SciELO - Scientific Electronic Library Online

 
vol.47 número5Pruebas presuntivas del análisis de orina en el diagnóstico de infección en vías urinarias entre diabéticos tipo 2Enfermedades transmitidas por alimentos y PCR: prevención y diagnóstico índice de autoresíndice de materiabúsqueda de artículos
Home Pagelista alfabética de revistas  

Servicios Personalizados

Revista

Articulo

Indicadores

Links relacionados

  • No hay artículos similaresSimilares en SciELO

Compartir


Salud Pública de México

versión impresa ISSN 0036-3634

Salud pública Méx vol.47 no.5 Cuernavaca sep./oct. 2005

 

ARTÍCULO DE REVISIÓN

 

Surgimiento y diseminación de Staphylococcus aureus meticilinorresistente

 

Staphylococcus aureus methicillin-resistant: emergence and dissemination

 

 

Maria Elena Velázquez-Meza, M en C

Centro de Investigación sobre Enfermedades Infecciosas. Instituto Nacional de Salud Pública, Cuernavaca, Morelos, México

 

 


RESUMEN

Las infecciones nosocomiales ocasionadas por cepas de Staphylococcus aureus meticilinorresistentes (SAMR) son un problema de salud importante en todo el mundo. Este microorganismo produce una gran variedad de infecciones incluyendo osteomielitis, endocarditis invasora, artritis séptica y septicemia. La multirresistencia es un factor que influye en la persistencia de los SAMR dentro del ámbito hospitalario. La introducción de técnicas de tipificación molecular dentro de las investigaciones epidemiológicas ha provisto nuevas herramientas para conocer el origen y las vías de diseminación de este microorganismo. Una de las conclusiones importantes que han surgido de este tipo de estudios es que un número pequeño de clonas son las responsables de las infecciones estafilocócicas en todo el mundo.

Palabras clave: stahpylococcus; resistencia microbiana a las drogas; resistencia a la meticilina; infección hospitalaria; epidemiología molecular


ABSTRACT

Nosocomial infections due to methicillin-resistant Staphylococcus aureus (MRSA) is an important health problem worldwide. This microorganism causes a variety of clinical infections, including osteomyelitis, invasive endocarditis, septic arthritis and septicemia. Antimicrobial resistance is a factor that influences the persistence of MRSA in the hospital environment. The introduction of molecular typing techniques in epidemiological investigations has provided new tools for identifying the microorganism's origin and routes of dissemination. One of the most important conclusions that have resulted from these types of studies is that a small number of clones are responsible for most of the staphylococcal infections throughout the world.

Keywords: staphylococcus; drug resistance, microbial; methicilin resistance; cross infection; epidemiology, molecular


 

 

El nombre de estafilococos fue designado por Sir Alexander Ogston después de utilizar la expresión griega staphyle (racimo de uvas) para describir las características de crecimiento en grupos semejantes a uvas. Los estafilococos son cocos Gram positivos que miden cerca de 1 µm de diámetro, no móviles, aerobios facultativos y fermentadores de glucosa. El género Staphylococcus contiene más de 30 especies diferentes, y muchas de éstas son habitantes naturales de la piel y las membranas mucosas; no tienen otros hábitats importantes, excepto cuando están involucradas en infecciones.1

Los estafilococos crecen en medios químicamente definidos, los cuales contienen glucosa, sales, aminoácidos, tiamina y ácido nicotínico. En medios suplementados, los estafilococos crecen bien en rangos de pH de 4.8 a 9.4 y a temperaturas de 25 a 43 ºC. El color amarillo clásico de las colonias de S. aureus se debe a la producción de carotenoides; sin embargo, se presentan frecuentemente variantes no pigmentadas en muchas cepas.2

Actualmente S. aureus meticilinorresistente (MRSA) es reconocido como uno de los más importantes patógenos causantes de infecciones nosocomiales en todo el mundo; el surgimiento y la diseminación de cepas cada vez más virulentas y multirresistentes hace necesario hacer una revisión del tema; por ello, los objetivos de este trabajo son los siguientes:

