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Introducción
La Reserva de la Biosfera Isla Cozumel tiene una superficie total de 520 km2, se ubica entre los paralelos 20°36' a 20°16'N y los meridianos 86°44' a 87°20'O en el Caribe Mexicano, en el estado de Quintana Roo, en la costa oriental de la Península de Yucatán, México (García, 2004). Cozumel es una isla oceánica de origen coralino, que nunca estuvo conectada al continente (CONANP, 2016). Este aislamiento la convirtió en un lugar propicio para la generación de endemismos, ya que a lo largo del tiempo geológico sus poblaciones han evolucionado en forma independiente. Cuatro grupos de suelos se distribuyen en la superficie insular con extensiones muy desiguales. El principal es el Rendzina, que ocupa 86.51% de la superficie insular repartiéndose por su zona central. El segundo en cobertura es el Solonchak, que abarca 10.86% de la superficie del territorio y se distribuye principalmente en las zonas pantanosas de los extremos sur, norte y en una porción de la costa nororiental (siendo en el primer caso de tipo órtico y en los otros dos de tipo gléyico). El tercero es el suelo denominado Gleysol (de tipo mólico), el cual ocupa 1.05% de la superficie y se encuentra en la costa oriental immediatamente al norte de la carretera transversal. Finalmente, el Regosol (de tipo calcárico) ocupa 0.5% de la superficie insular y se sitúa en una estrecha franja de la costa al norte de San Miguel de Cozumel (CONANP, 2007). Sus ecosistemas son variados, pues existen arrecifes coralinos, pastos marinos, manglares, vegetación de dunas costeras, tasistales-saibales; la selva baja caducifolia y mediana subcaducifolia representan los tipos de vegetacion predominantes con 70% (Romero-Nájera, 2004). Entre las especies dominantes se tienen a Acacia pringlei Rose (huamuche), Brosimum alicastrum Sw. (ramón), Bursera simaruba (L.) Sarg. (palo mulato), Caesalpinia yucatanensis (Britton & Rose) Greenm. (palo gusano), Cecropia obtusifolia Bertol. (guarumo), Ceiba aesculifolia (Kunth) Britten & Baker f. (ceibillo), Coccoloba barbadensis Jacq. (uvero), Guaiacum sanctum L. (guayacán), Pithecellobium mangense (Jacq.) Macbride (cucharo) y Vitex gaumeri Greenm. (yaxnik) (CONANP, 2016).
Los ascomicetos son el grupo de hongos con mayor número de especies descritas en el Reino Fungi (Kirk et al., 2008). El grupo se caracteriza por la presencia de generalmente ocho ascosporas dentro de sacos denominados ascas, organizadas en cuerpos fructíferos llamados ascomas o ascocarpos. La mayoría de sus especies son saprobias, necrótrofas o biótrofas parásitas de plantas o animales, incluido el hombre. Sin embargo, cada vez son más las que se encuentran como endófitas (Webster y Weber, 2007).
Los primeros trabajos que registran ascomicetos de la Reserva de la Biosfera Isla Cozumel son los de Kohlmeyer (1984) y González et al. (2001), quienes citaron 15 especies de ascomicetos marinos para las costas de la isla. Recientemente se han citado algunas especies de ascomicetos características de la selva baja caducifolia, entre ellas se encuentran Daldinia eschscholtzii (Ehrenb.) Rehm (Barbosa-Reséndiz et al., 2020), Hypoxylon cinnabarinum (Henn.) Henn., H. erythrostroma J.H. Mill., H. haematrostroma Mont., H. investiens (Schwein.) M.A. Curtis, H. jaklitschii Sir & Kuhnert, H. lenormandii Berk. & M.A. Curtis, H. perforatum (Schwein.) Fr., H. rickii Y.M. Ju & J.D. Rogers, H. subgilvum Berk & Broome (Reyes et al., 2020), Rhytidhysteron neorufulum Thambug. & K.D. Hyde y R. rufulum (Spreng.) Speg. (Cobos-Villagrán et al., 2020). Además, García-Martínez et al. (2021b) reportaron 16 ascomicetos de las 20 especies de hongos asociadas a Rhizophora mangle L. (mangle rojo) para la reserva y García-Martínez et al. (2021a) citan a Mycoporum buckii R.C. Harris sobre ramas vivas o muertas de mangle rojo del Parque Ecológico Punta Sur. Hasta el momento no existen artículos sobre los ascomicetos en la isla; por lo que el presente estudio tiene como objetivo enlistar las especies de este grupo de hongos de tres Áreas Naturales Protegidas (ANPs) en la Reserva de la Biosfera Isla Cozumel, México.
Materiales y Métodos
Área de estudio
Se realizaron recolecciones en tres Áreas Naturales Protegidas de la Reserva de la Biosfera Isla Cozumel (Fig. 1):
Figura 1: Ubicación de las localidades en la Reserva de la Biosfera Isla Cozumel, Quintana Roo, México.
Centro de Conservación y Educación Ambiental (CCEA), 20°28'59.19''N, 86°57'21.80''O, vegetación de selva baja caducifolia. Las especies dominantes son Brassavola nodosa Lindl., Dioscorea floribunda M. Martens & Galeotti, Diospyros nicaraguensis Standl., Disocactus flagelliformis (L.) Lem., Enriquebeltrania crenatifolia (Miranda) Rzed., Microgramma nitida (J. Sm.) A.R. Sm., Pithecellobium dulce (Roxb.) Benth., P. mangense J.F. Macbr. y Selenicereus testudo (Karw. ex Zucc.) Buxb.
Parque Ecológico Punta Sur (PEPS), 20°16'48''N, 86°58'44.39''O, vegetación de duna costera y manglar. Las especies presentes en las dunas costeras son Ambrosia hispida Pursh, Opuntia stricta (Haw.) Haw., Canavalia rosea (Sw.) DC., Sophora tomentosa L., Suriana maritima L., Hymenocallis caribaea (L.) Herb., Coccoloba uvifera, Thrinax radiata Lodd. ex Desf., Erithalis fruticosa L., Ernodea littoralis Sw., Salicornia bigelovii Torr., Enriquebeltrania crenatifolia y en el manglar se encuentran Rhizophora mangle, Avicennia germinans (L.) L., Laguncularia racemosa C.F. Gaertn. y Conocarpus erectus L.
Zona Arqueológica de San Gervasio, Chen-tuk (ZASG), 20°29'58.02''N, 86°50'37.88''O, vegetación de selva mediana subcaducifolia. Las especies dominantes son Manilkara zapota (L.) P. Royen, Bursera simaruba, Calliandra belizensis (Britton & Rose) Standl., Cedrela odorata L., Metopium brownei (Jacq.) Urb., Vitex gaumeri Greenm., Caesalpinia gaumeri Greenm., Ceiba aesculifolia (Kunth) Britten & Baker f., Lysiloma latisiliquum (L.) Benth., Sideroxylon gaumeri (Pittier), Gliricidia sepium (Jacq.) Kunth ex Walp. y Coccoloba acapulcensis Standl. (Romero-Nájera, 2004).
Trabajo de campo
De 2018 a 2019 se realizaron cuatro exploraciones en las tres Áreas Naturales Protegidas de la Reserva de la Biosfera Isla Cozumel, mencionadas anteriormente, en enero y junio 2018, y en junio y octubre 2019.
El muestreo fue libre y sin restricciones según Angulo et al. (2006) y se presenta la distribución en México de las especies, y la descripción de la especie nueva de acuerdo con Reyes et al. (2020). Además, se tomaron fotografías in situ, utilizando cámaras Nikon D5500 (Nikon, Tokio, Japón) y Nikon D7000 (Nikon, Tokio, Japón).
Trabajo de laboratorio
Los especímenes recolectados se caracterizaron macro y micromorfológicamente de acuerdo con Chaverri et al. (2011a). Se consideraron el tamaño y forma del peritecio, ascas, ascosporas y células estériles. Se hicieron cortes longitudinales en preparaciones temporales utilizando alcohol al 70% e hidróxido de potasio (KOH) al 5% para la extracción de pigmentos estromáticos de gran valor taxonómico. El estudio morfométrico se realizó en un microscopio óptico (MO) (K-7 Zeiss, Jena, Alemania) y para el detalle de la ornamentación de las esporas se utilizó microscopía electrónica de barrido (MEB) (JSM-5800LV, Jeol, Peabody, MA, EUA). Las especies se determinaron con las claves especializadas de Denison (1963), San Martín y Rogers (1989), Ju y Rogers (1996), San Martín et al. (1999), Carmarán et al. (2006), Hladki y Romero (2009), Chaverri et al. (2011a, b), Pompa-González et al. (2011), Angelini y Medardi (2012), Fournier et al. (2015), Thambugala et al. (2016), y Barbosa-Reséndiz et al. (2020).
La terminología utilizada hace referencia al diccionario de Ulloa y Hanlin (2006). Los especímenes se depositaron en la Colección de Hongos “Dr. Gastón Guzmán Huerta” del Herbario de la Escuela Nacional de Ciencias Biológicas del Instituto Politécnico Nacional (ENCB).
Resultados
A continuación, se enlistan 40 especies de ascomicetos ubicadas en 25 géneros, 15 familias, nueve órdenes y cuatro clases, provenientes de las tres localidades que son Áreas Naturales Protegidas en la Reserva de la Biosfera Isla Cozumel. De estas, 15 especies se citan por primera vez para Quintana Roo, ocho para la isla. Bertia tropicalis Huhndorf (Bertiaceae) se cita por primera vez para México y Platystomum mexicanum Raymundo, Martínez-Pineda, A. Tun & R. Valenz. (Lophiostomataceae) se describe como nueva para la ciencia.
Botryosphaeriaceae
Botryosphaeria dothidea (Moug.) Ces & De Not. Comm. Soc. crittog. Ital. 1(4): 212. 1863.
TIPOS: FRANCIA. On Rosa sp., 1823, S. Mougeot s.n. (neotipo: S). SUIZA. Ticino, Crocifisso, Prunus sp., X.2000, B. Slippers s.n. (epitipo: PREM 57372).
= Xyloma rosae Schleich. ex DC., Fl. franç., Edn 3 (Paris) 5-6: 161. 1815.
≡ Sphaeria dothidea Moug., in Fries, Syst. mycol. (Lundae) 2(2): 423. 1823.
= Dothidea rosae (Schleich. ex DC.) Fr., Summa veg. Scand., Sectio Post. (Stockholm): 386. 1849.
= Botryosphaeria dothidea var. pluriguttata Brunaud, Bull. Soc. Sci. Nat. Ouest 3: 217. 1893.
= Dothiorella mali var. fructans Dearn., Mycologia 33(4): 361. 1941.
≡ Caumadothis dothidea (Moug.) Petr., Sydowia 24(1-6): 277. 1971.
Material examinado: MÉXICO. Quintana Roo, municipio Cozumel, Reserva de la Biosfera Isla Cozumel, Parque Ecológico Punta Sur, 16.VI.2018, T. Raymundo 8304 (ENCB), 8305 (ENCB).
Distribución en México: se ha reportado en Puebla (Valencia-Botín et al., 2003), Nayarit, Tabasco y Veracruz (Cibrián-Tovar, 2013). Se cita por primera vez para Quintana Roo.
Lasiodiplodia theobromae (Pat.) Griffon & Maubl. Bull. Soc. mycol. Fr.25: 57. 1909.
TIPO: PAPUA NUEVA GUINEA. Madang, Jais Aben, de un fruto no identificado en las costas del arrecife de coral, A. Aptroot 1995 (neotipo: CBS H-21411), MBT176098, culture (ex-neotipo: CBS 164.96).
= Sphaeria glandicola Schwein., Trans. Am. phil. Soc., New Series 4(2): 214. 1832.
= Diplodia gossypina Cooke, Grevillea 7(43): 95. 1879.
= Physalospora rhodina Berk. & M.A. Curtis, Grevillea 17(84): 92. 1889.
≡ Botryodiplodia theobromae Pat., in Patouillard & Lagerheim, Bull. Soc. mycol. Fr. 8(3): 136. 1892. TIPO: ECUADOR. En Theobroma cacao, Lagerheim s.n. (holotipo no encontrado y presumiblemente perdido).
= Phoma glandicola (Schwein.) Cooke, Grevillea 20(95): 85. 1892.
= Cryptostictis glandicola (Schwein.) Starbäck, Bih. K. Svenska Vetensk. Akad. Handl., Afd. 3 19(2): 86. 1894.
= Macrophoma vestita Prill. & Delacr., Bull. Soc. mycol. Fr. 10: 165. 1894.
