texto en 
Inglés (pdf)
Artículo en XML
Referencias del artículo
Traducción automática
Enviar artículo por email
Citado por SciELO 
Similares en
SciELO 
Permalink
INTRODUCCIÓN
La coccidiosis actualmente demuestra ser una enfermedad protozoaria importante y urgente en la industria avícola en todo el mundo (Dalloul y Lillehoj, 2006). La coccidiosis es causada por un parásito protozoario del género Eimeria. El ciclo de vida de los parásitos coccidiales incluye etapas de replicación asexual y sexual y comienza cuando un ave ingiere oocistos esporulados del medio ambiente, como describen Conway y McKenzie (2007) Después de la ingestión, cuatro esporoquistes contenidos en un solo oocisto esporulado liberan dos esporozoitos. La liberación de los esporozoitos es causada por la actividad digestiva dentro del pollo. Los esporozoitos liberados "invadirán las células epiteliales en una zona específica del intestino o ceca"; que depende de la especie Eimeria (Chapman, 2003). Dentro de la célula, los esporozoítos se convierten en trofozoítos y se alimentan durante 12 a 48 para crecer y finalmente dividirse asexualmente a través de esquizogonia o merogonía; esta etapa se conoce como esquizonte o meront. Dentro del parásito, las etapas de merozoito se forman y se liberan después de que el esquizonte madura y se rompe, lo que toma tres días. Esta primera generación de merozoitos invadirá más células epiteliales y repetirá el proceso de multiplicación. La segunda generación de merozoitos puede inducir un tercer ciclo esquizogónico; esto también depende de la especie Eimeria. Se formarán gametocitos masculinos (microgametocitos) y femeninos (macrogametocitos). Los macrogametocitos se convertirán en macrogametos. Los microgametocitos madurarán, se romperán y liberarán microgametos biflagelados que fertilizan a los macrogametos femeninos. Después de la fertilización, “se forma una pared engrosada alrededor del macrogameto, formando un cigoto” (Conway y McKenzie, 2007; McDougald and Fitz-Coy, 2013). Al final de este ciclo, se forma un nuevo ooquiste que pasará a través de los excrementos del ave después de romper su célula huésped (Tewari y Maharana, 2011).
Los oocistos de Eimeria spp, de una o varias infecciones simultáneas, se excretan en las heces durante un período de varios días. La excreción de oocistos comienza en un nivel bajo, alcanza una meseta y luego disminuye hasta que la enfermedad sigue su curso (Clarke, 1979; Williams, 1973). Curiosamente, varios investigadores han informado que los recuentos de oocistos difieren entre las recolecciones de muestreo matutino y vespertino (Hudman et al., 2000; Brown et al., 2001). Esta variabilidad se ha reconocido durante varios años, pero en gran medida se ha pasado por alto (Misof, 2004). Sin embargo, recientemente se ha demostrado que el día posterior a la inoculación y la hora del día en que se recolectan las muestras pueden tener un efecto significativo en la confiabilidad y validez de los datos (Brawner y Hill, 1999). Por lo tanto, el propósito del presente estudio fue evaluar la influencia de la variación en la excreción de oocistos y el día de muestreo sobre el desafío experimental con Eimeria maxima y Eimeria acervulina en pollos de engorde.
MATERIAL Y MÉTODOS
Cepas de desafío
El Dr. John R. Barta proporcionó oocistos de Eimeria maxima M6 (EM) y E. acervulina (EA) de tipo salvaje, Universidad de Guelph, Canadá. Los métodos para detectar y recuperar oocistos de pollos infectados, esporulación de oocistos y preparación de dosis infecciosas, se llevaron a cabo como se describió anteriormente (Haug et al., 2006). Se llevó a cabo un estudio de titulación de la dosis para determinar la dosis de co-desafío de coccidia EM/EA antes de comenzar el ensayo experimental. A los 13 días de edad, los pollos de engorde se pesaron, se dividieron en tres grupos (n=15/grupo) y se desafiaron con tres dosis diferentes (10,000, 20,000 o 40,000) de oocistos esporulados en 1 mL de volumen por sonda oral. El cuarto grupo de pollitos se mantuvo como control negativo. Cinco días después de la exposición, se registraron el peso corporal (PC) y la ganancia de peso corporal (GPC). En el presente estudio, los pollos expuestos fueron alimentados por sonda oral a las 9:00 am con el cultivo mixto de EM/EA (10,000 EM esporulados que contienen 4% de EA de tipo salvaje) a los 14 días de edad ya que esta dosis redujo el BWG en un 35.82%. Esto se basa en el criterio de que la dosis de provocación debe causar coccidiosis subclínica, que consiste en una reducción entre el 25-35% del GPC sin la presencia de signos clínicos.