1. Revisar el papel de S. aureus como comensal y patógeno humano.

2. Revisar los factores que contribuyen a la patogénesis y al incremento de la resistencia en esta bacteria.

3. Revisar los avances en estudios de epidemiología molecular del SAMR.

Comensal y patógeno humano

La elevada virulencia de S. aureus fue notificada por primera vez en un estudio publicado en 1941, en donde se identificó 82% de mortalidad asociada a pacientes con bacteremias ocasionadas por este microorganismo en un hospital de la ciudad de Boston.3 Las etapas de las infecciones causadas por S. aureus pueden resumirse de la siguiente manera: frecuentemente neonatos, niños y adultos pueden ser colonizados por S. aureus y portar el microorganismo generalmente en fosas nasales y, en ocasiones, en la piel y la ropa. Desde estos sitios, S. aureus puede transmitirse a otras regiones en la piel o a las membranas mucosas; si estas barreras son interrumpidas por un trauma o una cirugía, S. Aureus, que es un patógeno oportunista, puede acceder al tejido provocando una lesión local. Debido a su amplia versatilidad, esta bacteria es capaz de causar enfermedades de amplio espectro: infecciones menores de la piel e infecciones invasoras serias como: bacteriemia, infecciones del sistema nervioso central, osteomielitis, infecciones del tracto respiratorio, infecciones del tracto urinario y síndrome de choque tóxico.4,5

Factores de virulencia

El éxito de la colonización y la producción de enfermedades por S. aureus se debe a la expresión de factores de virulencia que participan en adhesión, adquisición de nutrientes y evasión de la respuesta inmune del huésped.6 Los factores de virulencia se clasifican en tres categorías:7 (a) factores involucrados en la adherencia de la célula huésped o matriz extracelular, proteínas de unión a fibrinogeno, fibronectina, colágeno y coagulasa; (b) factores involucrados en la evasión de las defensas del huésped, como las enterotoxinas estafilocócicas (SEs), SEA-SEE, SEG-J, SEK, SEL, SEP, SEM y SEO; la toxina 1 del síndrome de choque tóxico (TSST), proteína A, lipasas y polisacáridos capsulares, tipos 1, 5 y 8; (c) factores involucrados en la invasión de la célula huésped y penetración de los tejidos, a toxina, b, g y d hemolisinas.8-10

S. aureus como un patógeno nosocomial

En Estados Unidos de América (EUA), S. aureus ocupa el segundo lugar después de los estafilococos coagulasa negativa como causa de bacteriemia adquirida en el hospital y es una causa letal y potencial en las infecciones.11,12 En México, la Red Hospitalaria de Vigilancia Epidemiológica (RHOVE) notificó que los porcentajes de mortalidad entre pacientes infectados con S. aureus varía entre 5 y 70% y que los porcentajes de mortalidad atribuibles pueden ser elevados (50%).13 Con datos provenientes de hospitales generales, pediátricos, universitarios y de especialidades, esta misma red reportó que en el periodo de 1997-2003, S. aureus ocupó el tercer lugar en morbilidad y el cuarto lugar en mortalidad. Un hospital pediátrico de tercer nivel en México, registró un franco predominio de S. aureus relacionado con bacteriemias nosocomiales.14 Una revisión retrospectiva de 23 años, sobre las infecciones intrahospitalarias en un hospital pediátrico en Guadalara-México, reconoce que actualmente el género Staphylococcus tiene una prevalencia de 36% en esas infecciones.15 En México, diversos estudios de vigilancia de las infecciones nosocomiales indicaron que de 8.3 a 36% de esas infecciones fueron atribuibles a S. aureus.16-19

Dentro de los factores que afectan el éxito de la transmisión nosocomial de S. aureus se encuentran los siguientes: características fenotípicas y genotípicas de las cepas, factores del huésped, esquemas de tratamiento antimicrobiano y medidas de control de las infecciones implementadas en las instituciones.20 Algunas cepas de S. aureus, denominadas epidémicas, parecen tener la capacidad de distribuirse de manera exitosa dentro de los hospitales y causar infecciones serias en los pacientes. Los factores involucrados en la epidemicidad son poco claros. Los factores que incrementan la probabilidad de adquirir S. aureus en hospitales incluyen: hospitalización prolongada, procedimientos prequirúrgicos, presencia de catéteres o prótesis y la permanencia en lugares de alto riesgo: unidades de cuidados intensivos, sala de neonatos y unidades prequirúrgicas, entre otras. 21

Resistencia antimicrobiana

La introducción de la penicilina a principios de los años 40 como tratamiento en las infecciones causadas por S. aureus abatió de manera importante las infecciones ocasionadas por este microorganismo. Sin embargo, para 1946, en Inglaterra se observó que aproximadamente 60% de los aislamientos de estafilococos fueron resistentes a penicilina, y para mediados de 1950, los aislamientos de S. aureus mostraron niveles más elevados de resistencia. Los primeros aislamientos clínicos de S. aureus multirresistentes fueron recobrados en 1957, y a principios de 1960 los estafilococos habían adquirido resistencia a la gran mayoría de los antibióticos disponibles.22,23

La meticilina es un derivado semisintético de la penicilina. Esta droga fue introducida en Europa en 1959, y un año después se detectó la primera cepa de S. aureus meticilinorresistente; más tarde, en 1963, se reportó el primer brote nosocomial causado por SAMR; desde entonces se han notificado cepas de S. aureus meticilinorresistentes en todo el mundo.24

