Introducción

El género Manfreda pertenece a la familia Asparagaceae, subfamilia Agavoideae (^{APG III, 2009}). Se distribuye desde el sureste de los EUA, hasta el norte de Nicaragua. México es el centro de diversidad del género. De las 32 especies reconocidas, 31 (97%) son propias de este país (^{Castillejos, 2009}), la mayoría consideradas como microendemismos, debido a que ocupan menos del 1.5% del territorio nacional (^{García-Mendoza, 1995}).

Las manfredas son plantas herbáceas, perennes, caducifolias, acaulescentes, con rizomas, cormos y bulbos, los bulbillos son raros; hojas en roseta, lineares, lanceoladas u oblanceoladas, verde brillantes o verde glaucas, a veces con máculas; inflorescencia en espiga, flores tubulares, campanuladas, infundibuliformes a hipocrateriformes, solitarias, perianto usualmente de color verde, a veces con tintes rojos, blancos, amarillos, pardos, rosados o guindas; tépalos en 2 series, oblongos, extendidos o revolutos, rara vez erectos, 6 estambres, exertos; ovario ínfero, trilocular; fruto una cápsula globosa u oblonga con dehiscencia loculicida; semillas planas, más o menos deltoides, de color negro (^{Castillejos, 2009}). La mayoría de las especies de este género tiene potencial ornamental, otras se usan con fines medicinales, y por su alta concentración de sapogeninas en sus cormos y bulbos; han sido utilizadas desde la época prehispánica como sustituto del jabón (^{Nobel, 1998}, ^{Piña, 1985}, ^{Verhoek-Williams, 1975}).

El número de especies de Manfreda ha variado en función de los criterios utilizados para separarlas. Por ejemplo, ^{Rose (1899)} reconoció 17 y ^{Castillejos (2009)} 32. Los caracteres anatómicos no han sido utilizados en la delimitación de las especies de este género, debido a que no se han realizado estudios de este tipo que involucren a la mayoría de los taxones y sus órganos.

En 6 géneros de Asparagales sensu ^{APG III (2009)} se han realizado estudios sobre la anatomía de las raíces (^{Claus, 1954}, ^{Fritsch, 1992}, ^{Pant, 1943}, ^{Schlittler, 1951}). También ha sido descrita la anatomía de la raíz en Asteliaceae, Behniaceae, Blandfordiaceae, Iridaceae e Hypoxidaceae (^{Conran, 1999}, ^{Rudall, 1995}, ^{Rudall et al., 1998a}). ^{Tomlinson y Zimmermann (1969)} observaron que la raíz de Dracaena es la única monocotiledónea donde el meristemo de engrosamiento secundario (MES) se prolonga hasta la misma. ^{Kauff, Rudall y Conran (2000)} estudiaron la anatomía de este órgano en un contexto sistemático del orden Asparagales y otras monocotiledóneas.

Sobre la base de la actividad del meristemo de engrosamiento primario (MEP) y el MES, ^{Mangin (1882)} dividió las monocotiledóneas en 4 grupos. Ubicó el género Agave en el segundo grupo debido a su hábito herbáceo y MEP activo después de la formación de raíces, mientras que Yucca, Dracaena y Cordyline los incluyó en un tercer grupo por ser arborescentes y presentar MES. ^{Chakraverti (1939)} indicó que el bulbo (cormo) de Polianthes tuberosa presenta un MES menos desarrollado que el tallo aéreo de Dracaena.^{Solano, Terrazas y González-Becerril (2013)} también señalaron la presencia de MES en el cormo del género Polianthes y en 4 especies registraron, por primera vez para el orden Asparagales, cuerpos de sílice en este órgano.

^{Álvarez, 1985}, ^{Álvarez, 1990} estudió la epidermis de la hoja en Agavaceae y corroboró la clasificación genérica de las 4 tribus que conforman esta familia sensu^{Dahlgren, Clifford y Yeo (1985)}. La anatomía foliar comparada, además de evidencias moleculares del clado-Trichocentrum (Orchidaceae), fue analizada por ^{Cetzal-Ix, Noguera-Savelli, Jáuregui y Carnevali (2013)}, quienes concluyeron que las hojas unifaciales y las inclusiones epidérmicas son sinapomorfias de Cohniella y respaldan la monofilia de este clado. ^{Solano et al. (2013)} indicaron que en la hoja de Polianthes hay evidencias anatómicas que permiten separar algunas especies. ^{Gutiérrez, Salgado, Grego-Valencia y Terrazas (2015)} estudiaron la anatomía foliar del complejo Milla, conformado por los géneros Bessera, Dandya, Milla y Petronymphe, y registraron que Bessera tiene las paredes de las células epidérmicas colenquimatosas y el metaxilema en forma de «T»; los otros géneros carecen de caracteres foliares distintivos. En el presente estudio se analiza la anatomía de 13 especies de Manfreda, con la intención de evaluar y registrar evidencias con posible valor sistemático.