= Diplodia cacaoicola Henn., Bot. Jb. 22: 80. 1895.
= Lasiodiplodia tubericola Ellis & Everh., in Clendenin, Bot. Gaz. 21: 92. 1896.
= Botryodiplodia gossypii Ellis & Barthol., J. Mycol. 8(4): 175. 1902.
= Botryodiplodia elasticae Petch, Ann. R. bot. Gdns Peradeniya 3(1): 7. 1906.
= Chaetodiplodia grisea Petch, Ann. R. bot. Gdns Peradeniya 3(1): 6. 1906.
= Lasiodiplodia nigra Griffon & Maubl., Bull. Soc. mycol. Fr. 25: 57. 1909.
= Diplodia natalensis Pole-Evans, Transvaal Dept. of Agricult. Sci. Bull. 4: 15. 1911.
= Thyridaria tarda C.K. Bancr., Bull. Dept. Agric. Fed. Malay Stat. 9: (1). 1911.
= Diplodia tubericola (Ellis & Everh.) Taubenh., Am. J. Bot. 2(7): 328. 1915.
= Lasiodiplodia triflorae B.B. Higgins, Bull. Georgia Exp. Stn 118: 16. 1916.
= Pyreniella rhodina (Berk. & M.A. Curtis) Theiss., Verh. zool.-bot. Ges. Wien 66: 392. 1916.
= Diplodia ananassae Sacc., Atti Accad. Sci. Ven.-Trent.-Istr. 10: 75. 1917.
≡ Diplodia theobromae (Pat.) W. Nowell, Diseases of Crop Plants in the Lesser Antilles: 158. 1923.
= Botryodiplodia tubericola (Ellis & Everh.) Petr., Annls mycol. 21(3-4): 332. 1923.
= Physalospora gossypina F. Stevens, Mycologia 17(5): 200. 1925.
= Botryodiplodia ananassae (Sacc.) Petr., Annls mycol. 27(5-6): 365. 1929.
= Physalospora glandicola (Schwein.) N.E. Stevens, Mycologia 25(6): 504. 1933.
= Lasiodiplodiella triflorae (B.B. Higgins) Zambett., Bull. trimest. Soc. mycol. Fr. 70(3): 229. 1955.
= Botryosphaeria rhodina (Berk. & M.A. Curtis) Arx, Gen. Fungi Sporul. Cult. (Lehr): 143. 1970.
Material examinado: MÉXICO. Quintana Roo, municipio Cozumel, Reserva de la Biosfera Isla Cozumel, Parque Ecológico Punta Sur, 16.VI.2018, T. Raymundo 7672 (ENCB); loc. cit., 14.X.2019, T. Raymundo 8306 (ENCB).
Distribución en México: Campeche, Ciudad de México, Colima, Estado de México, Guerrero, Guanajuato, Jalisco, Michoacán, Nayarit, Puebla, Querétaro, Tabasco, Tlaxcala (Cibrián-Tovar et al., 2007), Veracruz (Medel y Chacón, 1988) y Sonora (Raymundo et al., 2017a). Se cita por primera vez para Quintana Roo.
Hysteriaceae
Gloniella tropicalis I. Álvarez, Raymundo & R. Valenz., Act. Bot. Mex. 116 (4): 54. 2016.
TIPO: MÉXICO. Oaxaca, Parque Nacional Lagunas de Chacahua, km 4 del camino de terracería, Los Azufres - La Grúa, 12.X.2011, T. Raymundo 4093 (ENCB!).
Material examinado: MÉXICO. Quintana Roo, municipio Cozumel, Reserva de la Biosfera Isla Cozumel, Zona Arqueológica de San Gervasio, Chen-tuk, 17.VI.2018, T. Raymundo 7685 (ENCB).
Distribución en México: Oaxaca (Álvarez et al., 2016). Se cita por primera vez para Quintana Roo.
Rhytidhysteron neorufulumThambug. & K.D. Hyde, Cryptogamie Mycologie 37(1): 110. 2016. Fig. 2A.
Figura 2: Dothideomycetes: A. Rhytidhysteron neorufulum Thambug. & K.D. Hyde; B. R. rufulum (Spreng.) Speg.; C. Patellaria atrata (Hedw.) Fr.
TIPO: TAILANDIA. Provincia de Chiang Rai, Centro de Investigación Hortícola Chiangrai, 2012, K. M. Thambugala 3 (holotipo: MFLU, isotipo: PDD).
Material examinado: MÉXICO. Quintana Roo, municipio Cozumel, Reserva de la Biosfera Isla Cozumel, Centro de Conservación y Educación Ambiental, 19.I.2018, A. Cobos-Villagrán 915 (ENCB); Parque Ecológico Punta Sur, 16.VI.2018, A. Cobos-Villagrán 1816 (ENCB); Zona Arqueológica de San Gervasio, Chen-tuk, 17.VI.2018, A. Bernal 132 (ENCB); loc. cit., A. Cobos-Villagrán 1840 (ENCB), 1841 (ENCB), 1843 (ENCB); loc. cit., 21.I.2018, T. Raymundo 7337 (ENCB); loc. cit., 17.VI.2018, T. Raymundo 7688 (ENCB).
Distribución en México: Campeche, Colima, Jalisco, Nayarit, Oaxaca, Quintana Roo y San Luis Potosí (Cobos-Villagrán et al., 2020).
Rhytidhysteron rufulum (Spreng.) Speg. An. Soc. Cient. Arg. 90(1-6): 177. 1921. Fig. 2B.
≡ Hysterium rufulum Spreng., Kongl. Svenska Vetenskaps Academiens Handlingar 41: 50. 1820. TIPO: PUERTO RICO. C. Sprengel s.n. (especímen tipo no designado ni se menciona en qué herbario se depositó).
≡ Tryblidiella rufula (Spreng.) Sacc. Sacc., Syll. Fung. (Abellini) 2: 757. 1883.
≡ Triblidium rufulum (Spreng.) Ellis & Everh., N. Amer. Pyren. (Newfield): 690. 1892.
≡ Brunaudia rufula (Spreng.) Kuntze (as ‘Bruneaudia’) Revis. Gen. Pl. (Leipzig) 3(3): 447. 1898.
Material examinado: MÉXICO. Quintana Roo, municipio Cozumel, Reserva de la Biosfera Isla Cozumel, Centro de Conservación y Educación Ambiental, 19.I.2018, A. Cobos-Villagrán 915 (ENCB); Parque Ecológico Punta Sur, 16.VI.2018, A. Cobos-Villagrán 1811 (ENCB), 1817 (ENCB), 1820 (ENCB), 1821 (ENCB), 1823 (ENCB), 1824 (ENCB), 1825 (ENCB); loc. cit., T. Raymundo 7660 (ENCB), 7663 (ENCB); Zona Arqueológica San Gervasio, Chen-tuk, 17.VI.2018, A. Cobos-Villagrán 1844 (ENCB), 1845 (ENCB), 1861 (ENCB); loc. cit., T. Raymundo 7690 (ENCB).
Distribución en México: se ha citado de los estados de Sonora (Méndez-Mayboca et al., 2010), Chiapas, Guerrero, Nuevo León, Puebla, Querétaro, Quintana Roo, Sonora, Tabasco, Tamaulipas, Veracruz, Yucatán (Chacón et al., 2014), Oaxaca (Raymundo et al., 2014; Álvarez et al., 2016), Campeche, Colima, Estado de México, Hidalgo, Jalisco, Nayarit y San Luis Potosí (Cobos-Villagrán et al., 2020).
Patellariaceae
Patellaria atrata (Hedw.) Fr., Syst. mycol. (Lundae) 2(1): 158. 1822. Fig. 2C.
TIPO: ALEMANIA. En ramas de Tilia Hedwig. (holotipo: no se indica en qué herbario está depositado el tipo).
≡ Lichen atratus Hedw., Descr. Micr.-anal. Musc. Frond. (Lipsiae) 2: 61. 1789.
= Peziza patellaria Pers., Syn. meth. fung. (Göttingen) 2: 670. 1801.
≡ Peziza atrata (Hedw.) Schumach., Enum. pl. (Kjøbenhavn) 2: 417. 1803.
= Peziza patellaria var. foveolans Pers., Mycol. eur. (Erlanga) 1: 307. 1822.
= Peziza patellaria var. picea Pers., Mycol. eur. (Erlanga) 1: 307. 1822.
= Peziza patellaria var. valvata Pers., Mycol. eur. (Erlanga) 1: 307. 1822.
≡ Lecanidion atratum (Hedw.) Endl., Flora Pason 1: 46. 1830.
≡ Cycledium atratum (Hedw.) Wallr. (as “Cycledum atrum”), Fl. crypt. Germ. (Norimbergae) 2: 511. 1833.
= Opegrapha atra f. denigrata (Ach.) Moug., Bull. Soc. bot. Fr. 4(4): 259. 1857.
= Ucographa lecanactis A. Massal. ex Arnold, Flora, Regensburg 45(25): 394. 1862.
= Patellaria indigotica Cooke & Peck, in Peck, Ann. Rep. Reg. Univ. St. N.Y. 25: 98. 1873.
= Lecanidion indigoticum (Cooke & Peck) Sacc., Syll. fung. (Abellini) 8: 797. 1889.
≡ Ucographa atrata (Hedw.) Arnold, Ber. bayer. bot. Ges. 1: 133. 1891.
= Patellaria maura Massee Bull. Misc. Inf., Kew: 131. 1898.
≡ Pragmopora atrata (Hedw.) Körb. ex Mussat, in Saccardo, Syll. fung. (Abellini) 15: 287. 1901.
= Patellaria atrata f. indigotica (Cooke & Peck) Rehm, Annls mycol. 4(4): 337. 1906.
= Patellaria atrata f. hedericola Bubák, Annls mycol. 12(2): 206. 1914.
= Patellaria masseei Rodway (as “masseea”), Pap. Proc. R. Soc. Tasm.: 156. 1921.
= Bilimbia sublubens Paulson, Trans. Br. mycol. Soc. 12(2-3): 88. 1927.
= Bacidia sublubens (Paulson) Zahlbr., Cat. Lich. Univers. 8: 409. 1932.
Material examinado: MÉXICO. Quintana Roo, municipio Cozumel, Reserva de la Biosfera Isla Cozumel, Parque Ecológico Punta Sur, 15.X.2019, T. Raymundo 8326 (ENCB).
Distribución en México: Sonora (Méndez-Mayboca et al., 2010), Chiapas, Veracruz (Chacón y Tapia, 2016) y Quintana Roo (García-Martínez et al., 2021b).
Anteaglonaceae
Anteaglonium abbreviatum (Schwein.) Mugambi & Huhndorf, Systematics and Biodiversity 7(4): 460. 2009.
TIPO: ESTADOS UNIDOS DE AMÉRICA. Pennsylvania, Northampton County, Bethlehem, L. D. Schweinitz 2094 (holotipo: PH).
≡ Hysterium abbreviatum Schwein., Trans. Am. phil. Soc., New Series 4(2): 244. 1832.
≡ Lophiostoma abbreviatum (Schwein.) Sacc., Syll. fung. (Abellini) 2: 710. 1883.
≡ Glonium abbreviatum (Schwein.) M.L. Lohman, Bull. Torrey bot. Club 64: 64. 1937.
Material examinado: MÉXICO. Quintana Roo, municipio Cozumel, Reserva de la Biosfera Isla Cozumel, Zona Arqueológica de San Gervasio, Chen-tuk, 17.VI.2018, T. Raymundo 7684 (ENCB).
Distribución en México: Oaxaca (Álvarez et al., 2016). Se cita por primera vez para Quintana Roo.
Lophiostomataceae
Platystomum mexicanum Raymundo, Martínez-Pineda, A. Tun & R. Valenz., sp. nov. Figs. 3A-D.
Figura 3: Platystomum mexicanum Raymundo, Martínez-Pineda, A. Tun & R. Valenz.: A-B. ascomas; C. ascas; D. ascosporas.
TIPO: MÉXICO. Quintana Roo, municipio Cozumel, Parque Ecológico Punta Sur, 28°16'48''N, 86°58'44.39''O, 16.VI.2018, T. Raymundo 7671 (holotipo: ENCB!). Mycobank: MB839198.
Differunt per P. compresum (Pers.) Trevis. Ascomata 600-700 × 400-600 mm, ascis bitunicatis, 116-120 × 10-12 μm longis, octosporis, ascosporis 16-18 × 6-8 μm, ellipticis, octonae, 1-3 septatis transversis, 2-4 septatis verticalis orientibus.