El National Nosocomial Infectious Surveillance System (NNIS) en EUA identificó en hospitales de tercer nivel un incremento del SAMR de 4%, en 1980, a 55%, en 2001. Para algunos hospitales se ha reportado una frecuencia de resistencia de hasta 80%.12 En Europa, Dinamarca, Alemania y países como los escandinavos tienen una prevalencia menor a 1%, mientras que en los países del este y sureste de Europa se prersentan porcentajes más elevados y que, en algunos partes, exceden 30%. Los países de Europa central tienen porcentajes de alrededor de 10%.25

El fenotipo que se ha visto asociado más frecuentemente con persistencia de cepas de S. aureus en el hospital es el de resistencia a meticilina. La gran mayoría de los SAMR no sólo son resistentes a todos los b-lactámicos, sino también a múltiples antibióticos. Estos patrones de resistencia limitan las opciones terapéuticas contra las infecciones del SAMR; la vancomicina y la teicoplanina son las últimas alternativas terapéuticas. Sin embargo, las primeras cepas de S. aureus con susceptibilidad disminuida a vancomicina fueron reportadas en Japón y en EUA en los años 90: a partir de entonces han aparecido más informes en la literatura.26-29

En México existe un número limitado de estudios sobre la susceptibilidad antimicrobiana en SAMR. En 1993, en el Hospital General de León, Guanajuato, se identificó una resistencia global a meticilina de 24.1 %.30 Asimismo, en el Hospital Civil de Guadalajara, se obtuvieron resultados que indicaron un incremento en la resistencia a oxacilina en S. aureus de 7%, en 1989, a 20%, en 1998.31 Un estudio llevado a cabo entre 1998 y 1999 en un hospital de tercer nivel en México registró una frecuencia de resistencia de S. aureus de 14.2%.32

Resistencia a meticilina

El elemento central de la resistencia a meticilina en S. aureus es la adquisición del gen mecA, el cual no es endógeno de esta bacteria y está integrado en el cromosoma. El gen mecA codifica para una proteína de unión a penicilina (PBP) de 78KDa (PBP2A), la cual presenta baja afinidad para los antibióticos b-lactámicos.33-36 Un estudio llevado a cabo en 1996 utilizando cepas prototipo aisladas en diferentes continentes, aportó las primeras evidencias de la existencia de tres tipos de casetes cromosomales estafilocócicos (SCCmec I-III).37,38 Recientemente, se describió un cuarto tipo (SCCmec IV).39,40 Estudios recientes indican que los tipos II y IV se encuentran circulando en cepas del SAMR en México.41

Resistencia a otros agentes antimicrobianos

El surgimiento de cepas de S. aureus multirresistentes representa una respuesta secuencial a la presión selectiva impuesta por la terapia antimicrobiana. Sin embargo, se ha observado que la acumulación y la diseminación de resistencia en S. aureus es producto del intercambio de determinantes de resistencia preexistente portados por elementos genéticos móviles como plásmidos y transposones.42,43 El cuadro I resume los mecanismos de resistencia identificados en S. aureus para las clases de antibióticos más importantes.

Distribucion clonal del SAMR

Los procedimientos de tipificación pueden jugar un papel importante en el diagnóstico y el manejo de las infecciones estafilococicas; para ello en la actualidad existen diversos métodos de tipificación: serotipificación, electroforesis por multilocus enzimático, polimorfismo de fragmentos largos de restricción, ribotipificación, polimorfismos de la vecindad del gen mecA, electroforesis de campos pulsados y tipificación por secuencia de multilocus (MLST), pero hasta el momento ninguno de estos métodos ha sido adoptado como estándar internacional.44-52

La epidemiología global requiere una colección de cepas de gran tamaño representativa de todos los SAMR que circulan en diferentes áreas geográficas y en diferentes periodos. Dos esfuerzos independientes y a gran escala han sido descritos recientemente para establecer las relaciones epidemiológicas de los SAMR. El primero fue realizado por el proyecto CEM/NET Centro de Epidemiología Molecular, organizado por una red de colaboración.53 El estudio incluyó aislamientos de Europa, América Latina, EUA, Japón, Taiwán, China y los primeros aislamientos del SAMR recuperados en Dinamarca e Inglaterra.40,47,48 Esta tipificación molecular se realizó para más de 3 000 cepas SAMR y dio como resultado la identificación de cinco clonas pandémicas: Clona Ibérica,54-60 Clona Brasileña,61-66 Clona Húngara,67-69 Clona Nueva York/Japón,60,70,71,41 y Clona Pediátrica.60,64,72-76 (cuadro II).