Materiales y métodos

Se recolectaron individuos completos de 13 especies de Manfreda en su área de distribución en México (Tabla 1). Los especímenes herborizados fueron depositados en las colecciones FEZA y MEXU. De 1 a 3 individuos —por especie y en floración— se fijaron en una solución de formol, ácido acético glacial, alcohol etílico y agua (10:5:50:35) (^{Johansen, 1940}) por más de 48 h. Trascurrido este tiempo, se lavaron a chorro de agua durante varios minutos hasta eliminar el olor a formol y se almacenaron en una solución de glicerina, etanol (95%) y agua (1:1:1) hasta que fueron seccionados. Las raíces contráctiles fueron divididas en su parte media, los cormos y los bulbos se cortaron en 3 porciones: basal, media y apical. Estas partes se seccionaron transversal y tangencialmente, con un grosor de 2-3 mm. Del mismo modo, se seccionó la base del eje de la inflorescencia. Se realizaron secciones transversales de 5 mm de una de las hojas más externas de la roseta de cada individuo. Los tejidos se ablandaron en una solución de etilen-diamina al 0.4% durante 24 a 48 h (^{Carlquist, 1982}). Después de este tiempo, el material fue lavado a chorro de agua. Todos los tejidos fueron deshidratados en terbutanol usando un procesador de tejidos Leica TP1020 y embebidos en Histowax (Leica) a una temperatura de fusión de 56-58 °C.

Secciones transversales y longitudinales de los cormos, los bulbos, las hojas y la base del pedúnculo con un grosor de 12 a 14 μm se realizaron con un micrótomo rotatorio Leica RM2125FT (Leica, Wetzlar, Alemania). Estas secciones fueron adheridas con Haupt a portaobjetos; se tiñeron con safranina-verde rápido y se montaron con resina sintética. Para describir el patrón de venación las hojas fueron aclaradas siguiendo la técnica descrita por ^{Hickey (1973)}. Impresiones de las superficies adaxial y abaxial de las hojas en plantas vivas fueron realizadas con barniz para observar los estomas, una vez seco el barniz, las impresiones se montaron en un portaobjetos. Los tejidos fueron observados con un microscopio óptico Nikon, modelo Eclipse E200 (Nikon Corporation, Tokio, Japón).

Resultados

Morfología vegetativa. Todas las especies de Manfreda son hierbas caducifolias; presentan 2 tipos de tallos hipogeos: cormo y bulbo. El cormo es cilíndrico, subgloboso o de forma irregular, con entrenudos muy cortos, raíces contráctiles y fibrosas, con yemas axilares blanco amarillentas dispuestas en forma alterna espiralada, cubiertas parcial o totalmente por catáfilas pardas; los cormos generalmente carecen de bulbillos, y en algunas especies a partir de ellos se desarrollan apéndices estoloníferos. El bulbo carece de raíces, es cilíndrico, obovoide, ovoide o de forma irregular; las bases de las hojas de las estaciones anteriores de crecimiento cubren el bulbo y son de consistencia membranácea o fibrosa (Fig. 1). Las hojas son anuales, alternas espiraladas, con textura foliácea, suculenta o semisuculenta, linear-lanceoladas, lanceoladas o lineares, varían de 10 cm hasta 1 m de longitud, con margen entero, hialino papiloso, denticulado o dentado, ápice agudo, redondeado y de consistencia suave, excepto en Manfreda hauniensis, donde es duro y pungente cuando la hoja se seca, las caras adaxial y abaxial generalmente son glabras y con papilas. El eje floral es terete, a veces estriado o con surcos longitudinales, las brácteas de la porción estéril son similares a las hojas y disminuyen de tamaño hacia la porción distal de la inflorescencia.

Figura 1 Manfreda pringlei: raíces contráctiles (A), cormo (B) y bulbo (C). 

Anatomía de la raíz. En todas las especies estudiadas la exodermis ha desplazado a la epidermis. Las células de la exodermis son largas periclinalmente, por debajo de ellas, el parénquima en sección transversal tiene células de forma irregular y largas en sentido horizontal, en la parte media son grandes y largas radialmente, las cercanas a la endodermis son poliédricas y pequeñas (Fig. 2A). Sólo Manfreda longiflora y Manfreda potosina tienen células poliédricas en la mayor parte del parénquima. Se observan escasos rafidios cerca de la exodermis en Manfreda guerrerensis, M. longiflora y M. potosina; mientras que en las demás especies están ausentes (Fig. 2B). La capa de células colindantes con la endodermis puede o no formar un anillo irregular, compuesto por 1 a 5 estratos de células con paredes engrosadas: Manfreda scabra de 1 a 2, M. guerrerensis y Manfreda singuliflora 2, Manfreda pubescens 2 a 3, Manfreda nanchititlensis 4 o 5, respectivamente, mientras que el resto de las especies estudiadas carecen de este anillo (Fig. 2C). Cabe mencionar que los estratos no son continuos, pero si se presenta uno de ellos, entonces rodea completamente a la endodermis.