Ascoma 600-700 × 400-600 μm, subgloboso, inmerso, papila errumpente a través de la superficie del hospedero, negro, carbonoso con ostiolo central papilado reducido a un poro rodeado por una pared pseudoparenquimatosa, 20-30 μm de grosor, marrón obscuro, formado por células isoadiamétricas a angulares, 5-8 μm de diámetro; pseudoparáfisis 1-1.5 μm de diámetro, ramificadas, embebidas en una matriz gelatinosa; ascas 116-120 × 10-12 μm, cilíndrico-clavadas, bitunicadas, octosporadas, uniseriadas, hialinas, con ápice redondeado y estípite corto; ascosporas 16-18 × 6-8 μm, elipsoides, hialinas cuando inmaduras, ámbar hasta marrón obscuro al madurar, muriformes, 1-3 septos transversales, 2-4 septos verticales, paredes gruesas y lisas, septo central sin constreñir.
Hábitat: crece gregario sobre ramas de Manilkara zapota (Sapotaceae).
Etimología: hace referencia al país de donde se describe.
Distribución: solo se conoce de la localidad tipo.
Notas taxonómicas: se distingue por las esporas muriformes de 16-18 × 6-8 μm, elipsoides, con el septo central sin constreñir y sin una vaina gelatinosa como ocurre en otras especies del género. Otras especies similares son P. compressum (Pers.) Trevis y P. actinidiae Thambugala, Jayasiri, Kaz. Tanaka & K.D. Hyde, aunque se diferencian porque la primera presenta esporas de 17-32.5 × 7-9.5 μm con 5-7 septos tranversales y 1-3 verticales, crece sobre Salix sp. en Hungría e Italia, mientras que la segunda produce esporas de 14-16 × 6-8 μm con tres septos transversales y uno vertical, y crece sobre Actinidia deliciosa C.F. Liang & A.R. Ferguson en Japón.
Macrovalsariaceae
Macrovalsaria megalospora (Mont.) Sivan., Trans. Br. Mycol. Soc. 65(3): 400. 1975.
TIPO: GUAYANA FRANCESA. Cayenne, in corticibus emortiorum circa Cayennae lecta, Leprieur 239 (holotipo: K).
≡ Sphaeria megalospora Mont., Annales des Sciences Naturelles Botanique 14: 324. 1849.
= Amphisphaeria megalospora (Mont.) Sacc., Syll. Fung. (Abellini) 1: 724. 1882.
≡ Melogramma megalospora (Mont.) Cooke, Grevillea 13(68): 109. 1885.
Material examinado: MÉXICO. Quintana Roo, municipio Cozumel, Reserva de la Biosfera Isla Cozumel, Centro de Conservación y Educación Ambiental, 20.I.2018, T. Raymundo 7281 (ENCB).
Distribución en México: Veracruz (Chacón et al., 2014). Se cita por primera vez para Quintana Roo.
Cordieritidaceae
Unguiculariopsis ravenelii (Berk. & M.A. Curtis) W.Y. Zhuang & Korf, Mycotaxon 29: 395. 1987. Fig. 4A.
Figura 4: Leotiomyctes y Pezizomycetes: A. Unguiculariopsis ravenelii (Berk. & M.A. Curtis) W.Y. Zhuang & Korf; B. Cookeina tricholoma (Mont.) Kuntze; C. Phillipsia domingensis (Berk.) Berk. ex Denison.
TIPO: ESTADOS UNIDOS DE AMÉRICA. Carolina del Sur, sobre Rhytidhysteron rufulum (como Patellaria nigrocinnabarina Schwein.), Ravenel 551 (neotipo: CUP-061819).
≡ Peziza ravenelii Berk. & M.A. Curtis, Grevillea 3(28): 152. 1875.
≡ Cenangium ravenelii (Berk. & M.A. Curtis) Sacc., Syll. Fung. (Abellini) 8: 568. 1889.
≡ Encoeliella ravenelii (Berk. & M.A. Curtis) Höhn., Sber. Akad. Wiss. Wien, Math.-naturw. Klasse., Abt. 1 119: 619. 1910.
= Pithyella hamata Chenant., Bull. Soc. Mycol. Fr. 34: 39. 1918.
= Unguiculariopsis ravenelii subsp. hamata (Chenant.) W.Y. Zhuang, Mycotaxon 32(1): 53. 1988.
Material examinado: MÉXICO. Quintana Roo, municipio Cozumel, Reserva de la Biosfera Isla Cozumel, Zona Arqueológica de San Gervasio, Chen-tuk, sobre Rhytidhysteron rufulum, 21.I.2018, T. Raymundo 7334 (ENCB).
Distribución en México: Colima, Jalisco, Oaxaca, Puebla, Tabasco y Tamaulipas (Raymundo et al., 2020). Se cita por primera vez para Quintana Roo.
Sarcoscyphaceae
Cookeina tricholoma (Mont.) Kuntze 1891 Revis. gen. pl. (Leipzig) 2: 849. 1891. Fig. 4B.
TIPO: BRASIL. Río de Janeiro, M. Gaudichaud 44 (lectotipo: PC).
≡ Peziza tricholoma Mont., Annls Sci. Nat., Bot., sér. 2(2): 77. 1834.
= Peziza tricholoma var. minor Mont., Annls Sci. Nat., Bot., sér. 2(2): 77. 1834.
≡ Lachnea tricholoma (Mont.) Pat., in Patouillard & Gaillard, Bull. Soc. mycol. Fr. 4(2): 98. 1888.
≡ Trichoscypha tricholoma (Mont.) Cooke, in Saccardo, Syll. fung. (Abellini) 8: 160. 1889.
≡ Pilocratera tricholoma (Mont.) Henn., Bot. Jb. 17: 9. 1893.
= Pilocratera tricholoma var. celebica Henn., in Warburg, Monsunia 1: 23. 1900.
Material examinado: MÉXICO. Quintana Roo, municipio Cozumel, Reserva de la Biosfera Isla Cozumel, Centro de Conservación y Educación Ambiental, 20.I.2018, A. A. Tun 1 (ENCB); Zona Arqueológica de San Gervasio, Chen-tuk, 21.I.2018, A. A. Tun 8 (ENCB).
Distribución en México: Chiapas (Robles-Porras et al., 2006), Quintana Roo (Guzmán, 2003), Jalisco (Sánchez-Jacome y Guzmán-Dávalos, 2011), Oaxaca, Veracruz (Welden y Guzmán, 1978; Raymundo et al., 2014), Campeche, Jalisco, Oaxaca y San Luis Potosí (Ortega-López et al., 2019). Se registra por primera vez para la Isla Cozumel.
Phillipsia domingensis (Berk.) Berk. ex Denison, Mycologia 61(2): 293. 1969. Fig. 4C.
TIPO: REPUBLICA DOMINICANA. On wood, Salle 42 (holotipo: K 122223)
≡ Peziza domingensis Berk., Ann. Mag. nat. Hist., Ser. 2 9: 201. 1852.
≡ Otidea domingensis (Berk.) Sacc., Syll. fung. (Abellini) 8: 97. 1889.
≡ Molliardiomyces domingensisPaden, Can. J. Bot. 62(3): 214. 1984.
Material examinado: MÉXICO. Quintana Roo, municipio Cozumel, Reserva de la Biosfera Isla Cozumel, Centro de Conservación y Educación Ambiental, 16.VI.2018, A. A. Tun 2 (ENCB); Zona Arqueológica de San Gervasio, Chen-tuk, 17.VI.2018, A. A. Tun 9 (ENCB).
Distribución en México: Chiapas, Hidalgo, Jalisco, Oaxaca y San Luis Potosí (Ortega-López et al., 2019), Estado de México (Guzmán-Dávalos y Guzmán, 1979), Hidalgo (Raymundo et al., 2016), Jalisco (Guzmán y García-Saucedo, 1973; Guzmán-Dávalos et al., 1983), Morelos (Portugal et al., 1985), Oaxaca (Welden y Guzmán, 1978; Raymundo et al., 2014), Quintana Roo (Guzmán, 2003), Tamaulipas (Heredia, 1989) y Veracuz (Welden y Guzmán, 1978). Se registra por primera vez para la Isla Cozumel.
Bertiaceae
Bertia tropicalis Huhndorf, A.N. Mill. & F.A. Fernández, Mycol. Res. 108(12): 1387. 2004. Figs. 5A-D.
Figura 5: Bertia tropicalis Huhndorf, A.N. Mill. & F.A. Fernández: A. ascomas gregarios; B. peritecios inmaduro y maduro; C. peritecios turbinados; D. ascosporas.
TIPO: ESTADOS UNIDOS DE AMÉRICA. Puerto Rico, Caribbean National Forest, El Verde Research Area, 3.X.1995, sobre corteza de ramas superiores de Nectandra turbacensis, S. M. Huhndorf 1707 (holotipo: F).
Peritecios ostiolados, 800-1100 × 700-850 μm, parte basal 450-550 μm de ancho, solitarios a gregarios, forman grupos pequeños o grandes, sobre una base estéril, turbinados, colapsados en especímenes secos, marrón obscuro a negros, superficie tuberculada; peridio 100-120 μm de grosor en los lados, parte apical 150-200 μm de grosor, parte basal 230-250 μm de grosor, textura globular, células angulares a pseudoparenquimáticas, 10-15 μm de diámetro, marrón obscuro, poros de Munk presentes; paráfisis infladas, hialinas, septadas, no ramificadas, 13.6-16 μm de diámetro; ascas 200-250 × 14-15 μm, cilíndricas a clavadas, base largamente estipitada, 100-135 μm, octosporadas, biseriadas; ascosporas 22-37 × 5-10 μm, cilíndricas, curvadas en la madurez, geniculadas, hialinas, unicelulares cuando jóvenes, bicelulares cuando maduras, septo central, lisas, paredes delgadas.
Hábitat: crece sobre madera descortezada en descomposición en bosque tropical caducifolio.
Material examinado: MÉXICO. Quintana Roo, municipio Cozumel, Reserva de la Biosfera Isla Cozumel, Centro de Conservación y Educación Ambiental, 20.I.2018, T. Raymundo 7286 (ENCB); loc. cit., R. Valenzuela 17938 (ENCB).
Distribución: se ha descrito de Costa Rica, Estados Unidos de América (Puerto Rico), Guyana Francesa, Jamaica y Panamá (Huhndorf et al., 2004), Costa Rica (Chaverri et al., 2011a). Se cita por primera vez para México.
Notas taxonómicas: esta especie se caracteriza por el tamaño, forma y color de sus ascosporas y la presencia de paráfisis infladas, septadas y no ramificadas. Se separa de Bertia dydyma (Speg.) Mugambi & Huhndorf y B. multiseptata (Sivan.) Huhndorf, A.N. Mill. & F.A. Fernández por que sus ascosporas son de tres o más septos y de color marrón, a diferencia de B. tropicalis que presenta las ascosporas con un septo y hialinas. Otra especie afín por sus ascosporas hialinas y geniculadas es Bertia triseptata Mugambi & Huhndorf, pero tiene también tres septos en éstas. Bertia gigantispora (Nannf.) Mugambi & Huhndorf y B. moriformis (Tode) De Not. con ascosporas hialinas y un septo, se separan de B. tropicalis por las esporas rectas y de mayor tamaño. Finalmente, dos especies afines a B. tropicalis por la similitud en tamaño, forma y color de las ascosporas son B. hainanensis Lar.N. Vassiljeva, Hay X. Ma, Chernyshev & S.L. Stephenson y B. ngongensis Mugambi & Huhndorf, pero la primera se separa por las paráfisis filamentosas y ascosporas muy angostas, 4.8-5.5 μm de diámetro y 5-10 μm en B. tropicalis y la segunda por tener dos capas diferenciadas en el peridio del peritecio y paráfisis ligeramente infladas y ramificadas (Mugambi y Huhndorf, 2010; Vassiljeva et al., 2015).
Bionectriaceae
Bionectria ochroleuca (Schwein.) Schroers & Samuels, Z. Mykol. 63(2): 151. 1997. Fig. 6A.
Figura 6: Sordariomycetes: A. Bionectria ochroleuca (Schwein.) Schroers & Samuels; B. Peroneutypa scoparia (Schwein.) Carmarán & A.I. Romero; C. Annulohypoxylon nitens (Ces.) Y.M. Ju, J.D. Rogers & H.M. Hsieh; D. A. purpureonitens (Y.M. Ju & J.D. Rogers) Y.M. Ju, J.D. Rogers & H.M. Hsieh; E. Daldinia cuprea Starbäck; F. D. eschscholtzii (Ehrenb.) Rehm.