Un segundo esfuerzo en la epidemiología global de S. aureus se basó en el análisis por MLST de clonas del SAMR y la creación de una base de datos central en el sitio www.mlst.net.77,78 La conclusión global de estos estudios fue que los SAMR tienen una estructura clonal conservada en comparación con los S. aureus sensibles a meticilina, y que un número reducido de clonas cuenta con la capacidad de diseminación global (clonas del SAMR pandémicas).40,79

En el año 2001 se publicaron los primeros trabajos moleculares para la determinación de las clonas del SAMR en América Latina y se encontró que la Clona Brasileña multirresistente estuvo presente en 79% de los 494 SAMR estudiados. En este mismo estudio se observó la presencia de la clona M, presente solamente en los aislamientos de México; la Clona de Brasil, predominante en Argentina, Chile y Uruguay, no se identificó en nuestro país.65 Un estudio llevado a cabo durante un periodo de siete años, demostró la presencia de la clona del SAMR (Nueva York/Japón) circulando en aislamientos mexicanos, así como el desplazamiento durante cinco años de la clona M actual.41

Perspectivas futuras

El esclarecimiento de los factores que contribuyen a la superioridad epidémica de las clonas del SAMR pandémicas, sus altos niveles de expresión de ciertos genes de virulencia y su habilidad para sobrevivir en el medio ambiente pueden ser de gran importancia para el control de los SAMR que circulan actualmente y para evitar el surgimiento de cepas con un mayor grado de resistencia y patogenicidad.

Agradecimientos

Se agradece al Programa C/PFPN-2002-35-32 PIFOP-CONACyT por la beca (176380) con la que se apoya a la autora para concluir el doctorado en Biología Experimental, en la Universidad Autónoma Metropolitana-Unidad Iztapalapa.

Se agradece también a la M en C. Gabriela Echaniz Avilés y al Dr. Jesús Silva Sánchez, por sus comentarios sobre el presente trabajo.

 

Referencias

1. Kloss W. Taxonomy and systematics of staphylococci indigenous to humans. En: Crossley KB, Archer GL, eds. The Staphylococci in human disease. Nueva York: Churchill Livingstone, 1997:113-215.        [ Links ]

2. Low DE. Clinical microbiology: issues in identification and susceptibility testing. En: Crossley KB, Archer GL, eds. The Staphylococci in human disease. Nueva York: Churchill Livingstone, 1997: 233-252.        [ Links ]

3. Skinner D, Keefer CS. Significance of bacteremia caused by Staphylococcus aureus. Arch Intern Med 1941;68:851-875.        [ Links ]

4. Crossley KB, Archer GL, eds. The staphylococci in human disease. New York: Churchill Livingstone, 1997.        [ Links ]

5. Lowy FD. Staphylococcus aureus infections. N Engl J Med 1998;339: 520-532.        [ Links ]

6. Monday SR, Bohach GA. Properties of Staphylococcus aureus enterotoxins and toxins shock syndrome toxin-1. Londres: Academic Press, 1999:589-610.        [ Links ]

7. Projan S J, Novick R P. The molecular basis of pathogenicity. En: Crossley KB, Archer GL, eds. The Staphylococci in human disease. Nueva York: Churchill Livingstone, 1997:55-81.        [ Links ]

8. Jerraud S, Peyrat MA, Lim A, Tristan A, Bes M, Mougel C, et al. egc, a highly prevalent operon of enterotoxin gene, forms a putative nursery of superantigens in Staphylococcus aureus. J Immunol 2001;166:669-677.        [ Links ]

9. Orwin PM, Leung DY, Donahue HL, Novick RP, Schlievert PM. Biochemical and biological properties of staphylococcal enterotoxin K. Infect Immun 2001;69:360-366.        [ Links ]

10. Yamaguchi T, Nishifuji K, Sasaki M, Fudaba Y, Aepfelbacher M, Takata T et al. Identification of the Staphylococcus aureus etd pathogenicity island which encodes a novel exfolative toxin, ETD, and EDIN-B. Infect Immun 2002;10:5835-5845.        [ Links ]

11. Tenover F C, Gaynes RP. The epidemiology of Staphylococcus infections. Washington, D.C.: American Society for Microbiology, 2000.        [ Links ]

12. Edmond MB, Wallance SE, McClish DK, Pfaller MA, Jones RN, Wenzel RP. Nosocomial bloodtream infections in United States hospitals: A three-year analysis. Clin Infect Dis 1999;29: 239-244.        [ Links ]

13. Selvey LA, Whitby M, Johnson B. Nosocomial methicillin-resistant Staphylococcus aureus bacteremia: Is it any worse than nosocomial methicillin sensitive Staphylococcus aureus bacteremia? Infect Control Hosp Epidemiol 2000;21:645-648.        [ Links ]