Fuente animal y diseño experimental
Se pesaron 240 pollos de engorde Cobb-Vantress machos de un día de edad (Fayetteville, AR, EE. UU.) Y se asignaron al azar a uno de tres grupos con diez repeticiones (n = 8 pollos/repetición). Los pollos se colocaron en jaulas en batería, con un ambiente controlado apropiado para la edad: Grupo 1) Control negativo (sin desafío ni tratamiento); 2) Control de desafío (solo desafío de Eimeria); 3) Desafío + Salinomicina a 60 g/tonelada (Bio-Cox 60, Huvepharma, Peachtree City, GA 30269). Los pollitos recibieron acceso ad libitum al agua y al alimento durante 23 días. Se formuló una dieta de iniciación experimental (Tabla 1) para aproximar los requisitos nutricionales de los pollos de engorde según lo recomendado por el Consejo Nacional de Investigación (NRC, 1994) y se ajustó a las recomendaciones de los criadores Cobb, 2015). Los pollos recibieron 23 horas de luz del día primero al cuarto, 20 horas de luz del día 5 al 14 y 18 horas de luz del día 15 al 23. La intensidad de la luz se fijó en una vela de 30 pies la primera semana, una vela de 1 pie de los días ocho a catorce, y una vela de 0.5 pies de los días 15 a 23. La temperatura y la luz se establecieron para imitar las condiciones comerciales del día 1-21 en todas las habitaciones con una reducción gradual de la temperatura de 32 a 24 °C y la humedad relativa a 55 ± 5 %. Los parámetros de rendimiento: peso corporal (PC), ganancia de peso corporal (GPC), consumo de alimento (CA) e índice de conversión alimenticia (ICA) se registraron los días 7, 14, 20 y 23. El día 20, la mitad de los pollos de cada réplica se pesaron y sacrificaron mientras que los pollos restantes se pesaron y sacrificaron el día 23 para evaluar las lesiones macroscópicas de acuerdo con el sistema de puntuación de Johnson y Reid (Johnson y Reid, 1970). Se evaluó el oocisto por gramo (OPG) los días seis, siete y ocho después de la exposición, y las muestras se recolectaron a las 9:00 AM y 6:00 PM todos los días, respectivamente. Todos los procedimientos de manipulación de animales cumplieron con el Comité Institucional de Uso y Cuidado de Animales (IACUC) de la Universidad de Arkansas, Fayetteville. De manera explícita, el IACUC aprobó este estudio bajo el protocolo # 21020.
Tabla 1 Composición de ingredientes y contenido de nutrientes de una dieta de iniciación de maíz y soja utilizada en todos los grupos experimentales tal cual.
| Ítem | Dieta de inicio |
|---|---|
| Ingredientes (%) | |
| Maíz | 57.34 |
| Harina de soja | 34.66 |
| Grasa de ave | 3.45 |
| Fosfato dicálcico | 1.86 |
| Carbonato de calcio | 0.99 |
| sal | 0.38 |
| DL-metionina | 0.33 |
| L-lisina HCl | 0.31 |
| Treonina | 0.16 |
| Premezcla de vitaminas1 | 0.20 |
| Premezcla mineral2 | 0.10 |
| Cloruro de colina 60% | 0.20 |
| Antioxidante3 | 0.02 |
| Análisis calculado | |
| Energía metabolizable (kcal / kg) | 3,035 |
| Proteína cruda (%) | 22.16 |
| Extracto de éter (%) | 5.68 |
| Lisina (%) | 1.35 |
| Metionina (%) | 0.64 |
| Metionina + cistina (%) | 0.99 |
| Treonina (%) | 0.92 |
| Triptófano (%) | 0.28 |
| Calcio total | 0.90 |
| Fósforo disponible | 0.45 |
| Análisis determinado | |
| Proteína cruda (%) | 21.15 |
| Extracto de éter (%) | 6.05 |
| Calcio (%) | 0.94 |
| Fósforo (%) | 0.73 |
1 La premezcla de vitaminas se suministró por kg: vitamina A, 20.000 UI; vitamina D3, 6.000 UI; vitamina E, 75 UI; vitamina K3, 6,0 mg; tiamina, 3,0 mg; riboflavina, 8,0 mg; ácido pantoténico, 18 mg; niacina, 60 mg; piridoxina, 5 mg; ácido fólico, 2 mg; biotina, 0,2 mg; cianocobalamina, 16 µg; y ácido ascórbico, 200 mg (Nutra Blend LLC, Neosho, MO 64850). 2Se suministró una premezcla de mineral por kg: manganeso, 120 mg; zinc, 100 mg; hierro, 120 mg; cobre, 10 a 15 mg; yodo, 0,7 mg; selenio, 0,4 mg; y cobalto, 0,2 mg (Nutra Blend LLC, Neosho, MO 64850). 3Etoxiquina.