TIPO: ESTADOS UNIDOS DE AMÉRICA. North Carolina, Salem, on bark, 1821, L. D. Schweinitz 1418 (holotipo: PH, Collins Set 169; lectotipo: NY).
≡ Sphaeria ochroleuca Schwein., Trans. Am. phil. Soc., New Series 4(2): 204. 1834.
≡ Nectria ochroleuca (Schwein.) Berk., Grevillea 4(29): 16. 1875.
= Nectria vulgaris Speg., Anal. Soc. cient. Argent. 12(5): 210. 1881.
= Verticillium tubercularioides Speg. (as ‘tubercularioide’), Anal. Soc. cient. Argent. 12(5): 210. 1881.
≡ Cucurbitaria ochroleuca (Schwein.) Kuntze, Revis. gen. pl. (Leipzig) 3(3): 461. 1898.
= Cucurbitaria vulgaris (Speg.) Kuntze, Revis. gen. pl. (Leipzig) 3(3): 460. 1898.
≡ Creonectria ochroleuca (Schwein.) Seaver, Mycologia 1(5): 190. 1909.
= Nectria ochroleuca var. longispora Wollenw., Angew. Bot. 8: 184. 1926.
= Polystigma vulgare (Speg.) Gola, L’Erbario Micologico di P.A. Saccardo: 159. 1930.
= Nectria gliocladioides Smalley & H.N. Hansen, Mycologia 49(4): 533. 1957.
Material examinado: MÉXICO. Quintana Roo, municipio Cozumel, Reserva de la Biosfera Isla Cozumel, Centro de Conservación y Educación Ambiental, 20.I.2018, T. Raymundo 7292 (ENCB); Zona Arqueológica de San Gervasio, Chen-tuk, 17.VI.2018, T. Raymundo 7669 (ENCB); Parque Ecológico Punta Sur, 14.X.2019, T. Raymundo 8307 (ENCB).
Distribución en México: Hidalgo (Raymundo et al., 2017b). Se cita por primera vez para Quintana Roo.
Hypocreaceae
Hypocreopsis macrostoma (Berk. & M.A. Curtis) E. Müll. in Müller & von Arx, Beitr. Kryptfl. Schweiz 11(2): 650. 1962.
TIPO: CUBA. En corteza, C. Wright 517 (holotipo: K).
≡ Nectria macrostoma Berk. & M.A. Curtis, in Berkeley, J. Linn. Soc., Bot. 10(46): 378. 1869.
= Hypocrea corticioides Berk. & Broome, J. Linn. Soc., Bot. 14(74): 111. 1875.
≡ Lasionectria macrostroma (Berk. & M.A. Curtis) Cooke, Grevillea 12(64): 112. 1884.
≡ Cucurbitaria macrostoma (Berk. & M.A. Curtis) Kuntze, Revis. Gen. Pl. (Leipzig) 3(3): 461. 1898.
= Stilbum subiculosum Pat., Bull. Soc. mycol. Fr. 20(3): 138. 1904.
≡ Stilbocrea macrostoma (Berk. & M.A. Curtis) Höhn., Sber. Akad. Wiss. Wien, Math.-naturw. Kl., Abt. 1 118: 1185. 1909.
= Clintoniella corticioides (Berk. & Broome) Petch, Ann. R. bot. Gdns Peradeniya 7(2): 134. 1920.
Material examinado: MÉXICO. Quintana Roo, municipio Cozumel, Reserva de la Biosfera Isla Cozumel, Centro de Conservación y Educación Ambiental, 20.I.2018, T. Raymundo 7313 (ENCB).
Distribución en México: Oaxaca (Raymundo et al., 2014). Se cita por primera vez para Quintana Roo.
Diatrypaceae
Eutypella portoricensis (Petr.) Rappaz, Mycol. Helv. 2(3): 543. 1987.
TIPO: PUERTO RICO. Municipio Mayagüez, en corteza, 17.XII.1915, B. Fink 930 (holotipo: W 00268).
≡ Peroneutypa portoricensis Petr., Annls mycol. 21(3-4): 306. 1923.
Material examinado: MÉXICO. Quintana Roo, municipio Cozumel, Reserva de la Biosfera Isla Cozumel, Parque Ecológico Punta Sur, 16.VI.2018, T. Raymundo 7665 (ENCB); Zona Arqueológica de San Gervasio, Chen-tuk, 17.VI.2018, T. Raymundo 7675 (ENCB), 7680 (ENCB).
Distribución en México: Oaxaca (Raymundo et al., 2014). Se cita por primera vez para Quintana Roo.
Peroneutypa scoparia (Schwein.) Carmarán & A.I. Romero, Fungal Diversity 23: 84. 2006. Fig. 6B.
TIPO: ESTADOS UNIDOS DE AMÉRICA. Carolina del Norte, en corteza de Juglans nigra L. (Juglandaceae), L. D. Schweinitz 101 (holotipo: PH).
≡ Sphaeria scoparia Schwein., Schr. naturf. Ges. Leipzig 1: 37. 1822.
≡ Valsa scoparia (Schwein.) M.A. Curtis, Geol. Nat. Hist. Surv. N. Carol. 3: 141. 1867.
= Valsa heteracantha Sacc., Atti Soc. Veneto-Trent. Sci. Nat. 2(1): 177. 1873.
= Eutypa heteracantha (Sacc.) Sacc., Syll. fung. (Abellini) 1: 177. 1882.
≡ Eutypella scoparia (Schwein.) Ellis & Everh., N. Amer. Pyren.: 495. 1892.
= Engizostoma heteracanthum (Sacc.) Kuntze, Revis. gen. pl. (Leipzig) 3(3): 474. 1898.
= Peroneutypa heteracantha (Sacc.) Berl., Icon. fung. (Abellini) 3(3-4): 81. 1902.
≡ Peroneutypella scoparia (Schwein.) Berl., Icon. fung. (Abellini) 3(3-4): 84. 1902.
= Peroneutypella heteracantha (Sacc.) Rehm, Annls mycol. 4(5): 409. 1906.
≡ Eutypa scoparia (Schwein.) L.C. Tiffany & J.C. Gilman, Iowa St. Coll. J. Sci. 40: 124. 1965.
Material examinado: MÉXICO. Quintana Roo, municipio Cozumel, Reserva de la Biosfera Isla Cozumel, Parque Ecológico Punta Sur, 16.VI.2018, T. Raymundo 7658 (ENCB).
Distribución en México: Morelos, Nuevo León, San Luis Potosí, Tamaulipas (Chacón, 2003), Oaxaca (Raymundo et al., 2014) y Sonora (Raymundo et al., 2017a). Se cita por primera vez para Quintana Roo.
Graphostromataceae
Biscogniauxia capnodes (Berk.) Y.M. Ju & J.D. Rogers, in Ju, Rogers, San Martín & Granmo, Mycotaxon 66: 23. 1998.
TIPO: AUSTRALIA. Swan River, en madera descortezada, Drummond 218 (holotipo: K).
≡ Sphaeria capnodes Berk., London J. Bot. 4: 72. 1845.
= Sphaeria pachyloma Lév. (as ‘pachiloma’), Annals Sci. Nat., Bot., sér. 3 5: 259. 1846.
= Diatrype rumpens Cooke, J. Linn. Soc., Bot. 17(99): 143. 1878.
= Hypoxylon pachyloma (Lév.) Cooke, Anal. Soc. cient. argent. 12: 132. 1881.
≡ Diatrype capnodes (Berk.) Sacc., Syll. fung. (Abellini) 1: 298. 1882.
= Diatrype pachyloma (Lév.) Sacc., Syll. fung. (Abellini) 1: 200. 1882.
≡ Anthostoma capnodes (Berk.) Sacc., Syll. fung. (Abellini) 1: 298. 1882.
= Anthostoma rumpens (Cooke) Sacc., Syll. fung. (Abellini) 1: 306. 1882.
= Nummularia australis Cooke, Grevillea 11(60): 148. 1883.
= Nummularia pachyloma (Lév.) Cooke, Grevillea 12(61): 8. 1883.
= Nummularia rumpens (Cooke) Cooke, Grevillea 12(61): 8. 1883.
≡ Hypoxylon capnodes (Berk.) Berk. & Broome ex Cooke, Grevillea 11(60): 133. 1883.
= Hypoxylon ramosum Schwein. ex Cooke, Grevillea 11(60): 132. 1883.
= Nummularia mauritanica Berk. & Cooke, in Cooke, Grevillea 12(61): 6. 1883.
= Hypoxylon intermedium Speg., Anal. Soc. cient. argent. 18(6): 274. 1884.
= Hypoxylon pseudopachyloma Speg., Boln Acad. nac. Cienc. Córdoba 11(2): 203. 1888.
= Biscogniauxia australis (Cooke) Kuntze, Revis. gen. pl. (Leipzig) 2: 398. 1891.
= Biscogniauxia rumpens (Cooke) Kuntze, Revis. gen. pl. (Leipzig) 2: 398. 1891.
= Nummularia lataniaecola Rehm & Bref., in Brefeld, Unters. Gesammtgeb. Mykol. (Liepzig) 10: 255. 1891.
= Biscogniauxia nummularia var. merrillii (Bres.) Van der Gucht, Mycotaxon 45: 267. 1992.
= Auerswaldia maxima Massee, Bull. Misc. Inf., Kew 169-171: 166. 1901.
= Nummularia tenuis Starbäck, Ark. Bot. 5(7): 31. 1905.
= Nummularia asarcodes Theiss., Annls mycol. 6(4): 349. 1908.
= Nummularia theissenii Syd. & P. Syd., Annls mycol. 7(4): 344. 1909.
= Nummularia asarcodes f. griseoatra Theiss., Decades Fungorum Brasiliensium: 110. 1910.
= Nummularia starbaeckii Sacc. & Traverso, Syll. fung. (Abellini) 20: 203. 1911.
= Nummularia maxima (Massee) Theiss. & Syd., Annls mycol. 12(2): 179. 1914.
= Nummularia merrillii Bres., Hedwigia 56(4, 5): 307. 1915.
= Nummularia lianae Rehm, Leafl. of Philipp. Bot. 8(118): 2959. 1916.
= Nummularia alabatensis H.S. Yates, Philipp. J. Sci., C, Bot. 12(6): 378. 1917.
= Hypoxylon porteri Speg., Boln Acad. nac. Cienc. Córdoba 25: 54. 1921.
= Hypoxylon rumpens (Cooke) J.H. Mill. ex Teng, Contr. Biol. Lab. Sci. Soc. China, Bot. Ser. 7: 98. 1932.
= Hypoxylon asarcodes (Theiss.) J.H. Mill. ex Teng, Contr. to Our Knowledge of the Higher Fungi of China: 127. 1939.
= Hypoxylon nummularium var. merrillii (Bres.) J.H. Mill. ex Dennis, Kew Bull. 14(3): 450. 1960.
= Hypoxylon nummularium var. australe (Cooke) J.H. Mill., Śluzowce monogr. (Paryz): 123. 1961.
= Hypoxylon nummularium var. pseudopachyloma (Speg.) J.H. Mill., Monogr. World spec. Hypoxylon: 125. 1961.
= Hypoxylon nummularium var. rumpens (Cooke) J.H. Mill., Monogr. World spec. Hypoxylon: 123. 1961.
= Hypoxylon nummularium var. theissenii (Syd. & P. Syd.) J.H. Mill., Monogr. World spec. Hypoxylon: 124. 1961.
= Numulariola australis (Cooke) P.M.D. Martin, Jl S. Afr. Bot. 35: 293. 1969.
= Numulariola merrillii(Bres.) P.M.D. Martin, Jl S. Afr. Bot. 35: 303. 1969.
= Numulariola pseudopachyloma(Speg.) P.M.D. Martin, Jl S. Afr. Bot. 35: 306. 1969.
= Numulariola rumpens(Cooke) P.M.D. Martin, Jl S. Afr. Bot. 35: 293. 1969.
= Numulariola theissenii (Syd. & P. Syd.) P.M.D. Martin, Jl S. Afr. Bot. 35: 293. 1969.
= Numulariola australis (Cooke) P.M.D. Martin, Jl S. Afr. Bot. 42(1): 76. 1976.
= Numulariola rumpens (Cooke) P.M.D. Martin, Jl S. Afr. Bot. 42(1): 78. 1976.
= Numulariola theissenii (Syd. & P. Syd.) P.M.D. Martin, Jl S. Afr. Bot. 42(1): 79. 1976.
= Biscogniauxia nummularia var. pseudopachyloma (Speg.) Whalley, in Whalley, Hywel-Jones, Jones & Whalley, Sydowia 47(1): 73. 1995.