14. Díaz-Ramos RD, Solórzano-Santos F, Padilla-Barrón G, Miranda-Novales MG, González-Robledo R, Trejo y Pérez A. Infecciones nosocomiales. Experiencia en un hospital pediátrico de tercer nivel. Salud Publica Mex 1999;41:suppl 1:S12-S17.        [ Links ]

15. Chávez PBC. Infecciones intrahospitalarias ¿Qué ha pasado durante 23 años? Enferm Infecc Microbiol Clin 2004;24:89-92.        [ Links ]

16. Molina-Gamboa JD, Garza-Moreno H. Vigilancia de infecciones nosocomiales en un hospital de cardiología. Salud Publica Mex 1999;41:suppl1:S26-S31.        [ Links ]

17. Ponce de León S, Rangel-Frausto MS, Elías-López JI, Romero-Oliveros C, Huertas-Jiménez M. Infecciones nosocomiales: tendencias seculares de un programa de control en México. Salud Publica Mex 1999;41:suppl1:S5-S11.        [ Links ]

18. Vargas OR, Salgado CJ. Agentes causales de neumonía nosocomial y su relación con microorganismos del ambiente hospitalario en pacientes de la unidad de cuidados intensivos. Enferm Infecc Microbiol Clin 2004;24:60-63.        [ Links ]

19. Camacho RR, Avila RR, López GE, Rodríguez De la Garza R, Sánchez ZM, Masud YZJ et al. Epidemiología de las infecciones nosocomiales en una unidad de terapia intensiva pediátrica. Enferm Infecc Microbiol Clin 2004;24:55-59.        [ Links ]

20. Wenzel RP, Nettleman MD, Jones RN, Pfaller MA. Methicillin-resistant Staphylococcus aureus: Implications for the 1990s and effective control measures. Am J Med 1991;91:221-227.        [ Links ]

21. Jensen AG, Wachmann CH, Poulsen KB, Esperse F, Scheibel J, Skinhoj P et al. Risk factor for hospital-acquired Staphylococcus aureus bacteremia. Arch Intern Med 1999;159:1437-1444.        [ Links ]

22. Speller DC, Johnson AP, James D. Resistance to methicillin and others antibiotics in isolates of Staphylococcus aureus from blood and cerebrospinal fluid, England and Wales, 1989-1995. Lancet 1997;250:323-325.        [ Links ]

23. Jessen O, Rosendal K, Buloww P. Changing sthaphylococci and staphylococcal infections: A ten year study of bacteria and cases of bacteremia. N Engl J Med 1999;281:627-635.        [ Links ]

24. Panlilio AL, Culver DH, Gaynes RP. Methicillin-resistant Staphylococcus aureus in US hospitals, 1975-1991. Infect Control Hosp Epidemiol 1992;13:582-586.        [ Links ]

25. Fluid AC, Jones ME, Schmitz FJ, Acar J, Gupta R, Verhoef J. Antimicrobial susceptibility and frequency of occurrence of clinical blood isolates in Europe from the SENTRY antimicrobial surveillance program, 1997 and 1998. Clin Infect Dis 2000;30:454-460.        [ Links ]

26. Hiramatsu K, Hanaki H, Ito K. Methicillin-resistant Staphylococcus aureus clinical strains with reduced vancomycin susceptibility. J Antimicrob Chemother 1998;40:135-136.        [ Links ]

27. Hiramatsu K, Aritaka N, Hanaki H. Disseminatios in Japanese hospitals of strains of Staphylococcus aureus heterogenously resistant to vancomycin. Lancet 1997;350:1670-1673.        [ Links ]

28. Centers for Disease Control. Public health dispatch: Vancomycin-resistant Staphylococcus aureus, Pennsylvania. Morb Mortal Wkly Rep 2002;51:902-903.        [ Links ]

29. Centers for Disease Control. Staphylococcus aureus resistant to vancomycin, United States. Morb Mortal Wkly Rep 2002;51:565-567.        [ Links ]

30. Macia H, Medina V, Gaona R. Estafilococos resistentes a meticilina en un hospital general de León Guanajuato. Enferm Infecc Microbiol Clin 1993;3:123-127.        [ Links ]

31. Urdez HE, Sifuentes OJ, Calva J, Villalobos ZY. Epidemiological and biological characteristics of methicillin-resistant staphylococcal infections in a Mexican Hospital. Arch Med Res 1999;30: 325-331.        [ Links ]

32. Calderón-Jaimes E, Espinoza de los Monteros LE, Avila-Beltrán R. Epidemiology of drug resistance: The case of Staphylococcus aureus and coagulase-negative staphylococci infections. Salud Publica Mex 2002;44:108-112.        [ Links ]

