INTRODUCCIÓN
El frijol (Phaseolus vulgaris L.), es la especie del género Phaseolus más cultivada en los trópicos y subtrópicos de América Latina, el Caribe y África, principalmente por ser fuente de proteínas, vitaminas y minerales, que lo ubican entre los cinco cultivos con mayor superficie dedicada a la agricultura en los países latinoamericanos (Romero, 2016; Colás et al. 2018).
En Cuba, el Ministerio de la Agricultura ha priorizado la siembra de frijol debido a la alta demanda de consumo y por sus propiedades nutritivas (Pérez et al., 2006). Sin embargo, la producción nacional no satisface las demandas de la población, pues existe necesidad de importar anualmente 14 400 toneladas de éste grano (Hernández, 2016; ONEI, 2018).
En este contexto, uno de los principales retos de la agricultura actual es la producción de alimentos de forma ecológica y asequibles para la población (Marín et al., 2013). Entre las alternativas para el manejo sustentable en la nutrición de cultivos se encuentran los bioproductos de origen biológico con efectos benéficos como biofertilizantes y bioestimulantes que permiten el desarrollo de una agricultura rentable y ecológica. Entre los biofertilizantes se encuentran los hongos micorrícicos arbusculares (HMA) y los rizobios, que se asocian de manera simbiótica con la planta y generan un intercambio positivo de nutrimentos, en el cual la planta suministra carbohidratos a los simbiontes, y éstos a su vez, favorecen la absorción y traslocación de agua y nutrimentos; entre ellos, fósforo, cinc y cobre, la fijación biológica del nitrógeno, protección contra patógenos de las raíces, tolerancia de las plantas a diversos estreses bióticos y abióticos (Angulo et al., 2018; Wilches-Ortiz et al., 2019).
Otro de los productos biológicos que se usan en la agricultura son las Spiruvinas que actúan como bioestimulantes del crecimiento vegetal, que se obtienen a partir de la biomasa húmeda de Spirulinas y vinaza, con compuestos activos que intervienen sobre la fisiología de las plantas y que promueven la floración y el desarrollo de los frutos (Tamayo-Aguilar et al., 2019).
Por lo anterior, el objetivo de este trabajo fue evaluar el efecto de bioproductos (hongos micorrícicos arbusculares y Spiruvinas) en el crecimiento y rendimiento del cultivo de Phaseolus vulgaris L. var. Delicia 364.
Materiales y Métodos
La investigación se desarrolló en la unidad experimental de la Universidad de Guantánamo, ubicada a 20° 17’ 44.515” N y 75° 21’ 17.218” O, municipio El Salvador, provincia Guantánamo, Cuba. Se usaron macetas de plástico con volumen de 44 L de capacidad, durante el periodo de marzo a junio de 2017. Se utilizó suelo de tipo Pardo Sialítico Mullido Carbonatado (Hernández et al., 2015) equivalente a los Cambisols de la World Reference Base (IUSS Working Group WRB, 2015), y estiércol vacuno como fuente de materia orgánica en una proporción suelo - materia orgánica de 3:1.
Se determinaron las propiedades químicas del suelo (Cuadro 1), a partir de las Normas Cubanas (NC) establecidas: pH, por el método potenciométrico (ONN-NC-ISO 10390, 1999); materia orgánica (MO), por el método de Walkley-Black (ONN-NC-51, 1999); determinación de P, por el método de Machiguín (ONN-NC-52, 1999); cationes intercambiables, con acetato de amonio 1 M y pH 7 en relación suelo:solución de 1:5 (ONN-NC-65, 2000).
pH |
P2O5 |
Na+ |
K+ |
Ca2+ |
Mg2+ |
|
KCI |
% |
mg kg-1 |
-------------- mol kg-1 -------------- |
|||
7.03 |
3.05 |
22.16 |
0.56 |
0.61 |
40.0 |
3.20 |
MO = materia orgánica
El suelo presentó pH ligeramente alcalino, valores medio de MO y de fósforo disponible. En relación con los cationes intercambiables, el Ca+2 mostró valores altos, mientras que el Mg+2 y el K+ y Na+ presentaron intervalos permisibles para el cultivo y la actividad microbiana, de acuerdo con Rivera et al. (2015).