Análisis estadístico y de datos
Las puntuaciones de las lesiones, los oocistos por gramo y los datos de rendimiento se sometieron a ANOVA como un diseño completamente al azar utilizando el procedimiento GLM de SAS (SAS, 2002). Para los parámetros de rendimiento del crecimiento (PC, GPC, CA y ICA), cada jaula replicada se consideró como una unidad experimental. Las medias del tratamiento se dividieron usando la prueba de rango múltiple de Duncan a P <0,05, lo que indica significación estadística.
RESULTADOS Y DISCUSIÓN
Los resultados de la evaluación del peso corporal, la ganancia de peso corporal, el consumo de alimento y la índice de conversión alimenticia en pollos de engorde desafiados con coccidios se resumen en la Tabla 2. Los tres grupos comenzaron con un peso corporal similar; sin embargo, en el día 7, hubo un aumento en el peso corporal de los pollos tratados con salinomicina. Para el día 20 (6 días después de la exposición), el grupo de control negativo (no desafiado o tratado) y el grupo tratado con salinomicina de desafío mostraron un aumento significativo en el peso corporal en comparación con el grupo de control desafiado (P <0.05). Curiosamente, el día 23 (9 días después de la exposición), solo hubo diferencias significativas en el peso corporal entre el grupo de control negativo y el control de exposición. Se observó una tendencia similar en GPC e ICA. No se observaron diferencias significativas en CA entre los tres grupos (Tabla 2).
Tabla 2 Evaluación del peso corporal, la ganancia de peso corporal, la ingesta de alimento y el índice de conversión alimenticia en pollos de engorde desafiados con coccidios.
| Ítem | Control negativo (sin desafío ni tratamiento) | Control de desafío (solo desafío de Eimeria) | Salinomicina sódica tratada con desafío + (60 g/ton) |
|---|---|---|---|
| Peso corporal (g) | |||
| d 0 | 46.60 ± 0.19 | 46.16 ± 0.36 | 46.70 ± 0.42 |
| d 7 | 145.05 ± 2.16 ba | 144.48 ± 2.51 ba | 148.95 ± 2.33 a |
| d 14 | 401.30 ± 7.28 bc | 402.63 ± 9.21 bac | 429.16 ± 5.11 a |
| d 20 | 736.14 ± 11.23 a | 671.97 ± 16.35 b | 751.09 ± 8.00 a |
| d 23 | 927.51 ± 20.06 a | 781.25 ± 42.28 b | 881.38 ± 23.87 ba |
| Ganancia de peso corporal (g) | |||
| d 0 to 7 | 98.45 ± 2.13 ba | 98.31 ± 2.54 ba | 102.25 ± 2.36 a |
| d 7 to 14 | 256.26 ± 6.15 | 258.16 ± 7.55 | 280.21 ± 3.82 a |
| d 14 to 20 | 334.84 ± 5.67 a | 269.34 ± 11.69 b | 321.93 ± 5.47 a |
| d 0 to 23 | 890.31 ± 29.18 a | 735.65 ± 42.60 b | 834.03 ± 23.61 |
| Ingesta de alimento (g) | |||
| d 0 to 14 | 609.89 ± 12.51 | 621.93 ± 16.27 | 641.06 ± 15.45 |
| d 0 to 20 | 930.19 ± 37.87 | 909.81 ± 36.98 | 770.41 ± 30.53 |
| d 0 to 23 | 1323.79 ± 31.08 | 1198.68 ± 57.19 | 1325.55 ± 29.11 |
| Índice de conversión alimenticia (ajustada) | |||
| d 0 to 14 | 1.50 ± 0.03 | 1.53 ± 0.03 | 1.50 ± 0.04 |
| d 0 to 20 | 1.44 ± 0.01 b | 1.49 ± 0.02 | 1.45 ± 0.02 |
| d 0 to 23 | 1.41 ± 0.06 b | 1.54 ± 0.03 | 1.51 ± 0.03 |
Los pollos se expusieron a Eimeria maxima (M6) y Eimeria acervulina (tipo salvaje) mediante sonda oral a los 14 días. a-c Los valores medios en la misma fila que no comparten una letra común difieren significativamente (P <0.05). Cada valor representa la media ±error estándar. Diez repeticiones, n = 8.