Figura 2 Raíz de Manfreda (sección transversal [ST]). A) M. guttata, vista general. B) M. potosina, células del parénquima externo e interno. C) M. nanchititlensis, 4-5 estratos de esclerénquima colindantes a la endodermis, periciclo biseriado con células lignificadas. D) M. pubescens, 3 estratos de esclerénquima colindantes ala endodermis, periciclo biseriado no lignificado. E) M. guerrerensis, protoxilema y metaxilema. F) M. pringlei, células de parénquima colindantes a la endodermis. Barra es 10 μm en A, 300 μm en B; 50 μm en C y D; 100 μm en E y F. cpe: células del parénquima externas; cpi: células del parénquima internas; cpm: células del parénquima medias; cen: células cerca de endodermis; ex: exodermis; fl: floema; f: fibras; mx: metaxilema; pe: periciclo; px: protoxilema; *: endodermis. 

En sección transversal la endodermis es uniseriada, con células rectangulares o irregulares, en general con paredes delgadas y banda de Caspary, solo en M. nanchititlensis las paredes tangenciales están engrosadas. El periciclo generalmente es uniseriado, únicamente en M. longiflora, M. nanchititlensis, M. potosina, M. pubescens y M. singuliflora es biseriado (Fig. 2C y D). Las raíces de todas las especies son poliarcas. El protoxilema y el metaxilema se disponen en polos discretos acompañados de fibras y el floema se intercala (Fig. 2E y F).

Anatomía del cormo. No se observó epidermis. La peridermis es unidireccional con felógeno y felema. El felógeno está conformado células de diámetro radial angosto, el felema tiene varios estratos de células, sin idioblastos, ni espacios intercelulares que se colapsan al alejarse del felógeno (Fig. 3 A). Por debajo de la peridermis las células parenquimáticas son ligeramente largas horizontalmente y tienden a ser isodiamétricas conforme se aproximan al MES. En el parénquima próximo al MES y en el de la porción media del cormo se observan generalmente estiloides, rafidios y cuerpos de sílice (Fig. 3B); estos últimos no se observan en M. hauniensis. En la Tabla 2 se enlistan las especies que tienen estos idioblastos y su abundancia. En todas las especies estudiadas de Manfreda, el MES contiene haces vasculares en desarrollo, diferenciándose primero los elementos cribosos y después los traqueales. Los haces vasculares son colaterales. En el parénquima de la atactostele se observan estiloides y rafidios (Fig. 3C-E).

Flecha: cuerpos de sílice. es: estiloide; fe: felema; hv: haz vascular; mes: meristemo de engrosamiento secundario; ra: rafidio.

Figura 3 Cormo de Manfreda (ST). A) M. potosina, peridermis. B) M. potosina, meristemo de engrosamiento secundario con abundantes cuerpos de sílice. C) M. longiflora, meristemo de engrosamiento secundario y haz vascular en desarrollo. D) M. maculata, detalle de estiloide con luz polarizada. E) M. maculata, detalle de rafidio con luz polarizada. Barra es 100 μm en A-C; 20 μm en D y E. 

Anatomía del bulbo. La cutícula varía de delgada a muy gruesa (Tabla 3). En M. pubescens la cutícula es estriada; en las demás especies, lisa. La epidermis es uniestratificada, con células cuadradas, a veces largas verticalmente, sin contenidos minerales, con o sin protuberancias (Fig. 4A y B). En M. potosina la epidermis forma invaginaciones en las bases foliares (Fig. 4C). Por debajo de la epidermis se distingue parénquima esponjoso (Fig. 4D) e idioblastos con estiloides y rafidios, distribuidos irregularmente por todo el parénquima. En las células subepidérmicas los estiloides no se observan en algunos individuos de M. elongata, M. longiflora y M. scabra, mientras que los rafidios debajo de la epidermis distinguen a M. pubescens (Fig. 4D). Estos idioblastos en el parénquima varían en abundancia entre las especies y muy poco entre individuos de la misma especie.