33. Archer GL, Niemeyer DM. Origin and evolution of DNA asociated with resistance to methicillin in staphylococci. Trends Microbiol 1994;2:343-347.        [ Links ]

34. Suzuki E, Kyoko K, Richardson JF. Distribution of mec regulator genes in methicillin-resistant Staphylococcus clinical strains. Antimicrob Agents Chemother 1993;37:1219-1226.        [ Links ]

35. Pinho, MG, De Lencastre H, Tomasz A. An acquired and a native penicillin-binding protein cooperate in building the cell wall of drug-resistant staphylococci. Proc Nalt Acad Sci USA. 2001;98:10886-10891.        [ Links ]

36. Pinho, MG, Filipe SR, De Lencastre H, Tomasz A. Complementation of essential peptidoglycan transpeptidase function of penicillin-binding protein 2 (PBP2) by the drug resistance protein PBP2A in Staphylococcus aureus. J Bacteriol 2001;183:6525-6531.        [ Links ]

37. Ito T, Katayama Y, Hiramatsu K. Cloning and nucleotide sequence determination of the entire mec DNA of pre-methicillin-resistant Staphylococcus aureus N315. Antimicrob Agents Chemother 1999;43:1449-1458.        [ Links ]

38. Ito T, Katayama Y, Asada K, Mori N, Tsutsumimota K, Tiensasitorn C, Hiramatsu K. Structural comparison of three types of staphylococcal cassette chromosome mec integrated in the chromosome in methicillin-resistant Staphylococcus aureus. Antimicrob Agents Chemother 2001;45:1323-1336.        [ Links ]

39. Hiramatsu K, Cui L, Kuroda M, Ito. T. The emergence and evolution of methicillin-resistant Staphylococcus aureus. Trends Microbiol 2001;9:486-493.        [ Links ]

40. Oliveira DC, Tomasz A, de Lencastre H. The evolution of pandemic clones of methicillin-resistant Staphylococcus aureus: Identification of two ancestral genetic backgrounds and the associated mec elements. Microb Drug Resist 2001;7:349-361.        [ Links ]

41. Velazquez MME, Aires de Sousa M, Echaniz AG, Solorzano SF, Miranda NG, Silva SJ, De Lencastre H. Surveillance of methicillin-resistant Staphylococcus aureus in a pediatric hospital in Mexico city during a 7-year period (1997 to 2003): Clonal evolution and impact of infection control. J Clin Microbiol 2004;42:3877-3880.        [ Links ]

42. Projan SJ. Antibiotic resistance in the staphylococci. En: Fischett VA, Novick RP, Ferretti JJ, Portnoy DA, Rood JI, eds. Gram-positive pathogens. Washington, D.C: American Society for Microbiology, 2000: 463-470.        [ Links ]

43. Paulsen IT, Firth N, Skurray RA. Resistance to antimicrobial agents other than b-lactams. En: Crossley KB, Archer GL, eds. The Staphylococci in human disease. Nueva York: Churchill Livingstone, 1997: 158-174.        [ Links ]

44. Arbeit RD. Laboratory procedures for epidemiology analysis. En: Crossley KB, Archer GL, eds. The Staphylococci in human disease. Nueva York: Churchill Livingstone, 1997:158-174.        [ Links ]

45. Weller TM. Methicillin-resistant Staphylococcus aureus typing methods: Which should be international standard? J Hosp Infect 2000;44:160-172.        [ Links ]

46. Musser JM, Schliever PM, Chow AW, Ewan P, Selander RK. A single clone of Staphylococcus aureus causes the majority of cases of toxic shock syndrome. Proc Natl Acad Sci USA 1990;87: 225-229.        [ Links ]

47. Kreiswirth BJ, Kornblum RD, Arbeit W, Eisner JN, Maslow A, McGeer DE et alI. Evidence for a clonal origin of methicillin resistance in Staphylococcus aureus. Science 1993;259:227-230.        [ Links ]

48. De Lencastre H, Couto I, Santos I, Melo CJ, Torres PA, Tomasz A. Methicillin-resistant Staphylococcus aureus disease in a Portuguese hospital: Characterization of clonal types by a combination of DNA typing methods. Eur J Clin Microbiol Infect Dis 1994;13:64-73.        [ Links ]

49. Tenover FC, Arbeit RD, Archer G, Biddle J, Byrne S, Goering R et al. Comparison of traditional and molecular methods of typing isolates of Staphylococcus aureus. J Clin Microbiol 1994;32: 407-415.        [ Links ]

