La luz es fuente de energía fundamental y señal del entorno circundante en la vida de los hongos, que usan en la regulación y dirección del crecimiento (fototropismo), reproducción asexual y sexual, y producción de pigmentos (^{Idnurm y Heitman, 2005}). Los hongos pueden responder ante una amplia gama de longitudes de onda de luz, desde la ultravioleta hasta roja lejana (^{Purschwitz et al., 2006}; ^{Fuller et al., 2015}; ^{Dasgupta et al., 2016}). Además, se ha comprobado que la infección por una gama de patógenos puede verse afectada por el entorno de luz del huésped antes de la inoculación (^{Meijer y Leuchtmann, 2000}; ^{Koh et al., 2003}). Existe evidencia que la liberación de esporas por esos organismos es influida por la luz en los ecosistemas (^{Su et al., 2000}).

La luz también puede inhibir directamente la germinación de esporas y/o el crecimiento del tubo germinativo en diversos hongos patógenos de plantas (^{Mueller y Buck, 2003}; ^{Beyer et al., 2004}), al respecto, películas plásticas que transmiten más luz azul son eficaces para suprimir la esporulación de mildius y Botrytis cinerea (^{Reuveni y Raviv, 1997}). El objetivo del presente trabajo de investigación fue determinar el efecto que ocasiona la calidad de luz emitida por lámparas fluorescentes de luz blanca fría (LBF), luz blanca neutra (LBN) y luz blanca cálida (LBC) sobre el crecimiento radial del micelio, biomasa y producción de esclerocios de Sclerotium rolfsii cultivado in vitro.

La investigación se realizó en el Laboratorio de Fisiología y Anatomía Vegetal de la Facultad de Agronomía, Universidad Autónoma de Sinaloa, ubicada en las coordenadas 24° 37’ 29” latitud norte y 107° 26’ 36” longitud oeste, con altitud de 38.5 msnm. Se utilizaron cámaras de crecimiento de 44 x 70 x 80 cm (largo, ancho y alto, respectivamente), con paredes de malla tejida con 16 x 16 monofilamentos cristalinos de polietileno de alta densidad por cm², costados revestidos con papel Mylar de alta reflectancia y sistema de iluminación con lámparas fluorescentes compactas, tipo espiral (FLE23HLX, General Electric, EE. UU.) de luz blanca fría (LBF: 6500 K), neutra (LBN: 4000 K) y cálida (LBC: 2700 K) y con un fotoperiodo de 12 h (Figura 1).

Figura 1 Cultivo in vitro de Sclerotium rolfsii en cámara de crecimiento con lámparas fluorescentes de luz blanca fría (izquierda), neutra (centro) y cálida (derecha). 

Se realizaron mediciones espectrales de flujo de fotones, en el rango de 350 a 1050 nm a intervalos de 1 nm, con espectrorradiómetro (Field SpecPro^®VNIR, ASD Inc., EE. UU.). A partir de los datos obtenidos en dichas mediciones, se determinaron las cantidades absolutas de luz azul (A: 400 a 500 nm), luz roja (R: 600 a 700 nm) y luz roja lejana (RL: 700 a 800 nm); así como, las cantidades proporcionales de luz azul a roja (A: R), azul a roja lejana (A: RL), roja a azul (R: A) y roja a roja lejana (R: RL), en cada cámara de crecimiento (Cuadro 1).

Las temperaturas registradas con termohigrómetros data-logger (CM-DT171, Twilight, México), promediaron 24.7, 24.6 y 24.2 °C en las cámaras de LBF, LBN y LBC, respectivamente. El patógeno de Sclerotium rolfsii se obtuvo de la colección de hongos fitopatógenos de la Facultad de Agronomía de la Universidad Autónoma de Sinaloa. La siembra y purificación del patógeno se realizó en medio papa dextrosa agar (PDA), a una temperatura de 28 °C.

Se utilizó un diseño experimental completamente al azar con tres tratamientos (LBF, LBN y LBC) y diez repeticiones (una caja de Petri por repetición). Las variables de respuesta evaluadas fueron: crecimiento radial del hongo en medio PDA, el cual se midió cada 8 h con un vernier digital (6MP, Truper Herramientas, México), producción de esclerocios, la cual se obtuvo contando de manera visual los esclerocios en cada caja Petri, después de 10 días de exponerlos a la luz; así como la producción de biomasa del micelio, obtenida luego de separar el micelio del medio de cultivo, posteriormente fueron puestos en papel filtro, para depositarlos en horno (FE293AD, Felisa, México) a 70 °C de secado hasta peso seco constante, determinado con balanza analítica (SA120, Scientech, EE. UU). Los datos obtenidos fueron sometidos al análisis de varianza, comparación de medias con la prueba de Tukey (5%) y análisis de regresión lineal simple, mediante el paquete estadístico MInitab 16CA versión 7.0.