Figura 4 Bulbo y bases foliares de Manfreda (ST). A) M. nanchititlensis, cutícula lisa y muy gruesa. B) M. pubescens, cutícula estriada. C) M. potosina, epidermis con invaginaciones en el margen de las bases foliares. D) M. pubescens, hipodermis. E) M. elongata, banda discontinua de fibras. F) M. pringlei, bandas discontinuas de fibras. G) M. nanchititlensis, haz vascular con fibras asociadas al floema y xilema. H) M. maculata, haz vascular con fibras asociadas al floema. 10 μm en A y B; 100 μm en C y F; 50 μm en D, E, G y H. Flecha: cutícula. ei: epidermis con invaginaciones; ep: epidermis; f: fibras; fl: floema; hi: hipodermis; x: xilema. 

El parénquima abaxial de las bases de las láminas cercano a la epidermis tiene fibras discontinuas (Fig. 4E y F). Con respecto a la luz celular, las paredes son gruesas (7.35 μm) en M. elongata, de grosor moderado (4.9 μm) en Manfreda galvanie, M. guerrerensis, Manfreda guttata, M. hauniensis, Manfreda maculata, M. nanchititlensis y Manfreda pringlei; es variable en espesor (5-7 μm) en M. pubescens y M. scabra. Las demás especies no tienen estas fibras. Los haces vasculares son colaterales y se localizan dispersos en el parénquima, los más externos son pequeños e indiferenciados, en ellos los elementos cribosos se diferencian antes que los elementos traqueales, y algunas veces se encuentran acompañados por fibras (Fig. 4G y H) y asociadas a ellas estiloides. Los haces vasculares más internos son de mayor tamaño y completamente desarrollados, ovados o de forma irregular; las fibras acompañan al floema y al xilema en M. galvanie, M. guerrerensis, M. nanchititlensis, M. pringlei y M. pubescens; en M. nanchititlensis las fibras encierran completamente a los haces vasculares. En M. elongata, M. guttata, M. maculata y M. scabra las fibras únicamente se asocian al floema, en M. hauniensis al xilema y en M. longiflora, M. potosina y M. singuliflora están ausentes, característica que permite la separación de las especies. En secciones longitudinales de la región basal del bulbo se observa el MEP. Este se distingue por la presencia de células dispuestas radialmente y en división en las bases de las hojas.

Anatomía de la hoja. En sección transversal, el perfil de la lámina de las hojas maduras tiene forma de «V» abierta o ligeramente ondulada (Fig. 5A), únicamente es recta en M. potosina y M. singuliflora. Todas las especies tienen venación paralela, alternándose una vena de mayor grosor con otra más delgada, las venas de segundo orden son comunes y se extienden hacia la región intercostal (Fig. 5B). La cutícula es lisa o estriada (Fig. 5C y D); solo en M. longiflora, M. potosina, M. pringlei y M. pubescens se alternan porciones lisas y estriadas en una misma lámina, es generalmente delgada (0.9-1.55 μm) y se observa gruesa (2.85 μm) en M. nanchititlensis. La epidermis generalmente es papilosa en ambas superficies, con células prominentes. M. elongata solo tiene papilas en el envés, además es uniestratificada, con células cuadradas a rectangulares. Las macropapilas en el envés son típicas de M. guttata y M. guerrerensis, mientras que en M. nanchititlensis y M. scabra se observan en ambas superficies. La lámina es anfiestomática, con estomas paracíticos (Fig. 5E); las células oclusivas presentan engrosamientos de cutina anteriores y posteriores (Fig. 5F), excepto en M. longiflora y M. potosina. Los tricomas unicelulares abundantes, en ambas superficies, caracterizan a M. pubescens (Fig. 5G); en esta especie se observa peridermis continua hacia el envés, el felógeno y la felodermis con 2 capas de células y el felema con 2 a 3 estratos (Fig. 5H). Las hojas son unifaciales; el mesofilo está conformado únicamente por parénquima esponjoso y espacios intercelulares pequeños o medianos e idioblastos con rafidios y estiloides, que varían de escasos a abundantes (Fig. 5I); son raros en M. maculata. Los rafidios se disponen en todo el mesofilo y son abundantes en las células subepidérmicas de M. longiflora, M. nanchititlensis y M. pringlei. Los estiloides se encuentran en el mesofilo, particularmente en las células próximas a los haces vasculares y están ausentes en M. guerrerensis y M. maculata. En sección transversal, los haces vasculares son colaterales y se disponen formando de una a 3 filas; en muchas especies se alterna un haz grande con otro pequeño. En las células cercanas al haz vascular hay fibras abundantes o escasas (Fig. 5J), excepto en M. potosina y M. longiflora, donde están ausentes.

Flechas: cutícula; cabeza de flecha: estiloide. es: estoma; ep: célula epidérmica; f: fibras; pd: peridermis; ra: rafidio; x: xilema.

