Tratamientos y diseño experimental

Se usó un diseño experimental completamente al azar con arreglo factorial 2 × 2, el primer factor lo constituyeron dos fertilizantes orgánicos líquidos, lixiviado de vermicomposta (LV) y el fertilizante comercial Pez Terra^® (PT), los cuales se diluyeron en agua en una relación 1:200, y el segundo factor consistió en los biofertilizantes B. brongniartii y P. lilacinum. Estos se aplicaron en plántulas que se cultivaron en el sustrato peat moss/composta; también, se aplicó la solución nutritiva de ^{Steiner (1984)} al 25% con peat moss como sustrato (testigo), lo que generó cinco tratamientos, cada uno con 10 repeticiones. La unidad experimental fueron 20 plántulas.

Establecimiento y manejo del experimento

Se sembró semilla de chile habanero ‘Chichen Itzá’ (Seminis^®) en charolas de poliestireno de 200 cavidades, con un volumen de 30 mL por cavidad, que se llenaron con el sustrato peat moss (Sunshine mezcla 3^®) con la mezcla peat moss + composta de bagazo de caña (Terrasana^®, Nayarit, México) en proporción 1:1 (v/v). La composición nutrimental de la composta se muestra en Cuadro 1.

Las charolas se regaron con agua potable hasta la germinación de las semillas (10 días después de la siembra). Después, el riego fue con la solución nutritiva de Steiner al 25%, o lixiviado de vermicomposta, o Pez Terra^®, según el tratamiento. Se aplicó uno a dos riegos al día en función del crecimiento de las plántulas, cada uno de 600 mL/charola. La solución de Steiner al 25% contuvo (meq L^-1): 1 Mg²⁺, 2.25 Ca²⁺, 1.75 K⁺, 3 NO₃ ^-, 0.25 H₂PO₄ ^- y 1.75 SO₄ ^2-, con conductividad eléctrica (CE) de 0.60 dS m^-1 y pH de 5.8; con el producto comercial Ultrasol micro^® se suministró (mg L^-1): 3 de Fe-EDTA, 0.16 de B, 1.48 de Mn-EDTA, 0.12 de Cu-EDTA, 0.08 de Mo y 0.24 de Zn-EDTA. Las diluciones de lixiviado de vermicomposta y Pez Terra^® presentaron CE de 0.48 y 0.74 dS m^-1, y pH de 6.2 y 5.5, respectivamente. El lixiviado de vermicomposta lo proporcionaron productores locales, y este se elaboró con desechos de origen vegetal (hojarasca, frutas y verduras) y animal (cáscaras de huevo y estiércol bovino). La composición nutrimental de los fertilizantes orgánicos líquidos se muestra en el Cuadro 1.

Los biofertilizantes se aplicaron una vez por semana, hasta que las plántulas alcanzaron 13 cm de altura para trasplante (45 días después de la siembra), en cada aplicación se usaron 200 mL de suspensión de esporas por charola. Para esto, se preparó una dosis de 2 g de producto sólido de esporas de B. brongniartii o P. lilacinum L^-1 de agua (1×10⁶ esporas mL^-1). Ambos biofertilizantes se obtuvieron de la colección de hongos entomopatógenos de la Facultad de Ciencias Biológicas y Agropecuarias de la Universidad de Colima, estos se aislaron e identificaron molecularmente por ^{Chan-Cupul et al. (2018)}. Para la producción de esporas se colocaron granos de arroz (200 g) en bolsas de polipropileno (2 kg), las cuales se esterilizaron en autoclave a 120 °C por 30 min. Después, se inocularon con 1 mL de suspensión de esporas (1×10⁷ esporas mL^-1) de B. brongniartii o P. lilacinum, e incubaron durante 21 días a 25 °C, 80% humedad relativa y 12 h luz/oscuridad. Posteriormente, estas se lavaron con agua purificada y Tween 80 al 0.05%. El líquido que se consiguió de las bolsas se centrifugó (36 000 rpm) para obtener las esporas, esto de acuerdo con la metodología de ^{Negrete-González et al. (2018)}.