La Tabla 3 muestra los resultados de la evaluación del recuento de oocistos de E. maxima por gramo en las heces de pollos de engorde desde el día 6 hasta el día 8 después de la exposición a diferentes momentos del día, el promedio por día. Aunque hubo cierta recuperación de oocistos de pollos de control no tratados y no desafiados, hubo significativamente menos OPG en este grupo en comparación con ambos grupos de desafío. No se observaron diferencias significativas en OPG entre ambos grupos de desafío durante los tres días de evaluación (Tabla 3). En el presente estudio, fue notable encontrar que los oocistos EM se excretaron en cantidades muy altas el día 6 después de la exposición por la noche para los tres grupos experimentales. Al combinar y obtener la OPG promedio, el día 6 mostró un mayor número de oocistos EM, y se observaron las diferencias significativas esperadas entre las OPG entre los tres grupos experimentales (Tabla 3). De manera similar, se encontraron diferencias significativas en las puntuaciones de lesiones para EM para ambos días de evaluación (20 y 23 días) entre los tres grupos experimentales. No obstante, se recuperó un mayor número de oocistos el día 20 en ambos grupos desafiados en comparación con el día 23 (Tabla 3). En el presente estudio, los pollos de control negativo fueron asignados aleatoriamente a los grupos experimentales que fueron desafiados con coccidios. Quizás, esa es la razón por la que estos pollos mostraron alguna infección, debido a la contaminación cruzada de heces entre las jaulas. Claramente, en estudios futuros, los pollos de control negativo deben colocarse en una habitación separada y si esto no es posible, en jaulas separadas y aisladas.
Tabla 3 Evaluación de oocistos de E. maxima por recuento de gramo1 en las heces de pollos de engorde del día 6 al día 8 después de la exposición en diferentes momentos del día y promedio por día.
| Tratamiento | Día 6 / 9:00 AM (día 20) | Día 6 / 6:00 PM (día 20) | Día 6 Promedio AM/PM | Día 7 / 9:00 AM (día 21) | Día 7 / 6:00 PM (día 21) | Día 7 Promedio AM/PM | Día 8 / 9:00 AM (día 22) | Día 8 / 6:00 PM (día 22) | Día 8 Promedio AM/PM |
|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|
| Control | 239 ± | 1,880 ± | 1,059 ± | 2,214 ± | 465 ± | 1,340 ± | 312 ± | 504 ± | 408 ± |
| negativo | 123.12b z | 350.09b y | 192.37 b z | 2,055.28b y | 164.91b z | 1,080.81 b z | 247.92b z | 399.77b z | 319.28 b y |
| Control de | 39,756 ± | 392,859 ± | 216,308 ± | 258,783 ± | 73,803 ± | 166,293 ± | 39,751 ± | 12,844 ± | 26,298 ± |
| desafío | 8,540.64a y | 53742.38a y | 26,680.84 a x | 34093.03 a w | 20,753.83 a x | 24,541.92 a y | 10,808.39 a y | 2,256.07 a z | 5888.63 a z |
| Desafío + | 28,060 ± | 304,517 ± | 166,288 ± | 180,752 ± | 86,940 ± | 133,846 ± | 23,440 ± | 11,966 ± | 17,703 ± |
| Salinomicina sódica tratada | 11,708.46a y | 31,024.37a y | 11,708.46 a y | 39,771.21a w | 22,231.97a x | 39,771.21 a y | 5,199.72a yz | 1,207.11a z | 5199.72 a z |
Los resultados de la evaluación de oocistos de E. acervulina por recuento de gramos en las heces de pollos de engorde del día 6 al día 8 después de la exposición en diferentes momentos del día, el promedio por día y las puntuaciones de lesiones en los días 20 y 23 se resumen en Tabla 4. Se observó una tendencia similar en la OPG para EA, aunque hubo más oocistos en el día 23 en los grupos desafiados que en el día 20 (Tabla 4). Las puntuaciones de las lesiones intestinales macroscópicas en los días 20 y 23 de edad se muestran en la tabla 5. En resumen, los recuentos de oocistos fueron significativamente diferentes entre la mañana y la noche del día 6 después de la exposición. El aumento de la eliminación de oocistos en las recolecciones de muestras vespertinas está de acuerdo con estudios anteriores sobre la excreción diurna de oocistos de Eimeria spp. (Hudman et al., 2000; Brown et al., 2001; Misof, 2004).