Tratamientos y establecimiento del cultivo
Se empleó un diseño completamente al azar con ocho tratamientos y tres repeticiones. Se evaluaron las cepas de HMA y el bioproducto foliar Spiruvinas. Se sembraron 10 semillas de frijol inoculadas con rizobios (Azofert(, Mayabeque, Cuba) y HMA por maceta, para un total de 720 plantas en 72 macetas. Se estudiaron las cepas de HMA (Rhizophagus irregularis, Glomus cubense y Funneliformis mosseae) y Spiruvinas con dosis de 2 L ha-1 compuesta por siete aminoácidos, 11 tipos de vitaminas y oligopéptidos; además, un tratamiento testigo con aplicación de Azofert como lo indican las normas técnicas del cultivo de frijol en Cuba.
Los tratamientos fueron: (T1) Azofert sin HMA (testigo); (T2) Azofert sin HMA + 2 L ha-1 de Spiruvinas; (T3) Azofert + Rhizophagus irregularis; (T4) Azofert + Glomus cubense; (T5) Azofert + Funneliformis mosseae; (T6) Azofert + Rhizophagus irregularis + 2 L ha-1 de Spiruvinas; (T7) Azofert + Glomus cubense + 2 L ha-1 de Spiruvinas; (T8) Azofert + Funneliformis mosseae + 2 L ha-1 de Spiruvinas.
Las cepas de HMA utilizadas se obtuvieron de la colección de hongos micorrícicos arbusculares del Departamento de Biofertilizantes y Nutrición de las Plantas, del Instituto Nacional de Ciencias Agrícolas (INCA), el cual es base del producto certificado EcoMic( (Mayabeque, Cuba), con 40 esporas por gramo de inoculante y 50% de colonización radical, no tóxico y libre de patógenos. También se utilizó el inoculante Azofert con concentración de 1 ( 107 - 1 ( 108 UFC mL-1 que contiene especies nativas de rizobios, que inducen en las bacterias altas concentraciones de factores de nodulación lo que favorece la fijación biológica de nitrógeno. Azofert pertenece a la colección de bioproductos del Departamento de Fisiología y Bioquímica Vegetal del INCA, ubicado en Mayabeque, Cuba.
La inoculación de biofertilizantes (rizobio y HMA), y el uso combinado de cepas de HMA con el bioestimulante foliar (Spiruvina) se describen a continuación: los biofertilizantes se aplicaron previo a la siembra, por el método de recubrimiento de las semillas (Fernández et al., 2000). Se utilizó la dosis de 0.045 kg ha-1 de EcoMic(, equivalente al 10% del peso de las semillas. Primero, se embebieron las semillas con el inóculo bacteriano (Azofert) durante tres min; después, se procedió al recubrimiento completo de las semillas con las cepas de HMA, se secaron a la sombra durante 5 min, y posteriormente se llevó a cabo la siembra. Cabe mencionar que el bioestimulante Spiruvinas, es originado de la biomasa húmeda de Spirulinas y vinaza de origen natural que a través de los compuestos bioactivos que la integran estimulan la asimilación de los macro - elementos aportados al suelo (vía radical), así como la capacidad natural de las plantas para producir sus propias hormonas, enzimas y otros productos basados en los aminoácidos, se aplicó de manera foliar a los 15 y 30 días después de la siembra del cultivo y en el momento de la floración a dosis de 2 L ha-1 con un spray modelo Batlle 730061UNID (Barcelona, España) de 400 mL que garantizó la uniformidad de la aplicación en todas las plantas.
Variables evaluadas
Se seleccionaron 15 plantas por tratamiento, en las que se midieron variables de crecimiento: altura de la planta y diámetro de tallo en (cm) a los 15, 30 y 45 días después de la siembra (dds). Los componentes del rendimiento fueron: número de vainas, número de granos por vainas, peso de 100 granos (g) y rendimiento (Mg ha-1), los cuales se determinaron al momento de la cosecha. Además, se evaluaron variables de funcionamiento micorrícico: colonización micorrícica y densidad visual expresadas en %. De las raíces muestreadas, se pesaron 200 mg que se tiñeron por el método de Phillips and Hayman (1970). El porcentaje de colonización micorrícica se cuantificó con el método de los interceptos (Giovannetti y Mosse,1980). La densidad visual se determinó mediante la metodología descrita por Trouvelot et al. (1986).