Variables de crecimiento de plántula, lecturas SPAD y concentración nutrimental

Altura de plántula (AP, cm), se midió con una regla, desde la base del sustrato hasta la yema apical; diámetro de tallo (DT, mm), se obtuvo 2 cm arriba del nivel del sustrato con un vernier digital Trupper^® modelo CALDI-6MP (Estado de México, México); número de hojas (NH, unidades), se contabilizó el número de hojas por plántula; área foliar (AF, cm^-2), las hojas por plántula se midieron en el integrador de área foliar LI-COR, Li-3100^® (Nebraska, EUA); biomasa seca aérea (BSA, g), se cortó la plántula desde la base del tallo y se secó a 60 °C durante 72 h en una estufa Felisa FE-294^® (Jalisco, México), después se pesaron en una balanza A&D GX-2000^® (California, EUA); biomasa seca de raíz (BSR, g), se separó el sustrato de las raíces y estas se secaron a 60 °C durante 72 h en una estufa Felisa FE-294^® (Jalisco, México), después se pesaron en una balanza A&D GX-2000^® (California, EUA); volumen de raíz (VLR, mL), se midió por el desplazamiento de agua con una probeta graduada; lecturas SPAD (unidades) se midieron en hojas con un equipo Minolta SPAD 502 plus^® (Tokio, Japón). Todas las variables se evaluaron a los 45 días después de la siembra (dds). Concentración nutrimental en el tejido, las muestras de BSA se molieron con un mortero, posteriormente se sometieron a digestión húmeda, y el extracto que se obtuvo se aforó a 50 mL con agua destilada. La determinación de N total (g kg^-1) se realizó por el método micro Kjeldahl, el P (g kg^-1) se midió con el método de amarillo vanadato-molibdato mediante el espectrofotómetro Labomed Inc. modelo Spectro 23-RS^® (California, EUA), y el K (g kg^-1) se determinó en el flamómetro Cole-Parmer modelo 360^® (Illinois, EUA), esto de acuerdo con lo descrito por ^{Alcántar-González y Sandoval-Villa (1999)}.

Variables de calidad de plántula

Se calcularon los índices de calidad de plántula a 45 d, tal como la relación biomasa seca aérea-raíz (RBSA-BSR), se dividió el peso seco aéreo (g) entre peso seco de raíz (g); índice de esbeltez (IE) se obtuvo al dividir la altura de plántula (cm) y diámetro del tallo (mm); índice de calidad de Dickson (ICD), se determinó mediante la fórmula: ICD = peso seco total de plántula (g)/(IE + RBSA BSR^-1) (^{Dickson, Leaf y Hosner, 1960}).

Análisis de datos

A los datos de las variables se les aplicó el análisis de varianza, la prueba de comparación de medias por Tukey (P ≤ 0.05) y el análisis de correlación de Pearson con el paquete estadístico SAS versión 9.0 para Windows^®.

Crecimiento de plántula

Factor fertilizante orgánico líquido. El fertilizante orgánico líquido tuvo efecto significativo en siete variables del crecimiento. Las plántulas que se regaron con el fertilizante Pez Terra^® (PT) obtuvieron valores mayores en la AP 35%, DT 6%, NH 20%, AF 52%, BSA 29%, BSR 33% y VLR 16%, en relación con el lixiviado de vermicomposta (LV) (Cuadro 2). Esto se atribuyó a que el fertilizante Pez Terra^® suministró una cantidad superior de N (3410 mg L^-1) y P (420 mg L^-1) en comparación con el lixiviado de vermicomposta (100.30 y 20.50 mg L^-1) (Cuadro 1). El N y P son determinantes en el crecimiento por su participación en la actividad fotosintética y transferencia de energía en los procesos metabólicos de biosíntesis y degradación (^{Gorbe y Calatayud, 2010}). Estos resultados fueron similares a los que obtuvieron ^{Torres-García et al. (2019)}), quienes encontraron en planta de pimiento (Capsicum annuum L.) que el número de hojas y altura fue mayor al fertilizar con lixiviado de vermicomposta de estiércol caprino, con respecto al lixiviado de vermicomposta de estiércol bovino, lo que se atribuyó a la mayor carga de nutrientes en el estiércol de cabra. En los estudios de ^{Calero-Hurtado et al. (2020)} y ^{Chinga, Torres, Chirinos y Marmol (2020)} reportaron el efecto positivo en el crecimiento de las plantas de frijol (Phaseolus vulgaris L.) y algodón (Gossypium hirsutum) al aplicar diferentes lixiviados de vermicomposta de desechos vegetales y estiércol bovino puros o en dilución en suelo. En la investigación fue destacable el incremento del crecimiento de las plántulas de chile habanero con el fertilizante PT en comparación con el LV. Con referencia a los fertilizantes derivados del pescado, ^{San Martins-Sanes et al. (2015)} mencionan que estos estimulan el desarrollo de las plantas, por el suministro de nutrimentos alto, y también por el aporte de aminoácidos como glicina, alanina, leucina y ácido glutámico. De acuerdo con ^{Batista-Sánchez et al. (2015)} las plantas que reciben aminoácidos biológicamente activos pueden incrementar la síntesis de proteínas y metabolitos orgánicos, lo que promueve su acumulación de biomasa, crecimiento y desarrollo. ^{Castillo et al. (2011)} señalan que el ácido glutámico y la glicina favorecen el crecimiento vegetal en general, porque son moléculas primordiales en la formación de tejidos y división celular. ^{Santana-Baños et al. (2016)} en plántulas de tomate, reportaron que la germinación, diámetro de tallo y biomasa seca fue superior con aplicaciones de FitoMas-E^® (producto a base de aminoácidos), con respecto a las plántulas sin tratar.