= Biscogniauxia capnodes var. limonispora Y.M. Ju & J.D. Rogers (as ‘limoniispora’), in Ju, Rogers, San Martín & Granmo, Mycotaxon 66: 26. 1998.
= Biscogniauxia capnodes var. rumpens(Cooke) Y.M. Ju & J.D. Rogers, in Ju, Rogers, San Martín & Granmo, Mycotaxon 66: 27. 1998.
= Biscogniauxia capnodes var. theissenii (Syd. & P. Syd.) Y.M. Ju & J.D. Rogers, in Ju, Rogers, San Martín & Granmo, Mycotaxon 66: 28. 1998.
Material examinado: MÉXICO. Quintana Roo, municipio Cozumel, Reserva de la Biosfera Isla Cozumel, Zona Arqueológica de San Gervasio, Chen-tuk, 17.VI.2018, T. Raymundo 7692 (ENCB).
Distribución en México: Quintana Roo (San Martín y Rogers, 1993 como Biscogniauxia nummularia var. merrillii), Nuevo León, Tamaulipas (Ju y Rogers, 1996) y Oaxaca (Raymundo et al., 2014). Se cita por primera vez para la Isla Cozumel.
Camillea coroniformis J.D. Rogers, F. San Martín & Y.M. Ju, Sydowia 54(1): 87. 2002.
TIPO: COSTA RICA. Lomas de Barbudal, en madera muerta de Citrus sp., 14.VII.2001, F. San Martin y J. D. Rogers 23 (holotipo: INB 3370608).
Material examinado: MÉXICO. Quintana Roo, municipio Cozumel, Reserva de la Biosfera Isla Cozumel, Centro de Conservación y Educación Ambiental, 20.I.2018, T. Raymundo 7297 (ENCB).
Distribución en México: Oaxaca (Raymundo et al., 2014). Se cita por primera vez para Quintana Roo.
Hypoxylaceae
Annulohypoxylon nitens (Ces.) Y.M. Ju, J.D. Rogers & H.M. Hsieh, Mycologia 97(4): 861. 2005.Fig. 6C.
TIPO: MALASIA. Borneo, Sarawak, sobre corteza, Beccari 10 (holotipo: RO).
≡ Rosellinia nitens Ces., Atti Accad. Sci. fis. mat. Napoli 5(21): 13. 1872.
= Hypoxylon chalybaeum Berk. & Broome, J. Linn. Soc., Bot. 14(74): 121. 1875.
= Hypoxylon chalybaeum var. congestum Ces. (as ‘congesta’), Atti Accad. Sci. fis. mat. Napoli 8(3): 17. 1879.
= Hypoxylon chalybaeum var. minor Ces., Atti Accad. Sci. fis. mat. Napoli 8(3): 17. 1879.
≡ Hypoxylon nitens (Ces.) Y.M. Ju & J.D. Rogers, Mycol. Mem. 20: 220. 1996.
Material examinado: MÉXICO. Quintana Roo, municipio Cozumel, Reserva de la Biosfera Isla Cozumel, Centro de Conservación y Educación Ambiental, 20.I.2018, A. Cobos-Villagrán 923 (ENCB), 924 (ENCB), 926 (ENCB); loc. cit., T. Raymundo 7303 (ENCB), 7311 (ENCB); loc cit., R. Valenzuela 17943 (ENCB), 17962 (ENCB); Zona Arqueológica de San Gervasio, Chen-tuk, 21.I.2018, T. Raymundo 7328 (ENCB), 7329 (ENCB), 7333 (ENCB); loc. cit., R. Valenzuela 17983 (ENCB), 18002 (ENCB), 18016 (ENCB).
Distribución en México: Chiapas, Tamaulipas (San Martín et al., 1999), Oaxaca (Raymundo et al., 2014) y Quintana Roo (García-Martínez et al., 2021b).
Annulohypoxylon purpureonitens (Y.M. Ju & J.D. Rogers) Y.M. Ju, J.D. Rogers & H.M. Hsieh, Mycologia 97(4): 861. 2005. Fig. 6D.
TIPO: BRASIL. Sierra Araca, 10.III.1984, sobre corteza, G. J. Samuels 808 (holotipo: NY).
≡ Hypoxylon purpureonitens Y.M. Ju & J.D. Rogers, Mycol. Mem. 20: 224. 1996.
Material examinado: MÉXICO. Quintana Roo, municipio Cozumel, Reserva de la Biosfera Isla Cozumel, Centro de Conservación y Educación Ambiental, 20.I.2018, T. Raymundo 7310 (ENCB); Zona Arqueológica de San Gervasio, Chen-tuk, 21.I.2018, T. Raymundo 7330 (ENCB).
Distribución en México: Chiapas (San Martín et al., 1999). Se cita por primera vez para Quintana Roo.
Daldinia cuprea Starbäck, Bih. K. svenska VetenskAkad. Handl., Afd. 3 27(9): 5. 1901. Fig. 6E.
TIPO: PARAGUAY. Parauari, Cerro Negro, 8.VIII.1893, G. A. Malme MBT177383 (lectotipo: S-F11857, isolectotipo: S-F11856).
= Daldinia granulosa Speg., Anal. Mus. nac. B. Aires 19: 345. 1909.
Material examinado: MÉXICO. Quintana Roo, municipio Cozumel, Reserva de la Biosfera Isla Cozumel, Centro de Conservación y Educación Ambiental, 20.I.2018, R. Valenzuela 17979 (ENCB).
Distribución en México: Durango, Nuevo León, Oaxaca, Querétaro, Quintana Roo, San Luis Potosí, Sinaloa, Sonora, Tabasco y Veracruz (Barbosa-Resendiz et al., 2020). Se cita por primera vez para la Isla de Cozumel.
Daldinia eschscholtzii (Ehrenb.) Rehm, Ann. Mycol. 2(2): 175. 1904. Fig. 6F.
TIPO: FILIPINAS. Isla Luzon, latitud 14.5°, cerca de la base del tronco, espécimen no existente (lectotipo: fig. VIII en Ehrenberg, 1820). FILIPINAS. La Laguna Prov., Isla Luzon, Mt. Makiling Peak, 1.IV.2001, T. H. Quimio y M. M. Baldovino s.n. (epitipo: K; ex CALP 11206; GenBank: HE590883).
≡ Sphaeria eschscholtzii Ehrenb., Fung. Chamisso Coll., pl. 18, fig. 8. 1820.
≡ Sphaeria concentrica var. eschscholtzii (Ehrenb.) Fr. Syst. mycol. 2(2):331. 1823
= Daldinia luzonensis Rehm, Philipp. J. Sci. Bot. 8: 260. 1913.
Material examinado: MÉXICO. Quintana Roo, municipio Cozumel, Zona Arqueológica de San Gervasio, Chen-tuk, 21.I.2018, A. Cobos-Villagrán 934 (ENCB); Reserva de la Biosfera Isla Cozumel, Centro de Conservación y Educación Ambiental, 20.I.2018, T. Raymundo 7284 (ENCB); loc. cit., R. Valenzuela 17980 (ENCB).
Distribución en México: Campeche, Chiapas, Colima, Estado de México, Guerrero, Jalisco, Morelos, Nayarit, Nuevo León, Oaxaca, Quintana Roo, San Luis Potosí, Sinaloa, Sonora, Tabasco, Tamaulipas, Veracruz y Zacatecas (Barbosa-Reséndiz et al., 2020).
Hypoxylon cinnabarinum (Henn.) Henn., Ann. Mus. Congo Belge, Bot., Sér. 5 2(1): 6. 1907. Fig. 7A.
Figura 7: Sordariomycetes: A. Hypoxylon cinnabarinum (Henn.) Henn.; B. H. duranii Rogers; C. H. erythrostroma J.H. Mill.; D. H. haematostroma Mont.; E. H. investiens (Schwein.) M.A. Curtis.
TIPO: BRASIL. Santa Catarina, prov. de Blumenau, sobre corteza, s.f., A. Möller s.n. (lectotipo: S).
≡ Nummularia cinnabarina Henn., Hedwigia 36(4): 227. 1897.
= Hypoxylon rubiginosum var. tropicum J.H. Mill., Monogr. World spec. Hypoxylon: 31. 1961.
Material examinado: MÉXICO. Quintana Roo, municipio Cozumel, Reserva de la Biosfera Isla Cozumel, Centro de Conservación y Educación Ambiental, 20.I.2018, R. Valenzuela 17294 (ENCB); Zona Arqueológica de San Gervasio, Chen-tuk, 19.I.2018, R. Valenzuela 17944 (ENCB).
Distribución en México: Tabasco (Ju y Rogers, 1996), Jalisco (Guzmán-Dávalos et al., 1983), Quintana Roo, Sonora y Tamaulipas (Reyes et al., 2020).
Hypoxylon duraniiRogers, Mycotaxon 23: 429. 1985. Fig. 7B.
TIPO: MÉXICO. Península de Yucatán, Yucatán, ruinas de Chichén Itzá, cerca de la Autopista 180, sobre madera de leguminosa, XI.1984, R. Duran s.n. (holotipo: WSP 67597).
Material examinado: MÉXICO. Quintana Roo, municipio Cozumel, Reserva de la Biosfera Isla Cozumel, Centro de Conservación y Educación Ambiental, 20.I.2018, P. Reyes 140 (ENCB).
Distribución en México: Yucatán (Rogers, 1985) y Quintana Roo (San Martín et al., 1999). Se registra por primera vez para la Isla Cozumel.
Hypoxylon erythrostroma J.H. Mill., Mycologia 25(4): 323. 1933. Fig. 7C.
TIPO: ESTADOS UNIDOS DE AMÉRICA. Florida, Daytona, sobre árbol deciduo, I.1898, R. Thaxter 2 (holotipo: FLAS; isotipo: GAM2374).
= Hypoxylon gillesii J.D. Rogers & Cand., Mycotaxon 15: 507. 1982.
Material examinado: MÉXICO. Quintana Roo, municipio Cozumel, Reserva de la Biosfera Isla Cozumel, Centro de Conservación y Educación Ambiental, 20.I.2018, R. Valenzuela 17971 (ENCB).
Distribución en México: Chiapas, Quintana Roo, Tamaulipas, Veracruz (San Martín et al., 1999), Quintana Roo y Sonora (Reyes et al., 2020).
Hypoxylon haematostroma Mont., in Sagra, Annls. Sci. Nat., Bot., sér. 2 17: 124. 1842. Fig. 7D.
TIPO: CUBA. Sobre madera, s.f., R. de la Sagra s.n. (holotipo: BPI55132, isotipo: K).
= Hypoxylon vividum Berk. & Broome, J. Linn. Soc., Bot. 14(74): 122. 1873.
= Hypoxylon haematites Lév. ex Cooke, Grevillea 11(60): 133. 1883.
= Hypoxylon veracrucis Berk. & Cooke, Grevillea 11(60): 129. 1883.
= Hypoxylon lucidum Ellis & Everh., Bull. Lab. Nat. Hist. Iowa State Univ. 4: 72. 1896.
= Hypoxylon stjanianum Ferd. & Winge, Bot. Tidsskr. 29: 14. 1908.
Material examinado: MÉXICO. Quintana Roo, municipio Cozumel, Reserva de la Biosfera Isla Cozumel, Centro de Conservación y Educación Ambiental, 20.I.2018, T. Raymundo 7294 (ENCB), 7325 (ENCB); loc. cit., R. Valenzuela 17294 (ENCB); Zona Arqueológica de San Gervasio, Chen-tuk, 19.I.2018, R. Valenzuela 17977 (ENCB), 17994 (ENCB).
Distribución en México: Campeche, Chiapas, Morelos, Oaxaca, Quintana Roo, Tamaulipas, Veracruz, Yucatán (Guzmán, 1983; Ju y Rogers, 1996; San Martín et al., 1999; Medel, 2002; Raymundo et al., 2014), Jalisco y Quintana Roo (Reyes et al., 2020).
Hypoxylon investiens (Schwein.) M.A. Curtis, Geol. Nat. Hist. Surv. N. Carol., Pt 3: 140. 1867. Fig. 7E.
TIPO: ESTADOS UNIDOS DE AMÉRICA. Pennsylvania, Northampton County, Bethlehem, sobremadera descortezada, s.f., L.D. Schweinitz 1210 (holotipo: PH). Carolina del Norte, Salem, s.f., Collins 35 (isotipo: PH).
≡ Sphaeria investiens Schwein., Trans. Am. phil. Soc., New Series 4(2): 193. 1832.