Tabla 4 Evaluación de oocistos de E. acervulina por recuento de gramo1 en las heces de pollos de engorde del día 6 al día 8 después de la exposición en diferentes momentos del día y promedio por día.
| Tratamiento | Día 6 /9:00 AM(día 20) | Día 6 /6:00 PM(día 20) | Día 6 PromedioAM/PM | Día 7/9:00 AM(día 21) | Día 7 /6:00 PM(día 21) | Día 7 Promedio AM/PM | Día 8 /9:00 AM(día 22) | Día 8 /6:00 PM(z 22) | Día 8 PromedioAM/PM |
|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|
| Control | 83 ± | 52 ± | 55 ± 29.65cy | 0 ± 0c z | 0 ± 0b z | 0 ± 0 c z | 52 ± | 26 ± | 52 ± |
| negativo | 28.07 a y | 30.20 c y | 52.08 c y | 26.25c y | 52.21c y | ||||
| Control de | 1,000 ± | 5,993 ± | 3,497 ± | 6,656 ± | 3,007 ± | 4,831 ± | 1,800 ± | 779 ± | 1,289 ± |
| desafío | 319.03 a yz | 995.74 a w | 352.58a y | 1924.02 a w | 1266.66 a x | 1580.37a y | 212.01 ab y | 228.56 ab z | 182.52ba z |
| Desafío + | 194 ± | 1,849 ± | 1,022 ± | 2,287 ± | 1,912 ± | 2,099 ± | 1,339 ± | 552 ± | 945 ± |
| Salinomicina | 54.9 a z | 498.62 b w | 241.84b y | 335.90 b w | 514.33 a w | 270.65b y | 88.24 b x | 99.01 b y | 69.81b z |
| sódica | |||||||||
| tratada |
Los pollos fueron desafiados con Eimeria maxima (M6) y Eimeria acervulina (tipo salvaje) por sonda oral a los 14 días de edad. 1Cada valor representa la media ± error estándar. Cinco repeticiones / n=5. a-c Los valores medios en la misma columna que no comparten una letra común difieren significativamente. w-z Los valores medios en la misma fila que no comparten una letra común difieren significativamente (P <0.05). 2Cada valor representa la media ± error estándar. Diez repeticiones / n = 8. a-c Los valores medios en la misma columna que no comparten una letra común difieren significativa.
Tabla 5 Puntuaciones de lesiones intestinales macroscópicas1 en los días 20 y 23 de edad para pollos de engorde desafiados con Eimeria acervulina y E. maxima.