Factor biofertilizante. El biofertilizante presentó efecto significativo en la AP, NH, AF y DT. Las plántulas que se inocularon con P. lilacinum incrementaron la AP 16%, DT 2% y AF 21% en comparación con B. brongniartii; sin embargo, con B. brongniartii el NH fue 10% mayor (Cuadro 2). Esto se debió a que P. lilacinum incrementa la disponibilidad de P, y produce ácido indol-3-acético (AIA) (^{Hernández-Leal, López, y Carrión, 2017}; ^{Baron et al., 2020}). El AIA es la auxina que se encarga del desarrollo de brotes y raíces, la división celular y la diferenciación de los tejidos (^{Jaroszuk-Ściseł, Kurek y Trytek, 2014}). Además, esta hormona actúa como señal para que interactúen las plantas y los microorganismos, ya que la síntesis de AIA aumenta el tamaño de las raíces lo que favorece la colonización microbiana, esto contribuye en el desarrollo de las plantas (^{Nieto-Jacobo et al., 2017}). Los resultados de la investigación guardan similitud con los estudios de ^{Moreno-Salazar et al. (2019)} en las plantas de chile habanero las cuales incrementaron su altura 13% con la inoculación de P. lilacinum, con relación con plantas sin inoculo. ^{Sosa-Pech, Ruiz, Tun, Pinzón y Reyes (2019)} en plántulas de chile habanero observaron que la altura y área foliar fue superior con aplicaciones de Bacillus sp., en comparación con plántulas sin biofertilizante. ^{López y Sword (2015)} en plantas de algodón encontraron que la biomasa seca fue mayor con P. lilacinum, con respecto a B. bassiana.

Interacción fertilizante orgánico líquido × biofertilizante. La interacción fertilizante orgánico líquido × biofertilizante fue significativa en la AP, DT, NH, AF, BSA y BSR. La AP fue mayor 10% con PT × P. lilacinum con respecto al testigo; el DT incrementó PT × B. brongniartti (2.89 mm), PT × P. lilacinum (2.87 mm) y LV P. lilacinum (2.75 mm) en comparación con LV × B. brongniartti (2.68 mm), pero fueron iguales al testigo (2.82 mm). Las plántulas testigo presentaron mayor NH (13.70 hojas) en comparación con el resto de las combinaciones, en cambio con la interacción PT × P. lilacinum expresaron AF mayor 35%; para ambas variables los valores menores se obtuvieron con las combinaciones LV × B. brongniartti y LV × P. lilacinum. Con las interacciones PT × B. Brongniartti, y PT × P. lilacinum se obtuvieron valores de BSA de 326.99 mg y 344.63 mg, valores iguales al testigo (362.76 mg). No obstante, la combinación PT × P. lilacinum presentó una BSR de 153.87 mg, valor igual al testigo (128.12 mg) (Cuadro 2). De acuerdo con lo anterior, las plántulas que se trataron con el fertilizante PT y P. lilacinum, y se cultivaron en el sustrato peat moss/composta obtuvieron crecimiento similar a las que se produjeron con la solución de Steiner al 25% y peat moss, lo que muestra que este tratamiento fue suficiente para producción de las plántulas de chile habanero y sustituir en su totalidad el uso de fertilizantes químicos. Estos resultados fueron similares a los que obtuvieron ^{Shahsavani, Abaspour, Parsaeian y Unesi (2017)} en frijol caupí (Vigna sinensis L.) y ^{Gamboa-Angulo et al. (2020)} en chile xcat´ik (Capsicum annuum L.), porque señalaron que con aplicaciones de fertilizante sólido de derivados de pescado y composta, en combinación con Pseudomonas sp. y B. subtilis, respectivamente, se puede sustituir la fertilización química, ya que estas combinaciones incrementaron o igualaron el crecimiento de las plantas, en comparación con el testigo químico. Esto lo atribuyeron al suministro de nutrientes por los abonos orgánicos, y al aporte de aminoácidos, auxinas, giberelinas, y ácidos húmicos y fúlvicos, también a que los microorganismos mejoran la disponibilidad de macro y micronutrientes, promueven el crecimiento vegetal, y proveen tolerancia a estrés hídrico y salino.