= Hypoxylon concurrens Berk. & M.A. Curtis, in Berkeley, Grevillea 4(31): 93. 1876.
= Rosellinia bakeri Ellis, Torreya 5: 87. 1905.
= Hypoxylon investiens f. bakeri (Ellis) J.H. Mill. ex Dennis, Kew Bull. 15: 450. 1962.
= Hypoxylon microsporum A. Pande (as ‘microspora’), Bull. bot. Surv. India 15: 8. 1973.
= Hypoxylon investiens var. magnisporum Hladki & A.I. Romero, Darwiniana 47(2): 283. 2009.
Material examinado: MÉXICO. Quintana Roo, municipio Cozumel, Reserva de la Biosfera Isla Cozumel, Centro de Conservación y Educación Ambiental, R. Valenzuela 17959 (ENCB); Zona Arqueológica de San Gervasio, Chen-tuk, 20.I.2018, T. Raymundo 7295 (ENCB); loc. cit., P. Reyes 148 (ENCB); loc. cit., 17.VI.2018, R. Valenzuela 18420 (ENCB).
Distribución en México: Tabasco, Tamaulipas, Veracruz (San Martín et al., 1999; Ávalos-Lázaro et al., 2018), Quintana Roo y Sonora (Reyes et al., 2020).
Hypoxylon jaklitschii Sir & Kuhnert, Fungal Diversity 71: 173. 2015. Fig. 8A.
Figura 8: Sordariomycetes: A. Hypoxylon jaklitschii Sir & Kuhnert; B. H. lenormandii Berk. & M.A. Curtis; C. H. perforatum (Schwein.) Fr. D. H. rickii Y.M. Ju & J.D. Rogers; E. H. subgilvum Berk. & Broome.
TIPO: SRI LANKA. Central Province, Sigiriya, sobre madera de árbol de hoja ancha, 16.I.2013, W. Jaklitsch JF13037 (holotipo: MUCL, ex-type cultures CBS138916 & MUCL55383; GenBank Acc. No: ITS-KM610290, ß-tubulin-KM610304).
Material examinado: MÉXICO. Quintana Roo, municipio Cozumel, Reserva de la Biosfera Isla Cozumel, Zona Arqueológica de San Gervasio, Chen-tuk, 21.I.2018, R. Valenzuela 17982 (ENCB).
Distribución en México: Jalisco, Quintana Roo y Tamaulipas (Reyes et al., 2020).
Hypoxylon lenormandii Berk. & M.A. Curtis, J. Linn. Soc., Bot. 10(46): 385. 1868. Fig. 8B.
TIPO: CUBA. Sobre madera descortezada, s.f., C. Wright 486 (holotipo: K).
= Sphaeria subaenea Berk. & M. A. Curtis apud Berk., J. Linn. Soc., Bot. 10: 387. 360. 1869.
= Hypoxylon oodes Berk. & Broome, J. Linn. Soc. Bot. 14: 122. 1873.
= Rosellinia subaenea (Berk. & M. A. Curtis) Sacc., Syll. Fung. I, p. 256. 1882.
= Hypoxylon subvinosum Speg., Anal. Soc. Cient. Argent. 18: 269. 1884.
= Hypoxylon subaeneum (Berk. & M. A. Curtis) Speg., Anal. Soc. Cient. Argent. 26: 32. 1888.
= Rosellinia melaleuca Ellis & Everh. Apud C. L. Smith, Bull. Lowa Univ. Lab. Nat. Hist. 2: 402. 1893.
= Kretzschmaria stilbophora Rehm, Ann. Mycol. 5: 526.1907.
= Rosellinia metachroa Ferd. & Winge, Bot. Tidsskr. 29: 16. 1908.
= Hypoxylon riograndense Rehm, Ann. Mycol. 7: 154. 1909.
= Rosellinia pulchella Syd. & P. Syd. apud Wildeman, Fl. Bas-Moyen-Congo III: 7. 1909.
= Hypoxylon fulvoochraceum Rehm, Philipp. J. Sci. 8. 188. 1913.
Material examinado: MÉXICO. Quintana Roo, municipio Cozumel, Reserva de la Biosfera Isla Cozumel, Centro de Conservación y Educación Ambiental, 20.I.2018, R. Valenzuela 17957 (ENCB), 18017 (ENCB); Parque Ecológico Punta Sur, 16.VI.2018, T. Raymundo 7656 (ENCB); loc. cit., R. Valenzuela 18359 (ENCB); loc. cit., 14.X.2019, T. Raymundo 8319 (ENCB); Zona Arqueológica de San Gervasio, Chen-tuk, R. Valenzuela 17790 (ENCB).
Distribución en México: Campeche, Chiapas, Jalisco, Nayarit, Nuevo León, Oaxaca, Quintana Roo, Sinaloa, Sonora, Tamaulipas y Yucatán (Martin, 1969; Ju y Rogers, 1996; San Martín et al., 1999; Medel, 2002; Raymundo et al., 2014, 2017a; Reyes et al., 2020).
Hypoxylon perforatum (Schwein.) Fr., Summa veg. Scand., Sectio Post.: 384. 1849. Fig. 8C.
TIPO: ESTADOS UNIDOS DE AMÉRICA. Pennsylvania, Northampton County, Bethlehem, sobre corteza, s.f., L. D. Schweinitz 1194 (lectotipo: PH, designado por Ju y Rogers, 1996).
≡ Sphaeria perforata Schwein., Schr. naturf. Ges. Leipzig 1:31. 1822.
= Sphaeria durissima Schwein., Schr. naturf. Ges. Leipzig 1:32. 1822.
= Sphaeria catalpa Schwein., Trans. Am. phil. Soc., New Series 4(2): 193. 1832.
= Sphaeria decorticata Schwein., Trans. Am. phil. Soc., New Series 4(2): 191. 1832.
= Sphaeria leucostigma Lév., Annls Sci. Nat., Bot., sér. 3 9:142. 1848.
= Hypoxylon decorticatum M.A. Curtis, Geol. Nat. Hist. Surv. N. Carol., Pt 3: 140. 1867.
= Hypoxylon catalpa (Schwein.) Sacc., Syll. fung. (Abellini) 1:392. 1882.
= Hypoxylon durissimum (Schwein.) Sacc., Syll. fung. (Abellini) 1: 378. 1882.
= Hypoxylon leucostigma (Lev.) Sacc., Syll. fung. (Abellini) 1:367. 1882.
= Hypoxylon luridum Nitschke, Pyrenomyc. Germ. 1: 31.1867.
= Hypoxylon plumbeum Speg., Anal. Soc. Cient. Argent.18(6): 270. 1884.
= Hypoxylon rubiginosum var. microcarpum Speg., Anales Mus. Nac. B. Aires, Ser. 3 17(10): 120. 1908.
≡ Hypoxylon rubiginosum var. perforatum (Schwein.) L.E. Petrini, Mycol. Helv. 1(7): 531. 1986.
Material examinado: MÉXICO. Quintana Roo, municipio Cozumel, Reserva de la Biosfera Isla de Cozumel, Centro de Conservación y Educación Ambiental, 20.I.2018, P. Reyes 141 (ENCB), 146 (ENCB); loc. cit., R. Valenzuela 17942 (ENCB); Zona Arqueológica de San Gervasio, Chen-tuk, 19.I.2018, P. Reyes 139 (ENCB).
Distribución en México: Nuevo León (San Martín et al., 1999), Jalisco y Quintana Roo (Reyes et al., 2020).
Hypoxylon rickii Y.M. Ju & J.D. Rogers, Mycol. Mem. 20: 174. 1996. Fig. 8D.
TIPO: BRASIL. Sobre madera descortezada, s.f., J. Rick 303 (holotipo: NY).
Material examinado: MÉXICO. Quintana Roo, municipio Cozumel, Reserva de la Biosfera Isla Cozumel, Centro de Conservación y Educación Ambiental, 20.I.2018, R. Valenzuela 18012 (ENCB); Zona Arqueológica de San Gervasio, Chen-tuk, 21.I.2018, P. Reyes 149 (ENCB); loc. cit., 19.I.2018, R. Valenzuela 17970 (ENCB).
Distribución en México: Oaxaca (San Martín et al., 1999), Quintana Roo, Sonora y Tamaulipas (Reyes et al., 2020).
Hypoxylon subgilvum Berk. & Broome, J. Linn. Soc., Bot. 14(74): 120. 1873. Fig. 8E.
TIPO: SRI LANKA. Central Province, sobre corteza, XII.1868, G. H. K. Thwaite 1087 (holotipo: K).
= Hypoxylon caaguazu Speg., Anal. Soc. Cient. Argent. 18(6): 275. 1884.
= Hypoxylon hypomiltum var. microsporum Y. Abe, Trans. Mycol. Soc. Japan 27: 55. 1986.
= Hypoxylon subgilvum var. microsporum (Y. Abe) Y.M. Ju & J.D. Rogers, Mycol. Mem. 20: 188. 1996.
Material examinado: MÉXICO. Quintana Roo, municipio Cozumel, Reserva de la Biosfera Isla Cozumel, Centro de Conservación y Educación Ambiental, 20.I.2018, T. Raymundo 7307 (ENCB); Zona Arqueológica de San Gervasio, Chen-tuk, 19.I.2018, T. Raymundo 7334 (ENCB); loc. cit., R. Valenzuela 18011 (ENCB).
Distribución en México: Campeche, Tamaulipas (San Martín et al., 1999), Jalisco y Quintana Roo (Reyes et al., 2020; García-Martínez et al., 2021b).
Hypoxylon sublimbatum (Durieu & Mont.) P. M. D. Martin, Jl S. Afr. Bot. 42(1): 74. 1976.
TIPO: ARGELIA. Cerca de Argel, en columna de Ampelodesmos mauritanicus (Poir.) T. Durand & Schinz, Durieu & Montagne 36 (holotipo: K).
≡ Sphaeria sublimbata Durieu & Mont., in Durieu, Expl. Sci. Alg., Fl. Algér. 1(13): 498. 1849.
≡ Rosellinia sublimbata (Durieu & Mont.) Pass., in Thümen, Inst. Coimbra 294: 33. 1879.
≡ Anthostomella sublimbata (Durieu & Mont.) Speg., Revta Fac. Agron. Vet. Univ. nac. La Plata, Ser. 2 6(1): 38. 1910.
≡ Astrocystis sublimbata (Durieu & Mont.) G.C. Hughes, Mycol. Pap. 50: 9. 1953.
≡ Hypoxylon sublimbatum (Durieu & Mont.) P.M.D. Martin, Jl S. Afr. Bot. 33: 322. 1967.
Material examinado: MÉXICO. Quintana Roo, municipio Cozumel, Reserva de la Biosfera Isla de Cozumel, Parque Ecológico Punta Sur, 16.VI.2018, R. Valenzuela (ENCB).
Distribución en México: Chiapas, Quintana Roo y Tamaulipas (San Martín y Rogers, 1995). Se cita por primera vez para la Isla Cozumel.
Jackrogersella multiformis (Fr.) L. Wendt, Kuhnert & M. Stadler, Mycol. Prog. 14(1): 24. 2018.
TIPO: SUECIA. Localidad desconocida, sobre madera, E. Fries 44 (holotipo: UPS, isotipo: K).
= Hypoxylon granulosum Bull., Hist. Champ. Fr. (Paris) 1(1): 176. 1791.
= Sphaeria crustacea Sowerby, Col. fig. Engl. Fung. Mushr. (Londres) 3(25): 372. 1802.
= Sphaeria cinereofusca Schumach., Enum. pl. (Kjbenhavn) 2: 164. 1803.
≡ Sphaeria multiformis Fr., Observ. Mycol. (Havniae) 1: 169. 1815. ALEMANIA. North Rhine Westphalia: Haan-Gruiten, sobre Alnus glutinosa (L.) Gaertn., 10.VIII.2004, M. Stadler s.n. (epitipo: STMA 04117, designado en Wendt et al. (2018).
= Sphaeria multiformis var. alnea Fr., Observ. mycol. (Havniae) 1: 170. 1815.
= Sphaeria multiformis var. coarctata Fr., Observ. mycol. (Havniae) 1: 170. 1815.
= Sphaeria multiformis var. dilatata Fr., Observ. mycol. (Havniae) 1: 170. 1815.
= Nemania crustacea (Sowerby) Gray, Nat. Arr. Brit. Pl. 1: 517. 1821.
= Peripherostoma granulosum (Bull.) Gray, Nat. Arr. Brit. Pl. (Londres) 1: 514. 1821.
= Stromatosphaeria elliptica Grev., Fl. Edin.: 357. 1824.