Resultados y Discusión
Altura de planta
La altura de las plantas se incrementó con la inoculación de las cepas de HMA aplicadas vía recubrimiento en las semillas, asimismo, la altura aumentó con los tratamientos combinados de HMA y Spiruvinas a los 30 y 45 días de desarrollo (P ≤ 0.05), donde resalta la combinación con la cepa Rhizophagus irregularis (Cuadro 2). Esta respuesta puede atribuirse al efecto de los bioproductos, los cuales incrementan las funciones metabólicas relacionadas con el crecimiento y desarrollo de las plantas. Este efecto positivo puede deberse a que los HMA y los bioestimulantes con compuestos bioactivos promueven los mecanismos de absorción y traslocación de nutrimentos en las plantas (Abdel-Fattah et al., 2016; Martínez-Sánchez et al., 2017).
Tratamiento |
Altura de planta |
||
Días | |||
15 |
30 |
45 |
|
-------- cm -------- |
|||
Azofert sin HMA (testigo) |
4.16 f† |
6.11 g |
8.76 e |
Azofert sin HMA + 2 L ha-1 de Spiruvinas |
5.13 de |
7.28 e |
9.97 d |
Azofert + Rhizophagus irregularis |
5.51 cd |
7.70 d |
10.87 c |
Azofert + Glomus cubense |
4.91 e |
7.06 ef |
10.18 d |
Azofert + Funneliformis mosseae |
5.10 de |
6.80 f |
9.93 d |
Azofert + Rhizophagus irregularis + 2 L ha-1 de Spiruvinas |
6.41 a |
9.67 a |
14.91 a |
Azofert + Glomus cubense + 2 L ha-1 de Spiruvinas |
6.03 ab |
9.03 b |
14.10 b |
Azofert + Funneliformis mosseae + 2 L ha-1 de Spiruvinas |
5.75 bc |
8.39 c |
14.00 b |
0.15* |
0.12* |
0.09* |
† Letras distintas en la misma columna indican diferencias significativas según prueba de rangos múltiples de Tukey (P ≤ 0.05). HMA= hongos micorrícicos arbusculares. Es χ = error estándar de la media.
Relacionado a lo anterior, Colás-Sánchez et al. (2018) reportaron un efecto similar a los encontrados en el presente estudio, ya que con la inoculación de hongos micorrícicos arbusculares y rizobios sobre el follaje de frijol a los 21 dds, tuvieron incrementos en altura de las plantas superiores al 50% respecto al testigo. Asimismo, Pérez-Peralta et al. (2019) indican que la inoculación previa de rizobios en semillas de frijol incrementan la biomasa aérea de las plantas. Por su parte, Rivera et al. (2015) obtuvieron un aumento significativo en el crecimiento de frijol con inoculaciones de HMA +Azofert.
Diámetro de tallo
En el diámetro del tallo (Cuadro 3), se observaron diferencias (P ≤ 0.05) en los tratamientos combinados (HMA con Spiruvinas). Hubo mayor efectividad con la cepa Rhizophagus irregularis a los 15, 30 y 45 dds. Se infiere que los resultados positivos en los tratamientos combinados pueden deberse al efecto de los bioproductos en procesos fisiológicos de las plantas y a una mayor absorción de nutrimentos por las raíces de las plantas (Tamayo-Aguilar et al., 2019).
Tratamiento |
Altura de planta |
||
Días | |||
15 |
30 |
45 |
|
- - - - - - - - cm - - - - - - - - |
|||
Azofert sin HMA (testigo) |
0.31 e † |
0.95 g |
2.65 g |
Azofert sin HMA + 2 L ha-1 de Spiruvinas |
1.00 d |
1.14 ef |
2.86 f |
Azofert + Rhizophagus irregularis |
1.00 d |
1.52 d |
3.27 d |
Azofert + Glomus cubense |
1.00 d |
1.20 e |
3.11 e |
Azofert + Funneliformis mosseae |
0.85 d |
1.11 f |
3.08 e |
Azofert + Rhizophagus irregularis + 2 L ha-1 de Spiruvinas |
2.00 a |
2.64 a |
4.78 a |
Azofert + Glomus cubense + 2 L ha-1 de Spiruvinas |
1.71 b |
2.52 b |
4.48 b |
Azofert + Funneliformis mosseae + 2 L ha-1 de Spiruvinas |
1.44 c |
2.33 c |
4.17 c |
0.07* |
0.02* |
0.04* |
† Letras distintas en la misma columna indican diferencias significativas según prueba de rangos múltiples de Tukey (P ≤ 0.05). HMA= hongos micorrícicos arbusculares. Es χ = error estándar de la media.