Lecturas SPAD y concentración nutrimental

Factor fertilizante orgánico líquido. El fertilizante orgánico líquido presentó efecto significativo en la concentración nutrimental y lecturas SPAD. Las plántulas que se trataron con el fertilizante PT presentaron concentración mayor de N, P, K y lecturas SPAD en 65 24, 13 y 35% respectivamente, en comparación con el LV (Cuadro 3). La concentración nutrimental menor en el fertilizante LV no favoreció el suministro de nutrientes durante el crecimiento de las plántulas de chile habanero (^{Gorbe y Calatayud, 2010}), caso contrario con el PT, con el cual la concentración de nutrimentos para las plantas fue mayor lo que pudo beneficiar en la mayor absorción y translocación de estos. Lo anterior, explica las correlaciones positivas que se encontraron entre la concentración de N y la AP (r = 0.72**), DT (r = 0.53*), AF (r = 0.83**) y BSA (r = 0.60*), y de K con la AP (r = 0.84**), AF (r = 0.81**) y BSA (r = 0.76**).

Se tienen investigaciones sobre concentraciones nutrimentales en planta por el uso de lixiviado de vermicomposta y otros fertilizantes orgánicos, tal como ^{Durukan, Demirbas y Tutar (2019)} en tomate donde la concentración de N, P y K foliar incrementó en 17, 15 y 36% respectivamente, al utilizar vermicomposta sólida de estiércol bovino, en contraste con el lixiviado de vermicomposta. ^{Preciado-Rangel et al. (2011)}, encontraron que la concentración de N en hojas de tomate fue superior 5% al aplicar té de composta de estiércol bovino, en comparación con el lixiviado de vermicomposta, lo que atribuyeron al aporte de N mayor en el té de composta, esto fue similar a lo que se observó en la presente investigación.

Respecto a las lecturas SPAD, ^{Lin et al. (2010)} mencionan que estas se relacionan con el contenido de clorofilas y N en hojas, esto se confirma con la correlación positiva que se encontró entre lecturas SPAD y la concentración de N (r = 0.92**), y a su vez explica el aumento en el crecimiento de plántula al emplear el fertilizante PT. ^{Cedeño-Guerra, Héctor, Torres y Fosado (2020)} reportaron para plantas de pimiento entre 55 unidades SPAD y 57 unidades SPAD con aplicaciones de lixiviado de vermicomposta de estiércol bovino, al compararlas con los resultados de la investigación se obtuvieron valores menores hasta en 35% con el LV, y similares con el fertilizante PT.

Factor biofertilizante. El biofertilizante tuvo efecto significativo en la concentración de N y P, pero no en el K y lecturas SPAD. La concentración de N en tejido foliar fue 10% mayor con P. lilacinum, en comparación con B. brongniartii; sin embargo, con B. brongniartii se incrementó la concentración de P 16% (Cuadro 3). ^{Jiménez, Ramírez, Petit, Colcenares y Parra (2017)} en plantas de chile tabasco (Capsicum frutescens) demostraron que la cantidad de clorofila y N foliar aumentó con la inoculación de Funneliformis mosseae, con respecto a las plantas sin inoculo, esto fue similar a lo que se encontró con P. lilacinum en la investigación. En cambio, ^{Hernández-Leal et al. (2017)} en plantas de avena (Avena sativa) reportaron que la concentración de N fue igual al aplicar P. lilacinum en relación con el testigo sin biofertilizante.