= Sphaeria corrugata Fr., Elench. fung. (Greifswald) 2: 70. 1828.
≡ Hypoxylon multiforme (Fr.) Fr., Summa veg. Scand., Sectio Post. (Stockholm): 384. 1849.
= Hypoxylon corrugatum (Fr.) Fr., Summa veg. Scand., Sectio Post. (Stockholm): 384. 1849.
= Hypoxylon crustaceum (Sowerby) Nitschke, Pyrenomyc. Germ. 1: 49. 1867.
= Hypoxylon multiforme var. effusum (Pers.) Cooke y Ellis, Grevillea 5(33): 33. 1876.
= Hypoxylon multiforme var. granulosum (Bull.) Sacc., Syll. fung. (Abellini) 1: 364. 1882.
= Hypoxylon hookeri Berk. ex Cooke, Grevillea 11(60): 129. 1883.
= Rosellinia callimorpha P. Karst., Hedwigia 23(6): 84. 1884.
= Hypoxylon granulosum var. luxurians Rehm, Annls mycol. 3(3): 229. 1905.
= Hypoxylon callimorphum (P. Karst.) P.M.D. Martin, Jl S. Afr. Bot 33: 325.1967.
= Annulohypoxylon multiforme Y.M. Ju & J.D. Rogers, Mycol. Mem. 20: 219. 1996.
≡ Annulohypoxylon multiforme (Fr.) Y.M. Ju, J.D. Rogers & H.M. Hsieh, Mycologia 97(4): 859. 2005.
Material estudiado: MÉXICO. Quintana Roo, municipio Cozumel, Parque Ecológico Punta Sur, 24.IV.2019, Y. A. García y M. A. Bravo 59 (ENCB), 54 (ENCB); loc.cit., 16.X.2019, T. Raymundo 8328 (ENCB).
Distribución en México: Tamaulipas (San Martín et al., 1999). Se cita por primera vez para Quintana Roo.
Xylariaceae
Kretzschmaria zonata (Lév.) P.M.D. Martin, Jl S. Afr. Bot. 42(1): 75. 1976.
TIPO: INDONESIA. Java, en palmas Zippelius, M. J. H. Léveillé 253 (holotipo: MNHN).
≡ Sphaeria zonata Lév., Annls Sci. Nat., Bot., sér. 3 (3): 48. 1845.
≡ Ustulina zonata (Lév.) Sacc., Syll. fung. (Abellini) 1: 352. 1882.
= Ustulina vulgaris f. madagascariensis Henn., in Voeltzkow, Reise in Ost-Africa 1903-1905, Syst. Arbeit. 3(1-3): 30. 1908.
= Hypoxylon deustum f. madagascariense.(Henn.) Hendr.(as ‘madagascariensis’), Publ. Inst. Natl. Agron. Congo Belge. 35: 7. 1948.
Material examinado: MÉXICO. Quintana Roo, municipio Cozumel, Reserva de la Biosfera Isla Cozumel, Zona Arqueológica de San Gervasio, Chen-tuk, 17.VI.2018, T. Raymundo 7689 (ENCB).
Distribución en México: se ha citado de Campeche, Chiapas, Nuevo León, Quintana Roo, Tabasco, Tamaulipas y Veracruz (San Martín y Lavin, 1997; Cibrián-Tovar, 2013). Se registra por primera vez para la Isla Cozumel.
Rosellinia subiculata (Schwein.) Sacc., Syll. fung. (Abellini) 1: 255. 1882.
TIPO: ESTADOS UNIDOS DE AMÉRICA. Carolina del Norte, en madera de Liriodendron y Quercus tomentosa, L. D. Schweinitz 175 (no está indicado el tipo).
≡ Sphaeria subiculata Schwein., Schr. naturf. Ges. Leipzig 1: 44. 1822.
Material examinado: MÉXICO. Quintana Roo, municipio Cozumel, Reserva de la Biosfera Isla Cozumel, Zona Arqueológica de San Gervasio, Chen-tuk, 21.I.2018, T. Raymundo 7320 (ENCB), 7335 (ENCB); loc. cit., R. Valenzuela 17996 (ENCB).
Distribución en México: Hidalgo (Raymundo et al., 2016) y Veracruz (San Martín y Rogers, 1995). Se cita por primera vez para Quintana Roo.
Xylaria bambooensis Lloyd, Mycol. Writ. 7(72): 1285. 1924.
TIPO: HONDURAS. En Bambusaceae, no está indicado el tipo.
Material examinado: MÉXICO. Quintana Roo, municipio Cozumel, Reserva de la Biosfera Isla Cozumel, Zona Arqueológica de San Gervasio, Chen-tuk, 21.I.2018, A. Cobos-Villagrán 935 (ENCB).
Distribución en México: Quintana Roo (Guzmán, 2003). Se registra por primera vez para la Isla Cozumel.
Xylaria cubensis (Mont.) Fr., Nova Acta Regiae Societatis Scientiarum Upsaliensis Ser. 3, 1: 126. 1851.
TIPO: CUBA. No está indicado el tipo.
≡ Hypoxylon cubense Mont., Annls Sci. Nat., Bot., sér. 2 13: 345. 1840.
= Sphaeria flabelliformis Schwein., in Fries, Elench. fung. (Greifswald) 2: 58. 1828.
= Xylaria flabelliformis (Schwein.) Berk. & M.A. Curtis, in Berkeley, J. Linn. Soc., Bot. 10(46): 381. 1869.
= Isaria flabelliformis (Schwein.) Lloyd, Mycol. Writ. 4(Mycol. Notes 40): 547. 1916.
= Xylosphaera cubensis (Mont.) Dennis, Kew Bull. 13(1): 103. 1958.
= Xylosphaera papyrifera subsp. cubensis (Mont.) Dennis, Bull. Jard. bot. État Brux. 31: 122. 1961.
= Xylaria papyrifera subsp. cubensis (Mont.) D. Hawksw., Trans. Br. mycol. Soc. 61(1): 200.1973.
= Xylocoremium flabelliforme (Schwein.) J.D. Rogers, Mycologia 76(5): 914. 1984.
Material examinado: MÉXICO. Quintana Roo, municipio Cozumel, Reserva de la Biosfera Isla Cozumel, Zona Arqueológica de San Gervasio, Chen-tuk, 21.I.2018, A. Cobos-Villagrán 933 (ENCB).
Distribución en México: Chiapas, Quintana Roo, Tamaulipas (San Martín y Rogers, 1989; Guzmán, 2003), Hidalgo (Raymundo et al., 2016) y Veracruz (Medel et al., 2008). Se registra por primera vez para la Isla Cozumel.
Xylaria mellisii (Berk.) Cooke, Grevillea 11(59): 85. 1883.
TIPO: INGLATERRA. Isla Santa Helena, en madera, J.C. Mellis s.n. (holotipo: K).
≡ Hypoxylon mellissii Berk., in Melliss, St. Helena: A Physical, Historical and Topographical Description of the Island, including the Geology, Fauna, Flora and Meteorology: 379. 1875.
≡ Xylosphaera mellissii (Berk.) Dennis, Kew Bull. 13(1): 104. 1958.
= Xylosphaera mellissii var. nuda Dennis (as ‘mellisii’), Revta Biol., Lisb. 1(3-4): 183. 1958.
= Xylaria mellissii var. nuda (Dennis) D. Hawksw., Trans. Br. mycol. Soc. 61(1): 200. 1973.
Material examinado: MÉXICO. Quintana Roo, municipio Cozumel, Reserva de la Biosfera Isla Cozumel, Centro de Conservación y Educación Ambiental, 20.I.2018, A. Cobos-Villagrán 962 (ENCB).
Distribución en México: Michoacán (Becerril-Navarrete et al., 2018), Tamaulipas y Veracruz (Medel et al., 2008). Se cita por primera vez para Quintana Roo.
Discusión
Los ascomicetos de la Reserva de la Biosfera Isla Cozumel presentan una alta riqueza, pues ahí se encuentran 40 taxones distribuidos en las clases Dothideomycetes (9 spp.), Leotiomycetes (1 spp.), Pezizomycetes (2 spp.) y Sordariomycetes (28 spp.). Esta última tiene 70% de la composición total, mientras que el orden Xylariales, con 25 especies, es el grupo de hongos con mayor riqueza, lo cual coincide con De la Fuente et al. (2020), quienes publicaron el listado de Ascomycota, Basidiomycota y Glomeromycota del estado de Quintana Roo, en donde este orden es el mejor representado con 72 especies. Hypoxylaceae, con 16 taxones, se muestra como la familia más abundante con 40% del total de los ascomicetos determinados. El género Hypoxylon Bull., con 11 especies, representa 27.5% del total, le siguen Xylaria Hill ex Schrank y Rhytidhysteron Speg. con 7.5% y tres taxones cada uno.
En el Cuadro 1 se observa que el Centro de Conservación y Educación Ambiental (CCEA) y la Zona Arqueológica de San Gervasio (ZASG) presentan una mayor riqueza taxonómica con 23 y 25 especies, respectivamente. En contraste, en el Parque Ecológico Punta Sur (PEPS) se encontraron 11, lo cual puede deberse a que la diversidad vegetal y la acumulación de materia orgánica (Hyde y Lee, 1995) en la selva baja caducifolia del CCEA y la selva mediana subcaducifolia en la ZASG es mayor que en manglares y dunas costeras del PEPS, favoreciendo asi la colonización fúngica en dichos sitios de estudio. Las especies que se encontraron en todas las localidades son Bionectria ochroleuca, Hypoxylon lenormandii, Rhytidhysteron neorufulum y R. rufulum. Mientras que por localidad se determinaron 23 taxones para CCEA que equivalen a 57.5% del total. Bertia tropicalis, Camillea coroniformis, Hypocreopsis macrostoma, H. duranii, H. erythrosoma, Macrovalsaria megalospora y Xylaria mellisii se recolectaron únicamente en la selva baja caducifolia de esta localidad. Doce taxones que equivalen a 30% del total registrado en PEPS, de las cuales Botryopsphaeria dothidea, Eutypella portoricensis, Hypoxylon sublimbatum, Lasiodiplodia theobromae, Peroneutypa scoparia y Platystomum mexicanum, fueron exclusivos de la zona dunera. Por su parte, Patellaria atrata es la única especie que se observó sobre Rhizophora mangle. Para la ZASG se determinaron 25 especies que equivalen a 62.5% del total. De estas, Anteaglonium abbreviatum, Biscogniauxia capnodes, Gloniella tropicalis, H. jaklitschii, Jackrogersella multiformis, Kretzschmaria zonata, Rosellinia subiculata, Unguiculariopsis ravenelii, Xylaria bambooensis y X. cubensis se localizaron especificamente en selva mediana subcaducifolia de dicha localidad. Por su parte, Annulohypoxylon nitens, A. purpureonitens, Cookeina tricholoma, Daldinia eschscholtzii, H. haematostroma, H. investiens, H. rickii, H. subgilvum y Phillipsia domingensis fueron localizados tanto en CCEA como en ZASG. Las especies con mayor número de ejemplares fueron Rhytidhysteron rufulum con 14 y Annulohypoxylon nitens con 13.