Los resultados del presente estudio coinciden con los de Aguirre-Medina et al. (2019), quienes reportaron diferencias significativas en el diámetro del tallo de Tabebuia donnell-smithii con el uso combinado de cepas de HMA y estiércol bovino en condiciones de vivero. Sin embargo, no encontraron diferencias estadísticas por efecto de hongos micorrízicos sin estiércol bovino en los primeros estadios de las plantas. Por su parte, Mujica et al. (2017) al evaluar el efecto de HMA y bacterias promotoras del crecimiento vegetal en el cultivo de Arachis hypogaea, reportaron que el diámetro del tallo se incrementó con el uso combinado de los biofertilizantes, en comparación con el testigo.
Componentes del rendimiento
Se observaron diferencias (P ≤ 0.05) en los componentes del rendimiento: número de vainas, granos por vainas y peso de 100 granos con las combinaciones de los bioproductos (Cuadro 4). Estos resultados coinciden con los reportados por Calero et al. (2019) quienes también encontraron diferencias en los componentes del rendimiento del cultivo de frijol con la aplicación combinada de microorganismos eficientes y Rhizobium.
Tratamiento |
Vainas por planta |
Granos por vaina |
Peso de 100 granos |
g |
|||
Azofert sin HMA (testigo) |
23.01 g† |
3.33 f |
11.26 f |
Azofert sin HMA + 2 L ha-1 de Spiruvinas |
28.04 f |
4.33 e |
13.62 e |
Azofert + Rhizophagus irregularis |
32.05 d |
5.33 d |
19.96 c |
Azofert + Glomus cubense |
30.33 de |
5.53 d |
17.59 d |
Azofert + Funneliformis mosseae |
30.0 de |
5.04 d |
19.21 c |
Azofert + Rhizophagus irregularis + 2 L ha-1 de Spiruvinas |
51.33 a |
8.22 a |
27.23 a |
Azofert + Glomus cubense + 2 L ha-1 de Spiruvinas |
44.5 b |
6.99 b |
26.48 ab |
Azofert + Funneliformis mosseae + 2 L ha-1 de Spiruvinas |
41.0 c |
6.28 c |
25.77 b |
0.97* |
0.21* |
0.44* |
† Letras distintas en la misma columna indican diferencias significativas según prueba de rangos múltiples de Tukey (P ≤ 0.05). HMA= hongos micorrícicos arbusculares. Es χ = error estándar de la media.
En adición a lo anterior, Tamayo-Aguilar et al. (2019) reportaron que el uso combinado de bioproductos en el cultivo de Vigna unguiculata (L) se incrementaron respecto a los tratamientos que se aplicaron de forma individual. Colás-Sánchez et al. (2018), al evaluar el efecto de la biofertilización con la inoculación previa de hongos micorrícicos arbusculares y cepas de rizobios en el cultivo de frijol encontraron que los valores los componentes del rendimiento aumentaron, en comparación al testigo.
Rendimiento de frijol
Hubo diferencias (P ≤ 0.05) en el rendimiento (Cuadro 5). Se observó que las combinaciones de los bioproductos HMA + Spiruvinas incrementaron el rendimiento de frijol. El mayor rendimiento fue 2.11 Mg ha-1, el cual se obtuvo con R. irregularis combinado con el bioproducto foliar Spiruvina. Esta respuesta puede atribuirse a la especificidad de esta cepa con el tipo de suelo utilizado que favoreció la efectividad de la inoculación micorrícica. Cabe resaltar que el rendimiento mencionado, que se obtuvo con la combinación Azofert + R. irregularis + Spiruvinas, representa 37.9% más que el rendimiento nacional. Estos resultados muestran que R. irregularis fue la cepa de HMA más idónea para incrementar el crecimiento y el rendimiento en las condiciones de estudio.
Tratamiento |
Rendimiento |
Mg ha-1 |
|
Azofert sin HMA (testigo) |
0.89 f† |
Azofert sin HMA + 2 L ha-1 de Spiruvinas |
0.98 e |
Azofert + Rhizophagus irregularis |
1.12 d |
Azofert + Glomus cubense |
1.09 d |
Azofert + Funneliformis mosseae |
1.08 d |
Azofert + Rhizophagus irregularis + 2 L ha-1 de Spiruvinas |
2.11 a |
Azofert + Glomus cubense + 2 L ha-1 de Spiruvinas |
1.57 b |
Azofert + Funneliformis mosseae + 2 L ha-1 de Spiruvinas |
1.45 c |
0.01* |
† Letras distintas en la misma columna indican diferencias significativas según prueba de rangos múltiples de Tukey (P ≤ 0.05). HMA= hongos micorrícicos arbusculares. Es χ = error estándar de la media.