El aumento de la concentración de P con B. brongniartti, se debe a su capacidad mayor para solubilizar P. En estudios de laboratorio, ^{Toscano-Verduzco et al. (2019)} reportaron que B. brongniartii, solubilizó 198.65 mg L^-1, mientras que ^{Moreno-Salazar et al. (2019)} encontraron que P. lilacinum solubilizó 176.40 mg L^-1. Esto benefició la absorción y translocación de P en plántulas de chile habanero, tal como señala ^{Chan-Cupul et al. (2018)}.

Interacción fertilizante orgánico líquido × biofertilizante. La interacción fertilizante orgánico líquido × biofertilizante fue significativa en la concentración de N y P, mientras que en el K y lecturas SPAD no hubo significancia. Al combinar PT × P. lilacinum se incrementó la concentración de N 57%, con respecto al testigo, y en las interacciones PT × B. brongniartti, PT × P. lilacinum y LV × B. brongniartti se aumentó la concentración de P cuyos valores fueron 2.23, 2.05 y 1.85 g kg^-1 respectivamente, en relación con el testigo (1.33 g kg^-1) (Cuadro 3). Por lo tanto, con el fertilizante PT y P. lilacinum, y el uso del sustrato peat moss/composta se incrementó la concentración de N y P, con respecto a la solución de Steiner al 25% y el peat moss, por lo que se consideró que esta combinación fue suficiente para el suministro de macronutrimentos, y por tal razón se puede utilizar para sustituir el uso de fertilizantes químicos en la nutrición de plántulas de chile habanero. Estos resultados fueron similares con el estudio de ^{Gamboa-Angulo et al. (2020)} en plantas chile xcat´ik, porque reportaron que la concentración de P fue mayor con aplicaciones de composta de estiércol de oveja y B. subtilis, en comparación con la fertilización química. En cambio, ^{Cabanzo-Atilano et al. (2020)} en plántulas de chile serrano (Capsicum annuum L.) encontraron que la concentración de N y P fue superior con la solución nutritiva de Steiner, en relación con el té de vermicomposta de estiércol bovino en combinación con P. tolassi.

^{Cortés-Patiño, Vega, Sigarroa, Moreno y Cárdenas (2015)} y ^{Angulo-Castro et al. (2018)} señalan que los microorganismos ayudan a la absorción de nutrientes disponibles incorporados en los fertilizantes, y que la capacidad de estos para colonizar raíces, sobrevivir y aumentar su población depende principalmente de la humedad, contenido de materia orgánica y disponibilidad de nutrientes en el medio. Por lo anterior, se infiere que posiblemente el fertilizante PT y el sustrato peat moss/composta proporcionaron nutrientes necesarios y condiciones adecuadas a P. lilacinum, que provocó un posible aumento en su colonización y supervivencia, y como consecuencia favoreció el incremento en la absorción de nutrientes disponibles por las plántulas de chile habanero.

Calidad de plántula

Factor fertilizante orgánico líquido. El fertilizante orgánico líquido presentó efecto significativo en tres índices de calidad. Las plántulas que se trataron con el fertilizante PT incrementaron la relación BSA-BSR, IE e ICD en 23, 31 y 25% respetivamente, en comparación con el LV (Cuadro 4). La relación BSA-BSR mayor con el fertilizante PT fue consecuencia del aumento del crecimiento aéreo con respecto al radical (^{Sánchez-Aguilar, Aldrete, Vargas y Ordaz, 2016}). ^{Luna (2019)}, señala que con valores menores a 2.5 en esta relación la proporción entre las raíces y la parte aérea es adecuada, por lo que el sistema radical es suficiente para proveer de agua y energía a la plántula, así esta mejora su capacidad para adaptarse a campo. Con base en esto, los valores que se obtuvieron con los fertilizantes PT (3.44) y LV (2.62) superaron el rango sugerido, y estos fueron similares a los que obtuvieron ^{Julca-Otiniano, Borjas, Bello, Ladera y Rebaza (2015)} en plántulas de café (Coffea arabica) con aplicaciones de los fertilizantes orgánicos Fertiprotec^® (3.05) y Alopes Forte^® (3.06). Para el IE, los valores oscilaron de 2.80 a 4.08, de acuerdo con ^{Prieto-Ruiz, García, Mejía, Huichín y Aguilar (2009)} las plantas de calidad alta muestran IE menor a 6. Por lo tanto, las plántulas que se obtuvieron con los fertilizantes PT y LV presentaron valores adecuados. ^{Acevedo-Alcalá, Cruz y Taboada (2020)} en plántulas de chile poblano (Capsicum annuum L.), encontraron diferencias (P ≤ 0.05) para el IE, con valores de 4.78, 4.39, 4.46 y 4.56 con el uso de los fertilizantes orgánicos Solep^®, Fernato^®, estiércol vacuno y estiércol ovino, respectivamente. Estos valores fueron similares a los que se obtuvieron con el fertilizante PT en la investigación.