50. Tenover FC, Arbeit RD, Goering RV, Mickelsen PA, Murray BE, Persing DH. Interpreting chromosomal DNA restriction patterns produced by pulsed-field gel electrophoresis: Criteria for bacterial strain typing. J Clin Microbiol 1995;33:2233-2239.        [ Links ]

51. Maiden MC, Bygraves JA, Feil E, Morelli G, Russell JE, Urwin R et al. Multilocus sequence typing: A portable approach to the identification of clones within populations of pathogenic microorganisms. Proc Natl Acad Sci USA 1998;95:3140-3145.        [ Links ]

52. Spratt BG. Multilocus sequence typing: Molecular typing of bacterial pathogens in an era of rapid DNA sequencing and the internet. Curr Opin Microbiol 1999;2:312-316.        [ Links ]

53. Tomasz A, De Lencastre H. Molecular microbiology and epidemiology: Coexistence or alliance? In prevention and control of nosocomial infections. Baltimore: Williams and Willkins, 1997:309-321.        [ Links ]

54. Domínguez MA, De Lencastre H, Liñares J, Tomasz A. Spread and maintenance of a dominant methicillin-resistant Staphylococcus aureus (MRSA) clone during an outbreak of MRSA disease in and Spanish hospital. J Clin Microbiol 1994;32:2081-2087.        [ Links ]

55. Sanches I, Ramirez M, Troni H, Abecassis M, Padua M, Tomasz A, De Lencastre H. Evidence for the geographic spread of a methicillin-resistant Staphylococcus aureus (MRSA) clone between Portugal and Spain. J Clin Microbiol 1995;33:1243-1246.        [ Links ]

56. Mato R, Santos I, Venditti M, Platt DJ, Brown A, Cheng M, De Lencastre H. Spread of the multirresistant Iberian clone of methicillin-resistant Staphylococcus aureus (MRSA) to Italy and Scotland. Microb Drug Resist 1998;4:107-112.        [ Links ]

57. Witte W, Kresken M, Braulke C, Cuny C. Increasing incidence and widespread dissemination of methicillin-resistant Staphylococcus aureus (MRSA) in hospitals in central Europe, with special reference to German hospital. Clin Microbiol Infect 1997;3:414-422.        [ Links ]

58. Deplano A, Witte W, Van Leeuwen WJ, Brun Y, Struelens MJ. Clonal dissemination of epidemic meticillin-resistant Staphylococcus aureus in Belgium and neighboring countries. Clin Microbiol Infect 2000;6:239-245.        [ Links ]

59. Melter O, Aires de Sousa M, Urbaskova P, Jakubo V, Zemlickova H, De Lencastre H. Update on the major clonal types of methicillin-resistant Staphylococcus aureus in the Czech Republic. J Clin Microbiol 2003;41:4998-5005.        [ Links ]

60. Roberts RB, De Lencastre A, Eisner W, Severina EP, Shopsin B, Kreiwith BN, Tomasz A et al. Molecular epidemiology of methicillin-resistant Staphylococcus aureus in 12 New York hospitals. J Infect Dis 1998;178:164-171.        [ Links ]

61. Teixeira L, Resende CA, Ormonde LR, Rosenbaum R, Figueiredo A, De Lencastre H et al. Geographic spread of epidemic multiresistant Staphylococcus aureus clone in Brazil. J Clin Microbiol 1995;33:2400-2404.        [ Links ]

62. Aires de Sousa M, Sanches I, Ferro ML, Vaz MJ, Saraiva Z, Tendeiro T et al. Intercontinental spread of a multidrug-resistant methicillin-resistant Staphylococcus aureus clone. J Clin Microbiol 1998;36:2590-2596.        [ Links ]

63. Oliveira D, Sanches IS, Tamayo M, Ribeiro G, Mato R, Costa D et al. Virtually all MRSA infections in the largest Portuguese hospital are caused by two internationally spread multiresistant strains: The "Iberian" and "Brazilian" clones of MRSA. Clin Microbiol Infect 1998;4:373-384.        [ Links ]

64. Corso A, Santos SI, Aires De Sousa M, Rossi A, De Lencastre H. Spread of a methicillin-resistant and multiresistant epidemic clone of Staphylococcus aureus in Argentina. Microb Drug Resist 1998;4:277-288.        [ Links ]

65. Aires De Sousa M, Miragaia M, Santos I, Avila S, Adamson I, Casagrande S et al Three year assesment of methicillin-resistant Sthaphyloccus aureus clones in Latin America from 1996 to 1998. J Clin Microbiol 2001;39:2197-2205.        [ Links ]

66. Melter O, Santos S I, Schindler J, Aires De Sousa M, Mato R, Kovarova V et. al. Methicillin-resistant Staphylococcus aureus clonal types in the Czech Republic. J Clin Microbiol 1999;37:2798-2803.        [ Links ]