Cuadro 1: Ascomicetos de la Reserva de la Biosfera Isla Cozumel, Quintana Roo, México.
| Especie | Centro de Conservación y Educación Ambiental | Parque Ecológico Punta Sur | Zona Arqueológica San Gervasio, Chen-tuk | Hospedero: Nombre científico Nombre común | Familia | Hábito |
| Annulohypoxylon nitens (Ces.) Y.M. Ju, J.D. Rogers & H. M. Hsieh | X | X | Guazuma ulmifolia Lam. Piixoy Mimosa bahamensis Benth. Motita Senna racemosa (Mill.) H.S. Irwin & Barneby Ja’ abin | Malvaceae Fabaceae Fabaceae | saprobio | |
| Annulohypoxylon purpureonitens (Y.M. Ju & J.D. Rogers) Y.M. Ju, J.D. Rogers & H.M. Hsieh | X | X | Mimosa bahamensis Benth. Motita Guazuma ulmifolia Lam. Piixoy | Fabaceae Malvaceae | saprobio | |
| Anteaglonium abbreviatum (Schwein.) Mugambi & Huhndorf | X | Enterolobium cyclocarpum (Jacq.) Griseb. Piich | Fabaceae | saprobio | ||
| Bertia tropicalis Huhndorf, A.N. Mill. & F.A. Fernández | X | Cedrela odorata L. Cedro Bursera simaruba (L.) Sarg. Chakaa’ | Meliaceae Burseraceae | saprobio | ||
| Bionectria ochroleuca (Schwein.) Schroers & Samuels | X | X | X | Enterolobium cyclocarpum Griseb. Piich | Fabaceae | fitopatógeno |
| Biscogniauxia capnodes (Berk.) Y.M. Ju & J.D. Rogers | X | Bursera simaruba (L.) Sarg. Chakaa’ | Burseraceae | saprobio | ||
| Botryosphaeria dothidea Ces & De Not. | X | Carica papaya L. Papaya | Caricaceae | fitopatógeno | ||
| Camillea coroniformis J.D. Rogers, F. San Martín & Y.M. Ju | X | Lysiloma latisiliquum (L.) Benth. Tsalam | Fabaceae | saprobio | ||
| Cookeina tricholoma (Mont.) Kuntze | X | X | Cedrela odorata L. Cedro | Meliaceae | saprobio | |
| Daldinia cuprea Starbäck | X | Manilkara zapota (L.) P. Royen Sapotillo | Sapotaceae | saprobio | ||
| Daldinia eschscholtzii (Ehrenb.) Rehm | X | X | Bursera simaruba (L.) Sarg. Chakaa’ | Burseraceae | saprobio | |
| Eutypella portoricensis (Petr.) Rappaz | X | Enterolobium cyclocarpum Griseb. Piich | Fabaceae | saprobio | ||
| Gloniella tropicalis I. Álvarez, Raymundo & R. Valenz. | X | Gliricidia sepium (Jacq.) Kunth ex Walp. Cocoite | Fabaceae | saprobio | ||
| Hypocreopsis macrostoma (Berk. & M.A. Curtis) E. Müll. | X | Bambusa vulgaris Schrad. ex J.C. Wendl Bambú | Poaceae | saprobio | ||
| Hypoxylon cinnabarinum (Henn.) Henn. | X | X | Brosimum alicastrum Sw. Ramón | Moraceae | saprobio | |
| Hypoxylon duranii Rogers | X | Lysiloma latisiliquum (L.) Benth. Tsalam | Fabaceae | saprobio | ||
| Hypoxylon erythrostroma J.H. Mill. | X | Bursera simaruba (L.) Sarg. Chakaa’ | Burseraceae | saprobio | ||
| Hypoxylon haematostroma Mont. | X | X | Cedrela odorata L. Cedro Enterolobium cyclocarpum Griseb. Piich Delonix regia (Bojer ex Hook.) Raf. Flamboyan Bursera simaruba (L.) Sarg. Chakaa’ Brosimum alicastrum Sw. Ramón | Meliaceae Fabaceae Fabaceae Burseraceae Moraceae | saprobio | |
| Hypoxylon investiens (Schwein.) M.A. Curtis | X | X | Cedrela odorata L. Cedro | Meliaceae | saprobio | |
| Hypoxylon jaklitschii Sir & Kuhnert | X | Brosimum alicastrum Sw. Ramón | Moraceae | saprobio | ||
| Hypoxylon lenormandii Berk. & M.A. Curtis | X | X | X | Cedrela odorata, L. Cedro Enterolobium cyclocarpum Griseb. Piich Bursera simaruba (L.) Sarg. Chakaa’ Brosimum alicastrum Sw. Ramón | Meliaceae Fabaceae Burseraceae Moraceae | saprobio |
| Hypoxylon perforatum (Schwein.) Fr. | X | X | Brosimum alicastrum Sw. Ramón Enterolobium cyclocarpum Griseb. Piich | Moraceae Fabaceae | saprobio | |
| Hypoxylon rickii Y.M. Ju & J.D. Rogers | X | X | Cedrela odorata L. Cedro Brosimum alicastrum Sw. Ramón | Meliaceae Moraceae | saprobio | |
| Hypoxylon subgilvum Berk. & Broome | X | X | Enterolobium cyclocarpum Griseb. Piich Bursera simaruba (L.) Sarg. Chakaa’ Brosimum alicastrum Sw. Ramón | Fabaceae Burseraceae Moraceae | saprobio | |
| Hypoxylon sublimbatum (Durieu & Mont.) P. M. D. Martín | X | Senna racemosa (Mill.) H.S. Irwin & Barneby Ja’ abin | Fabaceae | saprobio | ||
| Jackrogersella multiformis (Fr.) L. Wendt, Kuhnert & M. Stadler | X | Rhizophora mangle L. Mangle rojo | Rhizophoraceae | saprobio | ||
| Kretzschmaria zonata (Lév.) P.M.D. Martin | X | Cedrela odorata L. Cedro | Meliaceae | fitopatógeno | ||
| Lasiodiplodia theobromae (Pat.) Griffon & Maubl. | X | Carica papaya L. Papaya | Caricaceae | fitopatógeno | ||
| Macrovalsaria megalospora (Mont.) Sivan. | X | Pithecellobium dulce (Roxb.) Benth. | Fabaceae | fitopatógeno | ||
| Patellaria atrata (Hedw.) Fr. | X | Rhizophora mangle L. Mangle rojo | Rhizophoraceae | saprobio | ||
| Peroneutypa scoparia (Schwein.) Carmarán & A.I. Romero | X | Enterolobium cyclocarpum Griseb. Piich | Fabaceae | saprobio | ||
| Phillipsia domingensis (Berk.) Berk. ex Denison | X | X | Sideroxylon foetidissimum Jacq. Caracolillo | Sapotaceae | saprobio | |
| Platystomum mexicanum Raymundo, Martínez-Pineda, A. Tun & R. Valenz. | X | Manilkara zapota (L.) P. Royen Sapotillo | Sapotaceae | saprobio | ||
| Rhytidhysteron neorufulum Thambug. & K.D. Hyde | X | X | X | Plumeria obtusa L. Flor de mayo | Apocynaceae | saprobio |
| Rhytidhysteron rufulum (Spreng.) Speg. | X | X | X | Sideroxylon foetidissimum Jacq. Caracolillo | Sapotaceae | saprobio |
| Rosellinia subiculata (Durieu & Mont.) Pass. | X | Bursera simaruba (L.) Sarg. Chakaa’ | Burseraceae | saprobio | ||
| Unguiculariopsis ravenelli (Berk. & M.A. Curtis) W.Y. Zhuang & Korf | X | Rhytidhysteron rufulum (Spreng.) Speg. | Hysteriaceae | mycoparasito | ||
| Xylaria bambooensis Lloyd | X | Bambusa vulgaris Schrad. ex J.C. Wendl Bambú | Poaceae | saprobio | ||
| Xylaria cubensis (Mont.) Fr. | X | Sideroxylon foetidissimum Caracolillo | Sapotaceae | saprobio | ||
| Xylaria mellisii (Berk.) Cooke | X | Delonix regia (Bojer ex Hook.) Raf. Flamboyán | Fabaceae | saprobio |
En cuanto al hábito nutricional de los hongos recolectados, 34 especies (85%) son saprobias; y cinco (12.5%) son fitopatógenas, porque se encontraron sobre árboles vivos y están representadas por Bionectria ochroleuca, Botryosphaeria dothidea, Krtezschmaria zonata, Lasiodiplodia theobromae y Macrovalsaria megalospora. Unguiculariopsis ravenelii fue la única especie micoparásita y se determinó creciendo sobre Rhytidhysteron rufulum.
A todas las especies de ascomicetos estudiados se les pudieron determinar los hospederos, destacando 20 especies de plantas y solo una de hongo. La familia Fabaceae es la que presentó el mayor número de taxa de hongos con 15, siguiéndole la familia Burseraceae con ocho, y las familias Meliaceae y Moraceae con siete. De los hospederos vegetales sobresalen Brosimum alicastrum, Bursera simaruba, Cedrela odorata y Enterolobium cyclocarpum (Jacq.) Griseb. por tener siete u ocho especies de hongos creciendo en ellas. Anteaglonium parvulum, Bionectria ochroleuca, Eutypella portoricensis, Hypoxylon haematostroma, H. lenormandii, H. perforatum, H. subgilvum y Peroneutypa scoparia crecen sobre Enterolobium cyclocarpum. Bertia tropicalis, Biscogniauxia capnodes, Daldinia eschscholtzii, Hypoxylon erytrostroma, H. haematostroma, H. lenormandii, H. subgilvum y Rosellinia subiculosa sobre Bursera simaruba. Hypoxylon cinnabarinum, H. haematostroma, H. jaklitschii, H. lenormandii, H. perforatum, H. rickii y H. subgilvum en Brosmium alicastrum. Bertia tropicalis, Cookeina tricholoma, Hypoxylon haematostroma, H. investiens, H. lenormandii, H. rickii y Kretzschmaria zonata sobre Cedrela odorata. El resto de las especies de ascomicetos y hospederos se especifica en el Cuadro 1.
Por otro lado, Hypoxylon haematostroma e H. lenormandii (Hypoxylaceae) se encontraron sobre un mayor número de hospederos: Brosimum alicastrum, Bursera simaruba, Cedrela odorata, Enterolobium cyclocarpum y Delonix regia (Bojer ex Hook.) Raf. en la primera especie y los cuatro primeros en la segunda. Asimismo, Annulohypoxylon nitens crece sobre Guazuma ulmifolia Lam., Mimosa bahamensis Benth. y Senna racemosa (Mill.) H.S. Irwin & Barneby e H. subgilvum sobre Brosimum alicastrum, Bursera simaruba y Enterolobium cyclocarpum. Solo dos especies presentaron especificidad de hospederos: Xylaria bambooensis sobre Bambusa vulgaris Schrad. ex J.C. Wendl. y Unguiculariopsis ravenelli sobre Rhytidhysteron rufulum, siendo está ultima la única que crece como fungícola.
En Quintana Roo se han registrado 122 especies de ascomicetos, considerando los trabajos de Kohlmeyer (1984), González et al. (2001), Barbosa-Reséndiz et al. (2020), Cobos-Villagrán et al. (2020), De la Fuente et al. (2020), Reyes et al. (2020) y García-Martínez et al. (2021a, b). Asímismo, de las 122 mencionadas para el estado, se han citado 43 taxa en la Reserva de la Biosfera Isla Cozumel (Kohlmeyer, 1984; González et al., 2001; Barbosa-Reséndiz et al., 2020; Cobos-Villagrán et al., 2020; Reyes et al., 2020 y García-Martínez et al., 2021a, b). Por otro lado, si consideramos que en el presente trabajo se determinaron 40 hongos del phylum Ascomycota, de los cuales 15 son nuevos registros para Quintana Roo, uno es nuevo registro para México (Bertia tropicalis) y una especie nueva (Platystomum mexicanum) y sumamos estos a las 122 especies del estado, se tendrían 139 especies para la entidad. Asimismo, si añadimos a los 43 taxones de la reserva estos 17 reportes nuevos, adicionando ocho que se citan por primera vez para la isla, aumentaríamos a 68 los registros para el municipio Cozumel.
Conclusiones
De las 40 especies estudiadas se aportaron 17 nuevos registros para Quintana Roo incluidos una nueva especie, Platystomum mexicanum, y un nuevo registro para el país, Bertia tropicalis. De estas 40, 25 fueron mencionados por primera vez para la Reserva de la Biosfera Isla Cozumel. Se incrementó a 139 el conocimiento de los ascomicetos para la entidad y la reserva, con 68 taxa, tiene 48.9% del total. El Área Natural Protegida con más especies fue la Zona Arqueológica de San Gervasio con 25, siguiéndole el Centro de Conservación y Educación Ambiental con 23 y el Parque Ecológico Punta Sur con 11. De las cuatro clases del phylum Ascomycota, los Sordariomycetes fueron los más representados con 28 taxones, siguiéndole Dothideomycetes con nueve, Pezizomycetes con dos y Leotiomycetes con uno. Los grupos taxonómicos más diversos fueron el orden Xylariales (25 spp.), la familia Hypoxylaceae (16 spp.) y el género Hypoxylon (11 spp.). Se encontraron con mayor frecuencia Rhytidhysteron rufulum (14 especímenes) y Annulohypoxylon nitens (13). Los taxones presentes en todas las localidades fueron Bionectria ochroleuca, Hypoxylon lenormandii, Rhytidhysteron neorufulum y R. rufulum. Los ascomicetos de la Isla Cozumel crecen principalmente como saprobios y fitopatógenos. Sin embargo, es necesario continuar con los estudios para establecer los nichos ecológicos de estos organismos y sus relaciones con las plantas en este ecosistema. Este estudio representa una primera aproximación a la riqueza taxonómica de hongos en la isla, por lo que se requiere ampliar el número de exploraciones para un mejor conocimiento de la diversidad fúngica en el caribe mexicano.