De acuerdo con ^{Dickson et al. (1960)} el ICD expresa el equilibrio de la distribución de la biomasa y la esbeltez, y se utiliza para predecir el comportamiento de especies diversas en campo. ^{Fonseca-Reis de Mello et al. (2016)}, señalan que al aumentar el ICD representa plántulas de mayor vigor y calidad para trasplante. Además, ^{Villar et al. (2004)} indican que concentraciones de N, P y K superiores en plántulas influyen en su resistencia y calidad al tener reservas nutrimentales mayores para soportar el trasplante. Por lo tanto, se deduce que al utilizar el fertilizante PT las plántulas mejoraron su calidad, por ende, tendrán mayor supervivencia, crecimiento y producción de chile habanero. En investigaciones que se realizaron con fertilizantes orgánicos en la producción de plántulas de café (^{Julca-Otiniano et al., 2015}) y chile poblano (^{Acevedo-Alcalá et al., 2020}) reportaron que los valores de ICD oscilaron de 0.18 a 0.33 y 0.12 a 0.40, respectivamente, los cuales fueron superiores a los que se obtuvieron en la investigación.

Factor biofertilizante. El biofertilizante causó efecto significativo solo en el IE. Las plántulas que se inocularon con P. lilacinum obtuvieron valor mayor en el IE (l6%), en comparación con B. brongniartti (Cuadro 4). Este resultado superior sugiere mejor calidad física y desarrollo de las plántulas, ya que presentan resistencia mecánica mayor durante las operaciones de plantación, y que el tamaño de estas es adecuado (^{López-López, Gálvez, Calleja, Méndez y Ríos, 2018}). En la investigación de ^{Sosa-Pech et al. (2019)} en plántulas de chile habanero indicaron que el IE fue mayor (con valor de 4.35) con aplicaciones de Bacillus sp., en relación con el testigo sin inoculo (con valor de 3.96).

Interacción fertilizante orgánico líquido × biofertilizante. La interacción fertilizante orgánico líquido × biofertilizante fue significativa en el IE e ICD. La interacción PT × P. lilacinum obtuvo un IE más alto (con valor de 4.49) con respecto al testigo (con valor de 4.15). Para el ICD, con la combinación PT × P. lilacinum y el testigo se presentaron los valores mayores los cuales fueron 0.078 y 0.079, respectivamente (Cuadro 4). Estos resultados demuestran que con el fertilizante PT y P. lilacinum, y el sustrato peat moss/composta se produjeron plántulas de calidad alta, iguales a las que se obtuvieron con la solución de Steiner al 25% y el peat moss; por lo que esta combinación puede sustituir la fertilización química para la producción de plántulas de chile habanero de buena calidad, y a su vez garantizar un mejor desarrollo de la planta y maximizar la producción del cultivo (^{Cargua-Chávez, Echeverria y Cedeño, 2020}).

^{Rodríguez-Trejo (2008)} y ^{Prieto-Ruiz et al. (2009)}, señalan que la calidad de las plántulas es la capacidad que tienen para adaptarse, crecer y sobrevivir en las condiciones donde se establezcan, lo cual depende de su genética y tecnología de producción. Actualmente, se realizan evaluaciones más precisas para controlar las características de las plántulas que se producen, en las cuales incluyen los diferentes índices de calidad (RBSA-BSR, IE e ICD) para tener bases más sólidas sobre el comportamiento de las plantas en campo. Esto lo demuestran los reportes recientes sobre la calidad de plántulas de chile habanero (^{Sosa-Pech et al., 2019}), chile poblano (^{Acevedo-Alcalá et al., 2020}) y cacao (^{Cargua-Chávez et al., 2020}), donde los investigadores señalan y coinciden en que estos índices pueden pronosticar la supervivencia, resistencia y adaptación de las plántulas en campo, por lo que son excelentes indicadores para la selección de estas al momento del trasplante.