67. De Lencastre H, Severina EP, Milch H, Thege MK, Tomasz A. Wide geographic distribution of a unique methicillin-resistant Staphylococcus aureus clone in Hungarian Hospitals. Clin Microbiol Infect 1997;3:289-296.        [ Links ]

68. Oliveira DC, Crisóstomo I, Santos SI, Major P, Alves CR, Aires De Sousa M, et.al. Comparison of DNA sequencing of the protein A gene polymorphic region with other molecular typing techniques for typing two epidemiologically diverse collections of methicillin-resistant Staphylococcus aureus. J Clin Microbiol 2001;39:574-580.        [ Links ]

69. Aires De Sousa M, Crisóstomo I, Santos SI, Wu JS, Fuzhong J, Tomasz A, De Lencastre H. Frequent recovery of a single clonal type of multidrug-resistant Staphylococcus aureus from patients in two hospitals in Taiwan and China. J Clin Microbiol 2003;41:159-163.        [ Links ]

70. Roberst RB, Chung M, De Lencastre H, Hargrave J, Tomasz A, Nicolau DP, John JF et al. Distribution of methicillin-resistant staphylococcus aureus clones among health care facilities in Connecticut, New Jersey and Pennsylvania. Microb Drug Resist 2000;6:245-251.        [ Links ]

71. Aires De Sousa M, De Lencastre H, Santos SI, Kikuchi K, Totsuka K, Tomasz A. Similarity of antibiotic resistance patterns and molecular typing properties of methicillin-resistant Staphylococcus aureus isolates widely spread in hospitals in New York City and in a hospital in Tokyo, Japan. Microb Drug Resist 2000;6:253-258.        [ Links ]

72. Sá-Leão R, Santos SI, Dias D, Peres I, Barros RM, De Lencastre H. Detection of an archaic clone of Staphylococcus aureus with low-level resistance to methicillin in a pediatric hospital in Portugal and internacional simples: Relics of a formerly widely disseminated strains? J Clin Microbiol 1999 37:1913-1920.        [ Links ]

73. Leski T, Oliveira D, Trzcinski K, Sanches I, Aires de Sousa M, Hryniewicz W, De Lencastre H. Clonal distribution of methicillin-resistant Staphylococcus aureus in Poland. J Clin Microbiol 1998;36:3532-3539.        [ Links ]

74. Gomes A R, Sanches I, Aires De Sousa M, Castaneda E, De Lencastre H. Molecular epidemiology of methicillin-resistant Staphylococcus aureus in Colombian hospitals: Dominance of a single unique multidrug- resistant clone. Microb Drug Resist 2001;7:23-32.        [ Links ]

75. Crisóstomo MI, Westh H, Tomasz A, Chung M, Oliveira DC, De Lencastre H. The evolution of methicillin resistance in Staphilococcus aureus: Similarity of genetic backgrounds in historically early methicillin susceptible and resistant isolates and contemporary epidemic clones. Proc Natl Acad Sci USA 2001;98:9865-9870.        [ Links ]

76. De Lencastre H, Chung M, Westh H. Archaic strains of methicillin-resistant Staphylococcus aureus molecular and micribiological properties of isolates from the 1960s in Dinmark. Microb Drug Resist 2000;6:1-10.        [ Links ]

77. Day NP, Moore CE, Enright MC, Berendt AR, Smith JM, Murphy MF et al. A link between virulence and ecological abundance in natural populations of staphylococcus aureus. Science 2001;292:114-116.        [ Links ]

78. Enright MC, Day NP, Davies CE, Peacock SJ, Spratt BJ. Multilocus sequence typing for characterization of methicillin-resistant and methicillin-susceptible clones of Staphylococcus aureus. J Clin Microbiol 2000;38:1008-1015.        [ Links ]

79. Johnson AP, Aucken HM, Cavendish S, Ganner M, Wale MC, Warner M et al. Dominance of EMRSA-15 and 16 among MRSA causing nosocomial bacteraemia on the UK: Analysis of isolates from the European Antimicrobial Resistance Surveillance System (EARSS). J Antimicrob Chemother 2001;48:143-144.        [ Links ]

 

 

Fecha de recibido: 11 de octubre de 2004
Fecha de aprobado: 17 de agosto de 2005

 

 

Solicitud de sobretiros: M. en C. María Elena Velázquez Meza. Centro de Investigación sobre Enfermedades Infecciosas, Instituto Nacional de Salud Pública. Av. Universidad 655, Col. Sta. María Ahuacatitlán, 62508 Cuernavaca, Morelos, México Correo electrónico: mevelaz@correo.insp.mx

Creative Commons License Todo el contenido de esta revista, excepto dónde está identificado, está bajo una Licencia Creative Commons