Grierson I, Petersen OH, Rhodes JM. An Nterminal truncated form of Orp 150 is a cytoplasmic ligand for the antiproliferative mushroom Agaricus bisporus lectin and is required for nuclear localization sequencedependent nuclear protein import. J Biol Chem 2002; 227: 2453845. [ Links ]
51. Sasaki T, Yamazaki K, Yamori T, Endo T. Inhibition of proliferation and induction of differentiation of glioma cells with Datura stramonium agglutinin. Br J Cancer 2002; 87: 91823. [ Links ]
52. Ramnath V, Kuttan G, Kuttan R. Antitumor effect of abrin on transplanted tumours in mice. Indian J Physiol Pharmacol 2002; 46(1): 6977. [ Links ]
53. Zhao C, Sun H, Tong X, Qi Y. An antitumour lectin from the edible mushroom Agrocybe aegerita. Biochem J 2003; 374: 3217. [ Links ]
54. Yoon TJ, Yoo YC, Kang TB, Song SK, Lee KB, Her E, Song KS, Kim JB. Antitumor activity of the Korean mistletoe lectin is attributed to activation of macrophages and NK cells. Arch Pharm Res 2003; 26: 8617. [ Links ]
55. Pryme IF, Bardocz S, Pusztai A, Ewen SW, Pfuller U. A mistletoe lectin (MLl)containing diet reduces the viability of a murine nonHodgkin lymphoma tumor. Cancer Detect Prevent 2004; 28: 526.
56. Olsnes S, Kozlov JV. Ricin. Toxicon 2001; 39(11): 17238.
57. PLANT LECTINS. Disponible en URL: http://www.ansci.cornell.edu/plants/toxicagents/lectins/lectins.html#lecttissu
58. Vasconcelos IM, Oliveira JT. Antinutritional properties of plant lectins. Toxicon 2004; 44(4): 385403.
59. Franz DR, Jaax NK. Ricin toxin. In: Textbook of military medicine: medical aspects of chemical and biological warfare. Washington, DC: TMM Publications, 1997: 63142.
60. Stein GM, Berg PA. Characterisation of immunological reactivity of patients with adverse effects during therapy with an aqueous mistletoe extract. Eur J Med Res 1999; 4(5): 16977.
61. Huber R, Barth H, SchmittGraff A, Klein R. Hypereosinophilia induced by highdose intratumoral and peritumoral mistletoe application to a patient with pancreatic carcinoma. J Altern Complement Med 2000; 6(4): 30510.
62. Huber R, Klein R, Berg PA, Ludtke R, Werner M. Effects of a letin and a viscotoxinrich mistletoe preparation on clinical and hematologic parameters: a placebocontrolled evaluation in healthy subjects. J Altern Complement Med 2002; 8(6): 85766.
63. Hutt N, Kopferschmittkubler MC, Cabalio J, Purohit A, Alt M, Pauli G. Anaphylactic reactions after therapeutic injection of mistletoe (Viscum album L.). Allergol Immunopathol 2001; 29(5): 2013.
64. Stauder H, Kreuser ED. Mistletoe extracts standardised in terms of mistletoe lectins (ML I) in oncology: current state of clinical research. Onkologie 2002; 25(4): 37480.
65. Mansky PJ. Mistletoe and cancer: controversies and perspectives. Semin Oncol 2002; 29(6): 58994.
66. The Castor Bean: a plant named after a tick. Noteworthy plants for March 1999. Disponible en: URL: http://waynesword.palomar.edu/plmar99.htm#medicine.
67. Baluna R, Sausville EA, Stone MJ, SteterStevenson MA, Uhr JW, Vitetta ES. Decrease in levels of serum fibronectin predict the severity of vascular leak syndrome in patients treated with ricin A chaincontaining immunotoxins. Clin Cancer Res 1996; 2(10): 170512.
68. Kreitman RJ. Immunotoxins in cancer therapy. Curr Opin Immunol 1999; 11(5): 5708.
69. Schindler J, Sausville E, Messmann R, Uhr JW, Vitetta ES. The toxicity of deglycosylated ricin a chaincontaining immunotoxins in patients with nonHodgkin's lymphoma is exacerbated by prior radiotherapy: a retrospective analysis of patients in five clinical trials. Clin Cancer Res 2001; 7(2): 2558.
70. Dinndorf P, Krailo M, LiuMares W, Frierdich S, Sondel P, Reaman G. Phase I trial of antiB4blocked ricin in pediatric patients with leukemia and lymphoma. J Immunother 2001; 24(6): 5116.
71. Schnell R, Borchmann P, Staak JO, Schindler J, Ghetie V, Vitetta ES, Engert A. Clinical evaluation of ricin Achain immunotoxins in patients with Hodgkin's lymphoma. Ann Oncol 2003; 14(5): 72936.
72. Nagy M. Ricina plant toxin potential therapeutic use. Ceska Slov Farm 2004; 53(3): 1314.
73. Huang X, Bennett M, Thorpe PE. Antitumor effects and lack of side effects in mice of an immunotoxin directed against human and mouse prostatespecific membrane antigen. Prostate 2004; 61(1): 111.
74. Lazaris ACh, Chatzigianni EB, Paraskevakoc H, TseleniBalafouta S, Davaris PS. Lectin histochemistry as a predictor of dysplasia grade in colorectal adenomas. Path Oncol Res 2000; 6(4): 26571.
75. Sherwani AF, Mohmood S, Khan F, Khan RH, Azfer M A. Characterization of lectins and their specificity in carcinomas an appraisal. Ind. J Clin Biochem 2003; 18: 16980.
76. Choi SH, Lyu SY, Park WB. Mistletoe lectin induces apoptosis and telomerase inhibition in human A253 cancer cells through dephosphorylation of Akt. Arch Pharm Res 2004; 27: 6876.
77. Rebbaa A, Chou PM, Vucic I, Mirkin BL, Tomita T, Bremer EG. Expression of bisecting GlcNAc in pediatric brain tumors and its association with tumor cell response to vinblastine. Clin Cancer Res 1999; 5: 36618.
78. Siegle I, Fritz P, McClellan M, Gutzeit S, Murdter TE. Combined cytotoxic action of Viscum album agglutinin1 and anticancer agents against human A549 lung cancer cells. Anticancer Res 2001; 21(4A): 268791.
79. D'Costa SS, Hurwitz JL. Phytohemagglutinin inhibits lymphoid tumor growth in vitro and in vivo. Leuk Lymp 2003; 44: 178591.
80. Abdullaev FI. Plantderived agents against cancer. In: Gupta SK (ed.). Pharmacology and therapeutics in the new millennium. New Delhi, India. Narosa Publishing House 2001; 30: 34554.