Figura 5 Hoja de Manfreda (ST). A) M. elongata, perfil de la lámina. B) M. elongata, patrón de venación. C) M. nanchititlensis, cutícula lisa. D) M. guttata, cutícula estriada. E) M. scabra, estomas paracíticos. F) M. revoluta, engrosamientos anteriores y posteriores de las células oclusivas. G) M. pubescens, tricoma. H) M. pubescens, peridermis. I) M. guttata, rafidios y estiloide. J) M. guttata, haz vascular con fibras, estiloides. Barra es 50 μm en C-I; 20 μm en J. 

Anatomía de la base del pedúnculo floral. La cutícula es generalmente lisa, se observa estriada en M. pubescens y varía de gruesa a muy delgada (Tabla 3). La epidermis es uniestratificada, con células cuadradas, generalmente papilosas (Fig. 6A-C). Por debajo de la epidermis hay una zona de parénquima con células isodiamétricas, con rafidios y escasos estiloides asociados a las fibras (Fig. 6D y E); estos están ausentes en M. longiflora y M. singuliflora, y los rafidios son escasos; en M. pringlei y M. pubescens pueden o no presentarse, cuando se presentan varían de escasos a abundantes. Esta zona de parénquima contiene haces vasculares colaterales discretos dispuestos en círculo. Por debajo de esta zona de parénquima, se observa un anillo de fibras, por su lignificación centrífuga y grosor de las paredes secundarias, maduran primero las fibras cercanas a la epidermis. Enseguida se observan otros haces vasculares colaterales, embebidos en células parenquimáticas, rafidios y fibras de escasas a abundantes (Fig. 6E y F). Se observan fibras asociadas al floema de M. elongata, M. galvaniae, M. guttata, M. longiflora, M. maculata, M. potosina y M. singuliflora; asociadas al floema y al xilema en M. guerrerensis, M. nanchititlensis, M. pringlei y M. pubescens. En M. scabra este carácter es variable.

Figura 6 Anatomía de la base del pedúnculo del género Manfreda (CT). A) M. pubescens cutícula estriada, epidermis con papilas moderadamente desarrolladas: B) M. potosina, cutícula estriada, epidermis papilosa. C) M. scabra, cutícula lisa, epidermis papilosa. D) M. pringlei, estiloides debajo de la epidermis. E) M. pubescens, haces vasculares con fibras asociadas al floema y xilema y médula lignificada. F) M. galvanie, médula no lignificada. Barra es 20 μm en A y C; 10 μm en B; 50 μm en D; 100 μm en E y F. Flecha: cutícula; cabeza de flecha: estiloide; llave: haz vascular. ep: epidermis; f: fibras. 

Discusión

No se registró ninguna característica anatómica propia de Manfreda, pero comparte con muchas Asparagales herbáceas la presencia de un MES, entre ellas: Agave, Aloe, Sansevieria (^{Cheadle, 1937}, ^{Chouard, 1936}, ^{Lu y Chiang, 1976}); Patersonia (^{Rudall, 1984}), Herreria montevidensis, Thysanotus spiniger (Rudall, 1995) y Polianthes (^{Solano et al., 2013}), así como la presencia de rafidios presentes en varias familias de este orden como Agavaceae, Alliaceae, Amaryllidaceae, Asparagaceae, Convallariaceae s. l., Hypoxidaceae, Orchidaceae y Themidaceae (^{Arnott, 1981}, ^{Dahlgren et al., 1985}, ^{Gutiérrez et al., 2015}, ^{Prychid y Rudall, 1999}, ^{Rudall et al., 1998b}, ^{Solano et al., 2013}, ^{Stern, 1997}). Las evidencias anatómicas con valor taxonómico que permiten delimitar especies o grupos de ellas en el género estudiado se sintetizaron en la Tabla 3 y son una combinación de caracteres a veces para más de un órgano.

Morfología vegetativa. La presencia de cormo y bulbo en un mismo individuo se encuentra en todas las especies de Manfreda analizadas y no son frecuentes en las monocotiledóneas. Estos tallos han sido interpretados como formas transicionales entre bulbos, cormos o rizomas, presentes en Pseudotrimezia y Trimezia (Iridaceae) (^{Chueirei-Chiaretto y de Menezes, 1980}, ^{Goldblatt, 1971}, ^{Rudall, 1989}); también han sido observados en Polianthes (Asparagaceae, Agavoideae), aunque en este último caso ambos tallos están bien diferenciados (^{Solano et al., 2013}). Las raíces contráctiles están ampliamente distribuidas en las monocotiledóneas y han sido descritas en Asparagales como Agave americana, Dasylirion acrotriche, Furcraea gigantea, Yucca aloifolia y Y. angustifolia (^{Rimbach, 1922}), además de varias especies de Agave, Aloe brevifolia, Dasylirion wheeleri, Hesperoyucca whipplei, Nolina bigelovii, Manfreda maculosa (^{North, Briton y Garrett, 2008}) y Polianthes (^{Solano et al., 2013}). En Agave attenuata, Agave bovicornuta, Agave celsii, Yucca elephantipes y Yucca gloriosa están ausentes (^{North et al., 2008}). Estas raíces se contraen por cambio de forma en las células del parénquima intermedias o internas, que se expanden radialmente y se acortan longitudinalmente (^{Jernstedt, 1984}, ^{Pütz, 2002}), para enterrar el tallo y evitar daños por condiciones ambientales adversas (^{North et al., 2008}).