| Tratamiento | Eimeria acervulina | Eimera maxima | ||
|---|---|---|---|---|
| día 20 | día 23 | día 20 | día 23 | |
| Control negativo | 0.00 ± 0.00c | 0.00 ± 0.00c | 0.05 ± 0.03 c | 0.00 ± 0.00 c |
| Control de desafío | 0.80 ± 0.12a z | 1.45 ± 0.11a y | 1.93 ± 0.10 a y | 1.25 ± 0.08 a z |
| Desafío + Salinomicina sódica tratada | 0.48 ± 0.11b z | 0.90 ± 0.09b y | 1.28 ± 0.14 b y | 0.77 ± 0.09 b z |
Los pollos fueron desafiados con Eimeria maxima (M6) y Eimeria acervulina (tipo salvaje) por sonda oral a los 14 días de edad. 1Cada valor representa la media ± error estándar. Cinco repeticiones, n = 5. a-c Los valores medios en la misma columna que no comparten una letra común difieren significativamente. w-z Los valores medios en la misma fila que no comparten una letra común difieren significativamente (P <0.05). 2Cada valor representa la media ± error estándar. Diez repeticiones, n = 8. a-c Los valores medios en la misma columna que no comparten una letra común difieren significativamente (P <0.05).
La coccidiosis sigue siendo una de las enfermedades más críticas en las aves de corral y resulta en la pérdida anual de millones de dólares estadounidenses por parte de la industria avícola (Williams, 2005; Chapman, 1999). Una práctica común en el manejo de la coccidiosis es el uso de fármacos profilácticos y antimicrobianos que inhiben el desarrollo de esporozoitos/merozoitos. Sin embargo, la industria avícola ahora está experimentando una creciente resistencia a los medicamentos en las cepas de Eimeria (Abbas et al., 2012). Por lo tanto, la presión de la disminución de la eficacia química ha aumentado la demanda de nuevos métodos de tratamiento, como los productos vegetales. Dado que existen claras ventajas de un agente de control eficaz sin complicaciones con la resistencia a los fármacos de Eimeria, es conveniente buscar métodos eficaces con mecanismos alternativos a la quimioterapia anticoccidial tradicional (Naidoo et al., 2008; Masood et al., 2013). La vacunación contra la coccidiosis es una alternativa al uso de productos químicos. Al vacunar contra la coccidiosis, el sistema inmunológico natural del animal se emplea para combatir posibles infecciones en el futuro (Shivaramaiah et al., 2014). De manera convencional, se utilizan parásitos vivos o atenuados y las vacunas específicas de Eimeria pueden incorporar múltiples especies o cepas (Shivaramaiah et al., 2014). Los parásitos atenuados de Eimeria se pueden seleccionar a través de la "precocidad", en la que "cepas virulentas de Eimeria sensibles a los fármacos" se les permite pasar a través de una especie hospedadora, reproducirse y convertirse en vacunas atenuadas (Peek y Landman, 2011; Shirley et al., 2007).
Investigaciones anteriores han descrito la variación circadiana en la diseminación de oocistos en múltiples especies de aves hospedadoras (Hudman et al., 2000; Brown et al., 2001). En consecuencia, si no se tiene en cuenta la variación circadiana en la eliminación de oocistos, los resultados de tales pruebas no son confiables y pueden inducir a error (Misof, 2004). Un método adecuado para obtener datos precisos parece ser restringir el período de muestreo.
Los resultados de este estudio muestran que el día y la hora en que se recolectan las muestras pueden tener un impacto significativo en los datos y refuerzan la importancia de recolectar las muestras fecales a la misma hora del día después del desafío. Los recuentos de oocistos fueron significativamente diferentes entre la mañana y la tarde del día seis después de la exposición a coccidios. El muestreo de carga de coccidios debe restringirse a la segunda mitad del tiempo total de luz diurna. Por tanto, este período más restrictivo debe considerarse el período preferido para obtener información fiable.
CONCLUSIONES
Los resultados de este estudio muestran que el día y la hora en que se recolectan las muestras pueden tener un impacto significativo en los datos y refuerzan la importancia de recolectar las muestras fecales a la misma hora del día después del desafío. El muestreo de carga de coccidios debe restringirse a la segunda mitad del tiempo total de luz diurna. Por tanto, este período más restrictivo debe considerarse el período preferido para obtener información fiable.
Financiamiento: La investigación fue apoyada en parte por fondos proporcionados por USDA-NIFA Sustainable Agriculture Systems, Grant No. 2019-69012-29905. Título del proyecto: Empoderamiento de la producción de pollos de engorde de EE. UU. Para la transformación y la sostenibilidad USDA-NIFA (Sistemas de agricultura sostenible): No. 2019-69012-29905
Conflictos de interés: Los autores declaran no tener ningún conflicto de intereses.