Con los resultados obtenidos se infiere que se presenta cierta compatibilidad funcional entre la planta, sustrato, bioestimulante y el HMA lo que favoreció el crecimiento y rendimiento. En este sentido, Tamayo y Bernal (2018), reportaron aumento en el rendimiento del frijol con las inoculaciones combinadas de hongos micorrícicos y de rizobios, asimismo, concluyen que las acciones combinadas de los bioproductos tienen un efecto sinérgico en el crecimiento vegetal. Los resultados del presente estudio coinciden con lo indicado por Llanes et al. (2019) con relación al uso de bioproductos y sus beneficios en la agricultura cubana, ya que la mayoría de los productores utilizan los bioestimulantes y los biofertilizantes conjuntamente con el estiércol vacuno para la nutrición de los cultivos.
Funcionamiento fúngico
El funcionamiento micorrícico en el cultivo de frijol se observó en la colonización micorrícica y densidad visual (Cuadro 6). La actividad micorrícica aumentó en los tratamientos combinados con HMA y Spiruvina, con diferencias (P ≤ 0.05) entre ellos. La cepa R. irregularis nuevamente fue más eficiente que las demás cepas comerciales. Estos resultados podrían deberse a la respuesta de las plantas para asimilar eficientemente los bioproductos combinados relacionada el proceso de la simbiosis micorrícica (Tamayo-Aguilar et al., 2019). Cabe señalar La presencia de colonización y densidad visual encontrado en los tratamientos sin HMA, puede ser la expresión de algunas especies de HMA residentes en el suelo que se utilizó para el llenado de las macetas; sin embargo, su efecto micorrícico fue menor respecto a las cepas comerciales estudiadas.
Tratamiento |
Colonización micorrícica |
Densidad visual |
- - - - - - % - - - - - - |
||
Azofert sin HMA (testigo) |
45.56 e† |
2.52 e |
Azofert sin HMA + 2 L ha-1 de Spiruvinas |
48.91 d |
2.72 e |
Azofert + Rhizophagus irregularis |
53.02 c |
3.93 bc |
Azofert + Glomus cubense |
52.85 c |
3.76 c |
Azofert + Funneliformis mosseae |
50.41 d |
3.24 d |
Azofert + Rhizophagus irregularis + 2 L ha-1 de Spiruvinas |
62.29 a |
5.17 a |
Azofert + Glomus cubense + 2 L ha-1 de Spiruvinas |
58.51 b |
4.16 b |
Azofert + Funneliformis mosseae + 2 L ha-1 de Spiruvinas |
58.32 b |
3.86 bc |
0.71* |
0.11* |
† Letras distintas en la misma columna indican diferencias significativas según prueba de rangos múltiples de Tukey (P ≤ 0.05). HMA= hongos micorrícicos arbusculares. Es χ = error estándar de la media.
De acuerdo con Williams et al. (2017), el establecimiento de la simbiosis micorrícica depende de la interacción de factores bióticos y abióticos y se deben considerar en el manejo agronómico de cultivos, que implique el uso combinado de biofertilizantes y bioestimulantes con la finalidad de fortalecer los beneficios de su interacción con las plantas. Por su parte, Vital-Vilchis et al. (2018) encontraron que la simbiosis micorrícica a los 20 dds en el cultivo de girasol en condiciones de macetas, no se estableció la colonización micorrícica y no hubo efecto en el crecimiento de las plantas; sin embargo, a partir de los 30 dds se favoreció el crecimiento de las plantas, debido al efecto de la interacción simbiótica entre el hongo y la planta.
Aunado a lo anterior, Chiquito-Contreras et al. (2018) al evaluar consorcios de HMA coinoculados con la bacteria marina Stenotrophomonas rhizophila en plantas de albahaca encontraron diferencias (P ≤ 0.05) en el aumento de porcentaje de colonización micorrícica y el número de esporas por g de suelo (35 y 66 %, respectivamente), en comparación al tratamiento de plantas inoculadas solo con el consorcio de HMA.
Conclusiones
La aplicación de bioproductos (hongos micorrícicos arbusculares y Spiruvina) incrementaron el crecimiento y el rendimiento del cultivo de frijol var. Delicia 364. Asimismo, con la combinación Azofert + Rhizophagus irregularis + Spiruvinas se obtuvo el mayor rendimiento, 2.11 Mg ha-1, lo que representa 37.9% más que el promedio nacional.