Anatomía de la raíz. Las raíces de Manfreda tienen la estructura interna de muchas monocotiledóneas (^{Bowes, 2000}). La exodermis pluriestratificada con rafidios también ha sido registrada en Asparagales como Agave, Furcraea y Yucca. En otras Asparagales, entre ellas, Agapanthus, Anthericum y Hosta, es uniestratificada, aunque Hosta carece de rafidios (^{Kauff et al., 2000}). El anillo continuo o discontinuo de células con paredes engrosadas que rodean a la endodermis de M. guerrerensis, M. nanchititlensis, M. pubescens, M. scabra y M. singuliflora; según ^{North et al. (2008)}, es típico en raíces contráctiles y permiten que las células del parénquima medias o internas donde ocurre la contracción no se rompan, permaneciendo estas células flexibles y con paredes delgadas, para aumentar la permeabilidad del agua en la zona de contracción (^{North y Peterson, 2005}). La endodermis uniseriada también se presenta en otras Asparagales como H. whipplei (Asparagaceae) (^{North et al., 2008}), Epidendrum saxatile, Lanium avicula, Polystachia estrellensis, Prescottia oligantha y Scaphyglottis modesta (Orchidaceae) (^{Franco e Isaías, 2008}) e Iris germanica (Iridaceae) (^{Meyer, Seago y Peterson, 2009}).

En Asparagales el periciclo puede ser uni, bi o multiseriado, en Manfreda es del primer tipo y también se presenta en Agapanthus, Allium, Dracaena, Eriospermum, Sansevieria y Tulbaghia, entre otros géneros, mientras que en Aphyllanthes, Beaucarnea, Dasylirion, Nolina y Yucca es pluriestratificado (^{Kauff et al., 2000}). Las raíces de las manfredas presentan una región central de parénquima, que autores como ^{Kauff et al. (2000)} describieron para Agave, Beaucarnea, Dracaena, Furcraea, Nolina y Yucca, y la llaman médula; sin embargo, este término no debería emplearse porque no es homólogo a la médula de los tallos.

Anatomía del cormo. En el cormo de Manfreda se observa un MES. Su presencia confirma la hipótesis de ^{Rudall (1995)}, quien sugirió que este tejido es común en Agavaceae, el cual ha sido descrito en Agave y Furcraea, además de Polianthes (^{Solano et al., 2013}). ^{Tomlinson y Zimmermann (1969)} también observaron este meristemo en otros géneros de Agavaceae, entre ellos Yucca. ^{Cattai y de Menezes (2010)} demostraron que el MES en Cordyline fructicosa se origina a partir del periciclo. Según ^{Rudall (1984)}, este tejido se desarrolla en tallos hipógeos de Patersonia, un género endémico de Australia y Asia. Pocas especies de monocotiledóneas no arborescentes tienen MEP y MES, como Eucomis (^{Reyneken y van der Schijff, 1972}), Allium (^{de Mason, 1979}), varias especies con tallos rizomatosos de Liliaceae s. l. (^{Coetzee y van der Schijff, 1969}), algunos miembros de Iridaceae (^{Rudall, 1984}), Polianthes (^{Solano et al., 2013}) y ahora Manfreda, todas ellas clasificadas como hierbas perennes, porque la parte aérea desaparece durante la época desfavorable del año.

El tejido fundamental del tallo de las monocotiledóneas comúnmente contiene oxalato de calcio en forma de rafidios (^{de Cordemoy, 1893}). ^{Chin-Yi y Chiang (1976)} indicaron la presencia de rafidios y estiloides en el MEP, en el MES y en el parénquima cortical de Agave rigida y Aloe vera. En Polianthes se observa un patrón similar (^{Solano et al., 2013}) y ahora en las especies de Manfreda aquí estudiadas, con rafidios y estiloides en los tejidos primarios y secundarios. En la mayoría de las especies de Manfreda los rafidios son abundantes, únicamente en M. pringlei y M. singuliflora son escasos. Una variación semejante fue observada en otros géneros de monocotiledóneas (^{Brittan, 1970}). Estas variaciones en el contenido de Ca del tallo ocurren usualmente en las angiospermas en el nivel de orden y en categorías taxonómicas superiores, en general, el contenido de Ca del tallo es mayor en los órdenes de eudicotiledóneas, comparado con las monocotiledóneas (^{Broadley et al., 2003}). En este grupo de plantas muchos órdenes de Commelinoides, entre ellas, Arecales, Commelinales, Poales y Zingiberales, tienen menor contenido de Ca que otros órdenes, por ejemplo, en Asparagales (^{Broadley et al., 2003}), como registraron en Polianthes ^{Solano et al. (2013)}.