La calidad de luz emitida por las lámparas fluorescentes originó efectos significativos (p≤ 0.05) sobre el crecimiento radial de Sclerotium rolfsii. Así, después de 8 h de exposición a la luz (HEXL), el crecimiento del hongo, bajo la influencia de LBN y LBC, superó en los respectivos 9.01 y 6.56% al mencionado crecimiento del hongo que recibió LBF (Cuadro 2). Efectos semejantes se encontraron a las 16 y 24 HEXL, de tal forma que dicho crecimiento del hongo aumentó 14.02 y 7.48%, así como 13.87 y 19.34%, respectivamente. Al término de 32 HEXL los incrementos fueron de 11.69 y 19.08, a las 40 HEXL de 13.12 y 18.32, a las 48 HEXL de 13.03 y 29.06, a las 56 HEXL de 14.02 y 32.34 y a las 64 HEXL de 16.32 y 28.27%.

Estos resultados se pueden entender al considerar que existe evidencia científica que describe cómo la calidad de la luz en términos de longitud de onda juega un rol importante en el crecimiento y reproducción de los hongos. La luz azul inhibe directamente la germinación de esporas y el crecimiento del tubo germinativo en muchos hongos patógenos de plantas (^{Mueller y Buck, 2003}; ^{Beyer et al., 2004}). También, ^{Yu et al. (2013}) comprobaron que la luz azul afectó la germinación de conidios de Oidium, pero que esa calidad de luz es indispensable para mantener la virulencia del patógeno. Además, la irradiación de luz azul inhibió el crecimiento del micelio de Aspergillus carbonarius y Aspergillus westerdijkiae (^{Cheong et al., 2016}).

La producción de esclerocios de S. rolfssi también presentó diferencias significativas (p≤ 0.05) debidas a la calidad de luz emitida por las lámparas fluorescentes (Figura 2a), ya que el hongo cultivado bajo el efecto de LBC produjo el mayor número de esclerocios, seguido por LBN, los cuales superaron al hongo crecido bajo el efecto de LBF en 27.63 y 16.5%, respectivamente. Esto coincide con lo reportado por ^{Schmidt-Heydt et al. (2011}), ya que ellos señalan que la irradiación de luz azul inhibe la formación conidial de algunas cepas de Aspergillus. En cuanto a la producción de biomasa de micelio, la calidad de luz emitida por las lámparas fluorescentes también originó efectos significativos (p≤ 0.05), toda vez que el hongo cultivado en condiciones de LBF produjo 57.14% menos cantidad de biomasa, que con el manejo en LBN y LBC (Figura 2b).

Figura 2 Influencia de la calidad de luz, emitida por lámparas fluorescentes de luz blanca fría (LBF), neutra (LBN) y cálida (LBC), en la formación de esclerocios (a) y biomasa de micelio (b) de Sclerotium rolfsii cultivado in vitro. 

El análisis de regresión lineal simple entre la cantidad de luz azul (absoluta y proporcional) y el crecimiento radial, producción de esclerocios y biomasa de S. rolfsii en las tres tratamientos (LBF, LBN y LBC) indicó una relación negativa (Figura 3), de tal manera que las progresivas disminuciones en la producción de esclerocios, crecimiento radial y producción de biomasa de S. rolfsii se explican en los respectivos 98.3, 98.8 y 73.3%, debido al efecto que ocasionaron los incrementos de luz azul absoluta (Figuras 3a, 3d y 3g); en 100, 100 y 82.7%, por causa de los incrementos en la proporción de luz azul con respecto a luz roja (Figuras 3b, 3e y 3h) y en 99.2, 99.5 y 76.7%, debido a los aumentos en la proporción de luz azul con respecto a la luz roja lejana (Figuras 3c, 3f y 3i), respectivamente.

Figura 3 Interaccion entre producción de esclerocios (PE), crecimiento radial de micelio (CR) y biomasa del micelio (BM) de Sclerotium rolfsii con cantidades absolutas de luz azul (A) y proporcionales con respecto a luz roja (A:R) y roja lejana (A:RL). 

En la presente investigación se encontró que una cantidad mayor de luz azul, y menor de roja y roja lejana, origino efectos negativos sobre el crecimiento radial, la producción de esclerocios y biomasa de S. rolfsii.

La cantidad absoluta de luz azul, así como las cantidades proporcionales de luz azul con respecto a luz roja y roja lejana, variaron con LBF, LBN o LBC (Cuadro 1). Se encontró que la respuesta negativa sobre S. rolfssi fue directamente proporcional a la cantidad de luz azul en el ambiente e inversamente proporcional a la cantidad de roja y roja lejana, lo que sugiere que es la fracción azul del espectro luminosos y no la roja la que originó efectos negativos en el patógeno, respuesta que concuerda con lo reportado por ^{Canessa et al. (2013}) para Botrytis cinerea y ^{Kim et al. (2011}) para Cercospora zeae-maydis.

La menor o mayor producción de esclerocios (Figuras 3a, 3b y 3c), así como la disminución o incremento del crecimiento radial (Figuras 3d, 3e y 3f) y biomasa de S. rolfsii (Figuras 3g, 3h y 3i) son respuestas que no tienen relación con las temperaturas presentadas en las tres diferentes cámaras, debido a que hubo variación máxima de 0.5 °C entre ellas.