La presencia de cuerpos de sílice en Asparagales fue observado por primera vez en el parénquima de la región central del cormo en Polianthes (^{Solano et al., 2013}) y ahora en las especies de Manfreda analizadas en este trabajo, excepto en M. hauniensis. Este resultado incrementa el número de órdenes registrados por ^{Prychid, Rudall y Gregory (2004)} con este contenido mineral. Los cuerpos de sílice usualmente se encuentran en la epidermis (e.g., en gramíneas, comelinas y juncos), esclerénquima subepidérmico y en la vaina de los haces vasculares (e.g., palmas, bananas y orquídeas (^{Prychid et al., 2004}), pero raros en el parénquima de los tallos. Según ^{Solano et al. (2013)}, los cuerpos de sílice en Polianthes contienen el 21-25% de Si, el 24-40% de O, el 3-6% de Al y el 2-3% de K; es probable que una composición similar se presente en los cuerpos de sílice de las especies de Manfreda, porque tienen una fuerte similitud a los observados con microscopia de luz en Polianthes (^{Solano et al., 2013}). Los cuerpos de sílice tienen valor diagnóstico en la delimitación de las subfamilias y géneros de Asparagales; este valor también fue indicado para otras monocotiledóneas por ^{Dahlgren (1980)} y ^{Prychid et al. (2004)}.

Haces vasculares colaterales han sido observados en varias especies de mocotiledóneas (^{Ye, 2002}), como Trimezia martinicensis y Neomarica nortiana, además de Polianthes (^{Solano et al., 2013}). Haces vasculares anfivasales también han sido descritos en mocotiledóneas como Yucca whipplei y varias especies de Iris y Patersonia (^{Tomlinson y Zimmermann, 1969}, ^{Rudall, 1984}). En este grupo de plantas con atactostele típica, durante el crecimiento primario es difícil diferenciar el córtex y el cilindro vascular, como ocurre en Beaucarnea (^{Stevenson, 1980}), Polianthes (^{Solano et al., 2013}) y en las especies de Manfreda aquí analizadas. Sin embargo, cuando el MES ha iniciado su actividad y el crecimiento secundario se ha establecido como en Polianthes (^{Solano et al., 2013}) y Manfreda, es posible diferenciar ambas regiones. Los haces vasculares primarios y secundarios son continuos; estos últimos producen centrípetamente el MES, que se dispone en líneas radiales separadas por células parenquimáticas; este mismo patrón fue descrito en Polianthes por ^{Solano et al. (2013)} y ahora en Manfreda. ^{Chin-Yi y Chiang (1976)} y ^{Diggle y de Mason (1983)} observaron que, en sección transversal, los haces vasculares primarios de Aloe son pequeños, con poco xilema y floema, comparados con los haces secundarios.

Con respecto a la peridermis, en Aloe y Agave el felógeno tiene crecimiento bidireccional y se origina del parénquima subepidérmico por divisiones celulares periclinales (^{Chin-Yi y Chiang, 1976}). En Polianthes el felógeno es unidireccional, probablemente, este crecimiento se relaciona con el tamaño pequeño del cormo de estas plantas, en comparación con otras especies de monocotiledóneas (^{Solano et al., 2013}). En Manfreda el felógeno también tiene desarrollo unidireccional, el cual se asocia a la talla pequeña de las plantas de este género.

Anatomía de la hoja. En las monocotiledóneas el perfil de la lámina abierta de las hojas maduras en sección transversal es un carácter diagnóstico en el nivel de especie (^{Rudall y Mathew, 1993}). Sin embargo, en Polianthes se describieron 2 tipos de perfil recto y en forma de «U». Ambos tipos de perfil se presentan en individuos de la misma especie, por lo tanto, el carácter no es diagnóstico en este nivel taxonómico, es probable que el perfil de la lámina este en función del grado de desarrollo de la misma (^{Solano et al., 2013}). En Manfreda la mayoría de las especies tienen perfil de la lámina madura en forma de «V» abierta o ligeramente ondulada, únicamente es recta en M. potosina, M. pubescens y M. singuliflora. En otras Asparagales, como Iris juncea, la lámina es oval, en Iris subgénero Hermadactyloides cuadrada o en forma de «V» para Iris xanthoclora (^{Rudall y Mathew, 1993}) y varias especies de Milla (^{Gutiérrez et al., 2015}).

La cutícula gruesa (2.21-2.85 μm) separa a M. nanchititlensis. La cutícula gruesa es característica de otros géneros de Agavaceae con hojas persistentes, adaptados a climas secos, como Agave, Beschorneria, Furcraea y Yucca (^{Álvarez, 1990}, ^{Blunden y Binns, 1970}), aunque Manfreda tiene hojas caducas. Solo M. elongata tiene papilas en el envés y las macropapilas en esta región caracterizan a M. guttata. Las papilas también han sido registradas sobre las venas de Beschorneria, Prochnyanthes, Hesperaloe, Yucca (^{Verhoek-Williams, 1998}) y Polianthes (^{Solano et al., 2013}).

Los tricomas son poco comunes en la familia Agavaceae; cuando se presentan estos son simples (^{Verhoek-Williams, 1998}). Por ejemplo, se han observado en la lámina de Polianthes graminifolia (^{Solano et al., 2013}) y aquí se encontraron en M. pubescens. La lámina es anfiestomática. El complejo estomático es variable en Agavaceae. En la mayoría de las especies de Manfreda analizadas en este estudio los estomas son paracíticos. ^{Álvarez (1990)} y ^{Solano et al. (2013)} también los observaron en Polianthes. Aunque ^{Shah y Gopal (1970)} indican que en P. tuberosa son anomocíticos; tetracíticos en Agave, Beschorneria, Clistoyucca, Furcraea, Hesperaloe, Hesperoyucca, Samuela y varias especies de Yucca (^{Álvarez, 1990}, ^{Blunden y Jewers, 1973}, ^{Gentry y Sauck, 1978}); en otras especies de este último género son anomocíticos (^{Blunden y Binns, 1970}). En Manfreda variegata se distingue un reborde que rodea a las células oclusivas; este también fue descrito por ^{Álvarez (1990)} en Manfreda brachystachya (= M. scabra) como una ligera proyección o labio, aunque en este trabajo el reborde se observó paralelo a las células oclusivas de esta especie. Este reborde se considera una adaptación de muchas agaváceas a condiciones de sequía severa y su función se relaciona con la pérdida de agua (^{McCledon, 1908}, ^{Roux-López, 1964}).

^{Blunden y Jewers (1973)} refieren que en Agavaceae el parénquima en empalizada puede o no estar presente, como se ha confirmado para Beschorneria, Polianthes (^{García-Mendoza, 1987}, ^{Solano et al., 2013}) y ahora Manfreda con solo parénquima esponjoso. ^{Goldblatt (1990)} menciona que al menos en Iridaceae el mesofilo indiferenciado es plesiomórfico. Los rafidios son las inclusiones minerales más comunes en las monocotiledóneas (^{Grayum, 1990}, ^{Nicholson, 1960}, ^{Prychid y Rudall, 1999}); esta generalización fue corroborada en Polianthes por ^{Solano et al. (2013)}, donde solo en Polianthes densiflora están ausentes. En Manfreda estos idioblastos también están presentes en todos los órganos estudiados, excepto en la raíz de M. hauniensis.

Anatomía de la base del eje de la inflorescencia. La cutícula de este órgano por lo general es lisa; se observa estriada únicamente en M. pubescens. En Polianthes la cutícula de la base del eje de la inflorescencia es generalmente lisa (^{Solano et al., 2013}). En la mayoría de las especies de Manfreda analizadas en este trabajo, la cutícula es gruesa a moderadamente gruesa. En todas las especies de Manfreda se observa una banda de esclerénquima que funciona como soporte del eje floral. Una banda similar ha sido observada en Thysanotus (Asparagaceae), varias especies de Iridaceae y Xyridaceae (^{Brittan, 1970}, ^{Rudall, 1984}, ^{Scatena et al., 2011}), además en 13 especies de Polianthes (^{Solano et al., 2013}). Es pertinente señalar que es necesario evaluar este carácter en otros géneros de Asparagaceae, para entender su significado evolutivo. Según ^{Brittan (1970)}, las fibras asociadas a los haces vasculares pueden o no estar presentes en las especies de un mismo género. Esta situación también fue observada en Polianthes (^{Solano et al., 2013}) y ahora en Manfreda.

Las especies de Manfedra estudiadas desarrollan 2 tipos de tallo hipógeo: un cormo y un bulbo. A diferencia de otras monocotiledóneas, en todas las especies de Manfreda analizadas se desarrolla un MES y en el cormo no se observa esclerénquima, pero casi todas las especies presentan cuerpos de sílice. Hay caracteres anatómicos únicos o combinación de ellos que permiten separar especies o grupos de especies de este género, y estos podrían utilizarse en análisis filogenéticos.